2.1.1 Anthraquinones One gram of ea

2.1.1 Anthraquinones One gram of each tea sample was shaken with 10ml of ferric chloride solution with 5ml of hydrochloric acid (HCl). Each mixture was heated in a water bath for 10-15min, filtered and allowed to cool. The filtrate was extracted with chloroform and shaken gently. The clear layer at the base was pipette into test tubes and 2ml each of ammonia sulphate added. An observation of a delicate pink rose indicated the presence of anthraquinones.
2.1.2 Cardenolides Four grams of each sample was extracted in the test tube with 80% ethanol, and appropriately labeled. They were divided into two portions for Kedde’s test and Keler-Killian’s test. For Kedde’s test, few drops of 10% lead acetate were added to each of the tubes, followed by few drops of distilled water and chloroform. The contents were evaporated to dryness in a water bath. 5% sodium hydroxide was added to each residue and then 2% of 3-5 dinitrobenzene acid. For Keller-Killian’s test, few drops of 10% lead acetate, water and chloroform were added to each test sample. The mixture was evaporated to dryness in the water bath and subsequently a few drops of concentrated sulphulic acid were added. For Keller-Keillan’s test, a brown ring indicated the presence of cardenolides, while for Keddi’s test a brown to purple colour was indicative of cardenolides.
2.1.3 Phenolics To 2ml of alcoholic or aqueous tea extract, 1ml of 1% ferric chloride solution was added. Blue or green colour formation was an indication of phenols.
2.1.4 Flavinoids 2g tea was extracted in 10ml alcohol or water. To 2ml filtrate few drops of concentrated hydrochloric acid (HCl) followed by 0.5g zinc or magnesium turnings was added. After 3min magenta or pink colour formation indicated the presence of flavonoids.
2.1.5 Terpenes To 2ml of aqueous extract, 5mg chloroform, 2ml acetic anhydride, concentrated HCL were added carefully to form a layer. Redish-brown colour of interface was an indication of terpenes.
2.1.6 Cardiac Glycosides To 2ml alcoholic filtrate, 1ml glacial acetic acid and 1-2 drops of ferric chloride were added followed by 1ml of concentrated sulphulic acid. A presence of brown ring at the interface indicated the presence of cardiac glycosides. A violet ring might also appear below the brown ring.
2.1.7 Saponin 5ml of each plant extract was placed into a test tube and diluted with 5ml of distilled water. The mixture was shaken vigorously for 2min.Persistent appearance of foam lasting for 5min or the forming of emulsion when olive oil was added confirmed the presence of sponins.
2.1.8 Alkaloids The tea extracted (2g) was hydrolyzed with 2ml hydrochloric acid (HCl) solution by heating in water bath for 10 min, allowed to cool and 5ml of filtrate was reacted with a few drops of Dragendoff’s Mayer’s Wagner’s reagents, alkaloids were recorded as present in the sample if turbidity or brownish precipitate was observed.
2.2 Antimicrobial Screening Four human pathogenic bacteria made of two gram-positive Staphylococcus aureus and Streptococcus faecalis and two gram-negative Salmonella typhimurium and Escherichia coli were used for antibacterial assay. One yeast Candida albicans was used for antifungal assay. All the organisms were local isolates from the laboratory bacterial
202
stock of the Medical Microbiology Department, JKUAT, Kenya. Three to five identical colonies from stored slopes of microorganisms were lifted with a sterile wire loop and transferred into a single strength nutrient broth(sigma) contained in a well labeled screw cap bottles for each bacterium and fungus respectively. The bottles were well shaken and incubated at room temperature for 18-24 hrs for bacteria and 72hrs for fungi. The agar well diffusion method was used to test the tea extract for antimicrobial activity. Briefly 15ml of melted and cooled nutrient agar (Sigma Laboratories, USA) and potato dextrose agar (Sigma Laboratories, USA) were added to 0.2ml in 100 dilutions of bacteria and fungal cultures respectively in sterile petri dishes. The contents were mixed after the gar in each plate solidified, 6 wells of 5mm each were bunched in each plate using aseptic pipette tip. 0.1ml of tea extracts at varying concentrations (50mgml-1, 100mgml-1, 200mgml-1,and 400mgml-1) as well as the standard antibiotic solution was loaded into the wells. Control experiments were set up using streptomycin and cefadroxil (4mgml-1) for the bacteria and fungal assays. The plates were incubated at 37oC for 24hrs for bacteria and 48hr for fungi.
