Bioassay insecticides were tested b

Bioassay
insecticides were tested by rice-stem dipping method and the granular form insecticides were tested by dry residua film assay. Three replicates were maintained for each does of insecticides with water treated control. The treated insects were maintained at room temperature and the mortality was recorded at 4d after the treatment. The nymphs were considered dead if they were unable to show movement after gentle prodding with a fine brush. The data were subjected to probit analysis (Finney, 1971 ) after converting the observed mortality into corrected mortality by using Abbott’s formula (Abbott, 1925), for developing regression equations for dosage-mortality responses and to determine LC50 values. All the analyses were performed using SPSS (Version 10).
Procedure for rice-stem dipping method
The rice-stem dipping method (Zhuang et al, 1999) was employed for the determination of median lethal concentrations (LC50 values) of the insecticides viz buprofezin, imidacloprid,…….and colothianidin. For each insecticide, bracketing was done to fix the appropriate dosage range giving different levels of mortality of test insects. At least eight concentrations of insecticides were used in each bioassay. The rice seeding of susceptible variety were grown in cement tanks filled with puddled soil. The seeding of 55- to 60-day-old were pulled out with roots and washed thoroughly. The basal 10 cm long stem were cut and air-dried to remove excess water. Three rice stem were grouped and dipped into appropriate insecticide dilutions for 3 s. three replicates were maintained for each dose of insecticides with water treated control.
After the treated rice stem were air-died for a few minutes , individual rice stem were placed in 500-mL plastic cups with root portion placed in a mixture of vermicompost, sand and water. Fifteen early fifth-instar nymphs were introduced into each plastic cup using an aspirator and retained in the cup using muslin cloth tied with rubber band.
Procedure for dry residue film assay
The response of BPH populations to carbofuran was investigated by employing the dry residue film assay method. Bioassay was conducted by using clean glass, petri plates of 6 cm in diameter and glass vials of 25 mL capacity for serial dilution. Glasswares were soaked in soap water for 12 h and then washed in running water followed by rinsing with distilled water and then with acetone. After air drying, they were autoclaved at 110 0C for 6 h. Early fifth instar nymphs were selected for conducting the bioassay. Each bioassay included eight concentrations of the insecticide. The petri plates were labeled before treatment. Serial dilutions of insecticide were prepared using acetone. Inner surface of each Petri plate was coated with 0.5 mL of each insecticide dilution. After poured with the insecticide solution, the plates were swirled by tiling and rotating till the acetone evaporated for uniform coating of insecticide. Fifteen early fifth instar nymphs were introduced into each Petri plate by using an aspirator. No food was provided for 30 min. The nymphs were then transferred into the plastic cups containing rice stem with root portion placed in a mixture of vermicompost, sand and water as done in the rice-stem dipping method.

Kết quả (Việt) 2:

Xét nghiệm sinh học
trừ sâu đã được thử nghiệm bằng phương pháp ngâm gạo gốc và thuốc trừ sâu dạng hạt đã được thử nghiệm bởi khô khảo nghiệm phim residua. Ba lần lặp lại được duy trì cho mỗi loại có thuốc trừ sâu với kiểm soát nước được xử lý. Những con côn trùng được xử lý được duy trì ở nhiệt độ phòng và tỷ lệ tử vong được ghi nhận là 4ngày sau khi điều trị. Các nymphs được coi là đã chết nếu họ không thể để cho thấy phong trào sau khi thúc giục nhẹ nhàng bằng bàn chải tốt. Các số liệu được để phân tích probit (Finney, 1971) sau khi chuyển đổi tỷ lệ tử vong quan sát vào tử vong hiệu chỉnh bằng cách sử dụng công thức của Abbott (Abbott, 1925), cho việc phát triển các phương trình hồi quy để được trả lời liều lượng tử vong và để xác định giá trị LC50. Tất cả các phân tích được thực hiện bằng cách sử dụng SPSS (phiên bản 10).
Thủ tục cho phương pháp ngâm gạo gốc
Phương pháp ngâm gạo gốc (Zhuang et al, 1999) đã được sử dụng để xác định nồng độ gây chết trung bình (giá trị LC50) của thuốc trừ sâu viz buprofezin , imidacloprid, ...... .và colothianidin. Đối với mỗi loại thuốc trừ sâu, bracketing đã được thực hiện để khắc phục khoảng liều lượng thích hợp cho cấp độ khác nhau của tỷ lệ tử vong của các loài côn trùng thử nghiệm. Ít nhất tám nồng độ thuốc trừ sâu được sử dụng trong mỗi xét nghiệm sinh học. Gieo lúa giống mẫn cảm được trồng trong bể xi măng chứa đầy đất puddled. Các giống trên 55 đến 60 ngày tuổi được kéo ra có rễ và rửa kỹ. Các đáy 10 cm dài thân cây đã được cắt và máy sấy khô để loại bỏ nước dư thừa. Ba thân lúa đã được nhóm lại và nhúng vào dung dịch pha loãng thuốc trừ sâu thích hợp cho 3 s. ba lần lặp lại được duy trì cho mỗi liều thuốc trừ sâu với kiểm soát nước được xử lý.
Sau khi thân lúa được điều trị máy đã chết cho một vài phút, thân lúa cá nhân được đặt trong 500 mL ly nhựa với phần gốc được đặt trong một hỗn hợp của vermicompost, cát và nước. Mười lăm nymphs thứ năm instar đầu được giới thiệu vào mỗi cốc nhựa dùng một cái ống hút và giữ lại trong cốc dùng một miếng vải muslin gắn với cao su ban nhạc.
Thủ tục khô khảo nghiệm phim dư lượng
Các phản ứng của quần thể rầy nâu để carbofuran đã được điều tra bằng cách sử dụng các bộ phim thử nghiệm dư lượng khô phương pháp. Xét nghiệm sinh học đã được tiến hành bằng cách sử dụng thủy tinh sạch, tấm petri 6 cm, đường kính và kính lọ 25 mL dung lượng cho pha loãng. Glasswares bị ngâm trong nước xà phòng cho 12 h và sau đó rửa sạch dưới vòi nước sau đó rửa bằng nước cất và sau đó với acetone. Sau khi làm khô không khí, họ đã hấp ở 110 0 C trong 6 h. Đầu nymphs instar thứ năm đã được lựa chọn để tiến hành các xét nghiệm sinh học. Mỗi xét nghiệm sinh học bao gồm tám nồng độ của các thuốc trừ sâu. Các tấm petri được dán nhãn trước khi điều trị. Pha loãng nối tiếp của thuốc trừ sâu đã được chuẩn bị bằng cách sử dụng acetone. Bề mặt bên trong của mỗi tấm Petri được phủ với 0,5 mL của mỗi pha loãng thuốc trừ sâu. Sau khi đổ với giải pháp diệt côn trùng, các tấm được hoà quyện bởi ốp lát và quay cho đến khi bốc hơi acetone cho lớp phủ thống nhất của thuốc trừ sâu. Mười lăm nymphs đầu instar thứ năm đã được giới thiệu vào mỗi đĩa Petri bằng cách sử dụng một cái ống hút. Không có thực phẩm được cung cấp cho 30 phút. Các nymphs sau đó được chuyển vào cốc nhựa có chứa gốc gạo với phần gốc được đặt trong một hỗn hợp của vermicompost, cát và nước như thực hiện trong phương pháp ngâm gạo gốc.