All inoculation procedures were carried out under aseptic conditions. The antimicrobial studies were done in triplicate. With the aid of a transparent ruler the diameter of zones of inhibition around the wells were measured in mm for all the three replicates and the average of the three measurements were calculated as an indication of activity. The results were interpreted according to the modified Kirby-Baur technique. The minimum inhibitory concentration (MIC) of tea extracts was determined using the broth dilution method as described by Salon and Washington (1990). Briefly 1ml of the extract solution at the concentration of 400mgml-1 was added to1 ml of nutrient broth and subsequently transferred to make solution of varying concentration (400mgml-1 200mgml, 100mgml-150mgml-1) in different test tubes. The 1ml of bacterial and fungal suspension and 1ml of extracts at different concentrations was added to each test tube and incubated at 370C for 24 hrs for bacteria and 48hr for fungi. The test tube with the concentration of tea extract at which no detectable growth was observed was considered as the MIC.
2.3 Statistical Analysis Data obtained from diameter zones of inhibition were subjected to ANOVA. Further analysis of the tea extracts to assess variation on disc diameter showed that the crude tea extracts had an activity had great variation on inhibition of the microorganisms (Table 3). There was significant difference (P

Kết quả (Việt) 1:

2.1.1 Anthraquinones một gram mỗi mẫu trà rung động với 10ml ferric clorua giải pháp với 5ml axít clohiđric (HCl). Hỗn hợp mỗi được đun nóng trong một nước tắm cho 10-15 phút, lọc và cho phép làm mát. Tinh được chiết xuất với cloroform và lắc nhẹ nhàng. Rõ ràng lớp tại các cơ sở là pipette vào ống nghiệm và 2ml mỗi của amoniac sulphate thêm. Một quan sát của một hoa hồng màu hồng tinh tế chỉ ra sự hiện diện của anthraquinones. 2.1.2 Cardenolides bốn gam mỗi mẫu được chiết xuất trong ống nghiệm với 80% ethanol, và gắn nhãn một cách thích hợp. Họ được chia thành hai phần cho thử nghiệm của Kedde và Keler-Killian thử nghiệm. Cho thử nghiệm của Kedde, vài giọt của 10% chì axetat được thêm vào mỗi ống, theo sau là vài giọt nước cất và cloroform. Nội dung đã bốc hơi để khô trong một bồn tắm nước. 5% natri hydroxit đã được thêm vào mỗi dư lượng và sau đó là 2% của 3-5 dinitrobenzene axit. Cho thử nghiệm Keller-Killian, vài giọt của 10% chì axetat, nước và cloroform đã được thêm vào mỗi mẫu thử nghiệm. Hỗn hợp bốc hơi để khô trong bồn tắm nước và sau đó một vài giọt tập trung sulphulic axít được thêm vào. Cho thử nghiệm Keller-Keillan, một vòng nâu chỉ ra sự hiện diện của cardenolides, trong khi cho thử nghiệm của Keddi một màu nâu màu tím được chỉ của cardenolides. 2.1.3 phenolics để 2ml rượu hoặc dung dịch nước trà giải nén, 1ml 1% ferric clorua giải pháp đã được bổ sung. Hình thành màu xanh hoặc màu xanh lá cây là một chỉ thị của phenol. 2.1.4 Flavinoids 2g trà được chiết xuất trong 10ml rượu hoặc nước. Đến 2ml filtrate vài giọt tập trung axít clohiđric (HCl) theo cách 0.5g kẽm hoặc magiê turnings đã được bổ sung. Sau 3 phút hình thành màu đỏ tươi hay hồng chỉ ra sự hiện diện của flavonoid. 2.1.5 tecpen để 2ml dung dịch nước giải nén, 5mg cloroform, 2ml axetic anhydrit, tập trung HCL được thêm vào một cách cẩn thận để tạo thành một lớp. Redish-nâu màu sắc của giao diện là một dấu hiệu của tecpen. 2.1.6 Glycosides tim để 2ml rượu tinh, axit axetic băng 1ml và 1-2 giọt ferric clorua đã được thêm vào theo 1ml tập trung sulphulic axit. Một sự hiện diện của vòng nâu ở giao diện chỉ ra sự hiện diện của glycosides tim. Một vòng tím cũng có thể xuất hiện bên dưới vòng màu nâu. 2.1.7 saponin 5ml mỗi chiết xuất thực vật đã được đặt vào một ống nghiệm và pha loãng với 5ml nước cất. Hỗn hợp rung động mạnh mẽ cho 2 phút. Các xuất hiện liên tục của bọt kéo dài cho 5 phút hoặc sự hình thành nhũ tương khi dầu ô liu đã được thêm xác nhận sự hiện diện của sponins. 2.1.8 ancaloit trà được giải nén (2g) thủy phân đạm với 2ml axít clohiđric (HCl) giải pháp bởi sưởi ấm trong nước tắm cho 10 phút, cho phép làm mát và 5ml tinh phản ứng với một vài giọt của Dragendoff Mayer thuốc thử của Wagner, ancaloit được ghi nhận như là hiện diện trong mẫu nếu độ đục hoặc nâu precipitate được quan sát thấy. 2.2 kháng sinh kiểm tra bốn gây bệnh vi khuẩn con người thực hiện hai Gram dương Staphylococcus aureus và Streptococcus faecalis và hai vi khuẩn Salmonella typhimurium và Escherichia coli đã được sử dụng cho khảo nghiệm kháng khuẩn. Một nấm men Candida albicans được sử dụng cho kháng nấm khảo nghiệm. Tất cả các sinh vật đã là địa phương chủng từ phòng thí nghiệm vi khuẩn 202 stock of the Medical Microbiology Department, JKUAT, Kenya. Three to five identical colonies from stored slopes of microorganisms were lifted with a sterile wire loop and transferred into a single strength nutrient broth(sigma) contained in a well labeled screw cap bottles for each bacterium and fungus respectively. The bottles were well shaken and incubated at room temperature for 18-24 hrs for bacteria and 72hrs for fungi. The agar well diffusion method was used to test the tea extract for antimicrobial activity. Briefly 15ml of melted and cooled nutrient agar (Sigma Laboratories, USA) and potato dextrose agar (Sigma Laboratories, USA) were added to 0.2ml in 100 dilutions of bacteria and fungal cultures respectively in sterile petri dishes. The contents were mixed after the gar in each plate solidified, 6 wells of 5mm each were bunched in each plate using aseptic pipette tip. 0.1ml of tea extracts at varying concentrations (50mgml-1, 100mgml-1, 200mgml-1,and 400mgml-1) as well as the standard antibiotic solution was loaded into the wells. Control experiments were set up using streptomycin and cefadroxil (4mgml-1) for the bacteria and fungal assays. The plates were incubated at 37oC for 24hrs for bacteria and 48hr for fungi. All inoculation procedures were carried out under aseptic conditions. The antimicrobial studies were done in triplicate. With the aid of a transparent ruler the diameter of zones of inhibition around the wells were measured in mm for all the three replicates and the average of the three measurements were calculated as an indication of activity. The results were interpreted according to the modified Kirby-Baur technique. The minimum inhibitory concentration (MIC) of tea extracts was determined using the broth dilution method as described by Salon and Washington (1990). Briefly 1ml of the extract solution at the concentration of 400mgml-1 was added to1 ml of nutrient broth and subsequently transferred to make solution of varying concentration (400mgml-1 200mgml, 100mgml-150mgml-1) in different test tubes. The 1ml of bacterial and fungal suspension and 1ml of extracts at different concentrations was added to each test tube and incubated at 370C for 24 hrs for bacteria and 48hr for fungi. The test tube with the concentration of tea extract at which no detectable growth was observed was considered as the MIC. 2.3 Statistical Analysis Data obtained from diameter zones of inhibition were subjected to ANOVA. Further analysis of the tea extracts to assess variation on disc diameter showed that the crude tea extracts had an activity had great variation on inhibition of the microorganisms (Table 3). There was significant difference (P<0.05). Those that did not show activity had a disc diameter of less than 3mm. Thus in inhibition activity, table 3 gives the variation inhibitory activity on the microorganisms since they show susceptibility to the tea extracts except for Salmonella typhimurium and Candida albicans which were not susceptible to orthodox tea. 3.0 Results The results of the phytochemical screening of the tea samples is presented in Table 2. The secondary metabolites tested wereAlkaloids, Saponin, Phenolics, Tannins, Anthraquinones, Cardenolides, Terpenes, Flavinoids and Cardiac glycosides. The results shows that Alkaloids, Saponin, Phenolics, Tannins, Anthraquinones, Cardenolides, Terpenes ,Flavinoids and Cardiac glycosides are present in all extracts except in green tea. Cardenolides are present in green and black tea but absent in orthodox tea. Phenolics are absent in orthodox tea but present in green and black tea. The results of the antimicrobial screening of the aqueous tea extracts are presented in Table 3, while the minimum inhibitory concentration (MIC) of each extract are shown in table 4. The tea extracts were found to be more effective in the tested bacteria than they were on fungi. Green and orthodox tea extracts showed important inhibition of Salmonella typhimurium and Escherichia coli gram-positive bacteria at the concentrations of 200 and 400mgml-1. All the tea extracts had activity against Staphylococcus aureus and Streptococcus faecalisgram-negative bacteria and only the extract of black tea was active against Candida albicans (a fungus) with the diameter of the zone of inhibition of 4.02mm and the MIC of 100mgml-1.

203
Table 1: Sample information of tea studied
Name Locality of Collection Fermentation Status Green tea Kangaita Non-fermented Orthodox tea Kangaita Semi- fermented Black tea Murang’a Fermented
Table 2: Phytochemical constituents of crude extract of tea samples
Green tea Orthodox tea Black tea Phenolics + - + Flavonoids + + + Terpenes + + + Cardia glycosides + + + Cardenolides + - + Anthraquinones - + + Alkaloids + + + Saponins + + + + Presence of secondary metabolite - Absence of secondary metabolite
Table 3: Antimicrobial activity of crude tea extracts of Green tea, Orthodox tea and Black tea
Tea extract Conc. mgml-1
Staph aureus
Escherichia Coli
Salmonella typhim.
Streptococcus faecolis
Cadida albicans
Green tea 50 100 200 400
- 10± 0.0 15± 0.0 20± 0.0
- - 14± 0.0 18 ±0.0
- - 5± 0.0 18± 0.0
- 12.0±00 14.0±00 15.0±00
- - 1±0.0 1±0.4
Orthodox tea 50 100 200 400
- - 4 ±0.2 8 ± 0.0
- - 6± 0.0 14± 0.0
- - - -
-
10± 0.0 12 ±0.0
- - - -
Black tea (Murang’a)
50 100 200 400
- - 6.5± 0.0 7.4± 0.2
- - 3.5 ±0.0 14 ±0.0
- 1± 0.0 3± 0.0 4 ±0.0
- 2±0.0 5±0.0 6±0.2
- 4±.002 6±0.01 9±0.01
Streptomycin 4.0mg/ ml
20±0.0 10±0.0 15±0.0 10±0.0 25±0.0
Cefadoxil 4.0mg/ ml
20±0.0 20±0.0 20±0.0 20±0.0 10±0.0
- Absence of antimicrobial activity Arabic numerals – inhibition diameters in mm
204
Table 4: Minimum inhibitory concentrations of aqueous extracts of tea on selected micro-organisms
Tea extract Conc. mgml-1 Staph aureus Escherichia Coli
Salmonella typhimurium
Streptococcus faecolis
Cadida albicans
Green tea 400 200 150 100 50 25
- - - - + +
- - - + + +
- - + + + +
- - - - + +
- - - + + +
Orthodox tea 400 200 150 100 50 25
- - - - + +
- - - + + +
- - + + + +
- - - - + +
+ + + + + +
Black tea (Murang’a)
400 200 150 100 50 25
- - - - + +
- - - + + +
+ + + + + +
- - - - + +
- - - - + +
- No growth observed + Growth observed
4.0 Discussion and Conclusion The presence of the secondary metabolites (alkaloids, terpenes, saponins, tannins, flavonoids, cardiac glycosides, cardenolides anthroquinones and phenols) in tea partly enhances the antimicrobial and anti-parasitic activity of the green, black and orthodox tea. Although the presence of similar secondary metabolites ma

Kết quả (Việt) 2:

2.1.1 anthraquinon Một gam mỗi mẫu trà được lắc với 10ml dung dịch clorua sắt với 5ml acid hydrochloric (HCl). Mỗi hỗn hợp được nung nóng trong một cốc nước cho 10-15min, lọc và để nguội. Dịch lọc được chiết với chloroform và lắc nhẹ nhàng. Các lớp rõ ràng tại cơ sở là pipette vào ống nghiệm và 2ml mỗi amoniac sulphate thêm. Một sự quan sát của một màu hồng hồng tinh tế chỉ ra sự hiện diện của anthraquinon.
2.1.2 cardenolides Bốn gam mỗi mẫu được chiết xuất trong ống nghiệm với 80% ethanol, và ghi nhãn phù hợp. Họ được chia thành hai phần để kiểm tra Kedde và kiểm tra Keler-Killian của. Đối với thử nghiệm của Kedde, vài giọt 10% chì acetate được thêm vào mỗi ống, tiếp theo là vài giọt nước cất và chloroform. Các nội dung này đã bốc hơi đến khô trong một cốc nước. 5% sodium hydroxide được thêm vào mỗi cặn và sau đó 2% axit dinitrobenzene 3-5. Đối với thử nghiệm Keller-Killian của, vài giọt 10% chì acetate, nước và chloroform đã được thêm vào mỗi mẫu thử nghiệm. Hỗn hợp này được làm bay hơi đến khô trong bồn tắm nước và sau đó một vài giọt axit sulphulic tập trung đã được thêm vào. Đối với thử nghiệm Keller-Keillan, một chiếc nhẫn màu nâu chỉ ra sự hiện diện của cardenolides, trong khi đối với thử nghiệm Keddi của một màu nâu sang màu tím là biểu hiện của cardenolides.
2.1.3 Phenolics Để 2ml cồn hoặc dung dịch chiết xuất trà, 1ml 1%, dung dịch sắt clorua là thêm vào. Hình thành màu xanh hoặc màu xanh lá cây là một dấu hiệu của phenol.
2.1.4 Flavinoids 2g trà được chiết xuất trong 10ml rượu hoặc nước. Đến 2 ml dịch lọc vài giọt axit clohiđric đậm đặc (HCl) tiếp theo là 0,5g kẽm hoặc magiê phoi tiện đã được bổ sung. Sau khi 3min đỏ tươi hoặc hình thành màu hồng chỉ ra sự hiện diện của chất flavonoid.
2.1.5 tecpen đến 2 ml dung dịch nước chiết xuất, chloroform 5mg, 2ml anhydride acetic, tập trung HCL đã được thêm vào một cách cẩn thận để tạo thành một lớp. Màu Redish nâu của giao diện là một dấu hiệu của tecpen.
2.1.6 tim Glycosides đến 2 ml dịch lọc cồn, 1ml axit axetic và 1-2 giọt sắt clorua được thêm vào sau đó 1ml axit sulphulic tập trung. Một sự hiện diện của chiếc nhẫn màu nâu ở giao diện chỉ ra sự hiện diện của glycosid tim. Một chiếc nhẫn màu tím cũng có thể xuất hiện bên dưới các vòng màu nâu.
2.1.7 Saponin 5ml của mỗi nhà máy chiết xuất đã được đặt vào một ống nghiệm và pha loãng với 5ml nước cất. Hỗn hợp được lắc mạnh trong 2min.Persistent xuất hiện của bọt lâu dài cho 5min hoặc sự hình thành nhũ tương khi dầu ô liu đã được bổ sung xác nhận sự hiện diện của sponins.
2.1.8 Các alkaloid chiết xuất trà (2g) đã được thủy phân bằng axit hydrochloric 2ml (HCl) giải pháp bằng cách đun nóng trong bồn tắm nước trong 10 phút, để nguội và 5ml dịch lọc được cho phản ứng với một vài giọt thuốc thử Wagner của Dragendoff của Mayer, alkaloid đã được ghi lại như hiện nay trong mẫu nếu độ đục hoặc kết tủa nâu đã được quan sát.
2.2 Antimicrobial Screening Bốn con người vi khuẩn gây bệnh làm bằng hai Staphylococcus aureus và Streptococcus faecalis gram dương và hai Salmonella typhimurium gram âm và Escherichia coli đã được sử dụng để khảo nghiệm kháng khuẩn. Một nấm men Candida albicans đã được sử dụng để khảo nghiệm kháng nấm. Tất cả các sinh vật được phân lập tại địa phương từ vi khuẩn trong phòng thí nghiệm
202
chứng khoán của Sở Vi sinh Y tế, JKUAT, Kenya. Ba đến năm thuộc địa giống hệt nhau từ dốc lưu trữ của các vi sinh vật đã được nâng lên với một vòng dây vô trùng và chuyển vào một canh dinh dưỡng sức mạnh duy nhất (sigma) chứa trong một được dán nhãn chai nắp vặn cho từng loại vi khuẩn và nấm tương ứng. Các chai được lắc đều và ủ ở nhiệt độ phòng trong 18-24 giờ đối với vi khuẩn và 72 giờ cho nấm. Các phương pháp khuếch tán cũng agar được sử dụng để thử nghiệm các chiết xuất trà cho hoạt động kháng khuẩn. Một thời gian ngắn 15ml thạch nóng chảy và làm mát bằng chất dinh dưỡng (Sigma Laboratories, USA) và môi trường thạch đường khoai tây (Sigma Laboratories, USA) đã được thêm vào 0.2ml ở 100 độ pha loãng của vi khuẩn và nấm nền văn hóa tương ứng trong đĩa petri vô trùng. Các nội dung đã được pha trộn sau khi gar trong mỗi tấm kiên cố, 6 giếng 5mm mỗi bị bó trong mỗi tấm bằng tip pipet vô trùng. 0.1ml của chiết xuất trà ở các nồng độ khác nhau (50mgml-1, 100mgml-1, 200mgml-1, và 400mgml-1) cũng như các giải pháp kháng sinh tiêu chuẩn đã được nạp vào các giếng. Thí nghiệm kiểm soát đã được thiết lập bằng cách sử dụng streptomycin và cefadroxil (4mgml-1) cho các vi khuẩn và các xét nghiệm nấm. Các tấm được ủ ở 37oC trong 24 giờ cho vi khuẩn và nấm 48hr.
Tất cả các thủ tục tiêm phòng đã được thực hiện trong điều kiện vô trùng. Các nghiên cứu kháng sinh đã được thực hiện trong ba lần. Với sự trợ giúp của một người cai trị trong suốt đường kính của vùng ức chế xung quanh giếng được đo bằng mm cho tất cả ba lần nhắc lại, với mức trung bình của ba phép đo được tính như một dấu hiệu của hoạt động. Các kết quả đã được giải thích theo kỹ thuật Kirby-Baur sửa đổi. Nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) của chất chiết xuất từ trà đã được xác định bằng cách sử dụng phương pháp pha loãng nước dùng như mô tả của Salon và Washington (1990). Một thời gian ngắn 1ml dung dịch chiết xuất với nồng độ 400mgml-1 đã được bổ sung TO1 ml nước dùng chất dinh dưỡng và sau đó chuyển giao cho làm cho giải pháp của nồng độ khác nhau (400mgml-1 200mgml, 100mgml-150mgml-1) trong ống nghiệm khác nhau. Các 1ml của hệ thống treo và 1ml chiết xuất ở các nồng độ khác nhau vi khuẩn và nấm đã được thêm vào mỗi ống nghiệm và ủ ở 370C trong 24 giờ đối với vi khuẩn và 48hr cho nấm. Các ống nghiệm với nồng độ của chiết xuất trà mà không có tăng trưởng phát hiện đã quan sát được coi là MIC.
2.3 thống kê phân tích dữ liệu thu được từ khu đường kính của sự ức chế đã phải chịu ANOVA. Phân tích sâu hơn của các chất chiết xuất từ trà để đánh giá sự biến đổi của đường kính đĩa cho thấy các chất chiết xuất từ trà thô đã có một hoạt động có sự thay đổi lớn về sự ức chế các vi sinh vật (Bảng 3). Có sự khác biệt đáng kể (P <0,05). Những điều đó đã không thấy hoạt động có đường kính đĩa nhỏ hơn 3mm. Vì vậy, trong hoạt động ức chế, bảng 3 cho thấy các hoạt động biến thể ức chế các vi sinh vật vì chúng cho thấy tính nhạy cảm với các chất chiết xuất từ trà trừ Salmonella typhimurium và Candida albicans mà không dễ bị trà chính thống.
3.0 Kết quả Kết quả của việc sàng lọc phytochemical của các mẫu trà được trình bày trong Bảng 2. Các chất chuyển hoá thứ cấp thử nghiệm wereAlkaloids, Saponin, phenol, Tannin, anthraquinon, cardenolides, tecpen, Flavinoids và Cardiac glycoside. Các kết quả cho thấy alkaloid, saponin, phenol, Tannin, anthraquinon, cardenolides, tecpen, Flavinoids và Cardiac glycoside có mặt trong tất cả các chiết xuất ngoại trừ trong trà xanh. Cardenolides đang hiện diện trong trà xanh và đen nhưng vắng mặt trong trà chính thống. Phenolics vắng mặt trong trà chính thống nhưng trong chè xanh và đen. Các kết quả của việc sàng lọc kháng khuẩn của các chất chiết xuất từ trà dung dịch nước được thể hiện trong Bảng 3, trong khi nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) của mỗi giải nén được trình bày trong bảng 4. Các chất chiết xuất từ trà đã được tìm thấy có hiệu quả hơn trong vi khuẩn thử nghiệm hơn là họ trên nấm. Chiết xuất từ trà xanh và chính thống cho thấy sự ức chế quan trọng của Salmonella typhimurium và vi khuẩn gram dương coli Escherichia ở nồng độ 200 và 400mgml-1. Tất cả các chất chiết xuất từ trà có hoạt tính chống Staphylococcus aureus và Streptococcus vi khuẩn faecalisgram âm và chỉ chiết xuất trà đen là hoạt động chống lại Candida albicans (một loại nấm) với đường kính của vùng ức chế 4.02mm và MIC của 100mgml-1. 203 Bảng 1: thông tin mẫu chè nghiên cứu Tên Địa phương chè Orthodox Status Collection lên men chè xanh Kangaita Non-men Kangaita bán lên men chè đen Murang'a lên men Bảng 2: thành phần Phytochemical chiết thô của mẫu trà trà xanh trà chè đen Orthodox Phenolics + - + Flavonoids + + + tecpen + + + Cardia glycosides + + + cardenolides + - + anthraquinon - + + alkaloids + + + Saponin + + + + Sự hiện diện của các chất chuyển hóa thứ cấp - Sự vắng mặt của chất chuyển hóa thứ cấp Bảng 3: hoạt động kháng khuẩn của dầu thô chiết xuất từ trà trà xanh, trà đen Orthodox và trà chiết xuất trà Conc. mgml-1 Staph aureus Escherichia Coli. Salmonella typhim Streptococcus faecolis albicans Cadida trà xanh 50 100 200 400 - 10 ± 0,0 15 ± 0,0 20 ± 0.0 - - 14 ± 0,0 18 ± 0.0 - - 5 ± 0,0 18 ± 0.0 - 12.0 ± 00 14,0 ± 00 15,0 ± 00 - - 1 ± 0.0 1 ± 0,4 Orthodox trà 50 100 200 400 - - 4 ± 0,2 8 ± 0,0 - - 6 ± 0,0 14 ± 0.0 - - - - - 10 ± 0,0 12 ± 0.0 - - - - Chè đen (Murang'a) 50 100 200 400 - - 6,5 ± 0,0 7,4 ± 0,2 - - 3,5 ± 0,0 14 ± 0,0 - 1 ± 0,0 ± 0,0 3 4 ± 0,0 - 2 ± 0,0 ± 5 0.0 6 ± 0,2 - 4 ± .002 6 ± 0.01 ± 0.01 9 Streptomycin 4.0mg / ml 20 ± 0,0 10 ± 0,0 15 ± 0,0 10 ± 0,0 25 ± 0.0 Cefadoxil 4.0mg / ml 20 ± 0,0 20 ± 0,0 20 ± 0,0 20 ± 0,0 10 ± 0.0 - Sự vắng mặt của hoạt động kháng khuẩn chữ số Ả Rập - đường kính ức chế trong mm 204 Bảng 4: Nồng độ ức chế tối thiểu của chất chiết xuất từ dung dịch nước trà trên chọn vi sinh vật chiết xuất trà Conc. mgml-1 Staph aureus Escherichia Coli Salmonella typhimurium Streptococcus faecolis Cadida albicans Trà xanh 400 200 150 100 50 25 - - - - + + - - - + + + - - + + + + - - - - + + - - - + + + Chính Thống trà 400 200 150 100 50 25 - - - - + + - - - + + + - - + + + + - - - - + + + + + + + + Chè đen (Murang'a) 400 200 150 100 50 25 - - - - + + - - - + + + + + + + + + - - - - + + - - - - + + - Không tăng trưởng quan sát + Tăng trưởng quan sát 4,0 Thảo luận và Kết luận Sự hiện diện của các chất chuyển hóa thứ cấp ( alkaloids, tecpen, saponin, tannin, flavonoid, glycosid tim, cardenolides anthroquinones và phenol) trong trà phần tăng cường các hoạt động kháng khuẩn và chống ký sinh trùng của trà xanh, đen và chính thống. Mặc dù sự hiện diện của các chất chuyển hóa thứ cấp tương tự như ma