Larval survival and growth of newly

Larval survival and growth of newly hatched zoea-I was compared with three
treatments using OTC-90 (OTC 90%+Sucrose 10%), ciprofloxacin and a probiotic
(Vib-con 10, USA) in pretreated sea water with alternate day partial water
exchange. Live feed and crab larvae were retained in the rearing tanks with the
help of a mesh screen of 70 and 300 µm during the rotifer and Artemia feeding
stage, respectively. Daily siphoning was done in each treatment to flushing out
uneaten live feed, dead larvae and waste. During rearing, heavy protozoan
infestation was observed in larvae of treatments with ciprofloxacin and
probiotics, but not in the treatment with OTC. The probable source of protozoan
infection was identified as supplied live feeds. To overcome the problem
protozoacide (Proto-D) was applied in live feed culture media. The application of
Proto-D reduced the protozoan attack. Laboratory cultures of crab larvae often
suffer severe mortality from disease, particularly from epibiotic bacteria and
larval mycosis (Armstrong et al. 1976, Hamasaki and Hatai 1993). In larval
rearing of S. serrata up to 80% of the mortality could be attributed to
bacteriological causes and oxytetracycline proved the best prophylactic chemical
for crab larvae (Nghia 2005). Pathogenic bacteria are considered as one of the
most serious causes for the high mortality of early crab larvae. It can be safely
assumed that all inputs (seawater, live feed and daily management in rearing)
into the culture tank are potential sources of infection (Blackshaw 2001).
Unfortunately, in the present trial, first 3 zoea batches from 3 hatched crabs
were survived up to zoea-IV stage, after mass mortality due to contamination in
larval rearing tanks. The representative portion of 1.9 million zoea from the last
hatched crab was carefully reared in the laboratory with the above 3 treatments
for a period of 15 days and representative numbers of megalopa were produced
from OTC treatment. Moreover, sudden mass mortality of megalopa was
observed due to luminous bacterial infection, which was overcome with
antibiotic (Furacin) treatment. The overall survival from zoea to megalopa stage
was about 1.3%, although rearing of 1.9 million zoea was not possible due to
limitation of rearing facilities in the laboratory. Studies of rearing of mud crab
larvae from Indonesia (Marjono and Arifin 1993), Vietnam (Hoang 1999),
Philippine (Quinitio 2001) and India (RGCA 2014) showed the survival rate of
3.2%, 3.7% , 24 % and 8%, respectively. In the present study, finally crablets
were produced from the megalopa after 10 days or rearing- a total of 25-27 days
required to produced crablet in controlled condition. Mud crab has a complex
life cycle, where the larvae go through five zoea stages (3-5 days each) and one
megalopa stage (8-10 days) before finally metamorphosing into the benthic first
juvenile crab stage (crablet, Fig. 1). This is the first time in Bangladesh to
produce crablet from artificial propagation of mud crab. In an attempt Sarowar
et al. (2012) reported only hatching of mud crab in captive condition in

Kết quả (Việt) 1:

Ấu trùng sống còn và phát triển của mới nở zoea-tôi đã so với baphương pháp điều trị sử dụng OTC-90 (OTC 90% + Sucrose 10%), ciprofloxacin và một probiotic(Vib lạnh 10, Hoa Kỳ) nước biển pretreated với ngày thay thế một phần nướctrao đổi. Sống nguồn cấp dữ liệu và cua ấu trùng được giữ lại trong các bể nuôi với cácgiúp đỡ của một màn hình lưới của 70 và 300 μm trong rotifer và Artemia cho ăn««giai đoạn, tương ứng. Cốt lõi hàng ngày đã được thực hiện trong mỗi lần chữa trị để xả rauneaten thức ăn sống, chết ấu trùng và chất thải. Trong quá trình nuôi, nặng protozoanphá hoại được quan sát thấy ở các ấu trùng của phương pháp điều trị với ciprofloxacin vàchế phẩm sinh học, nhưng không phải trong điều trị với OTC. Nguồn có thể xảy ra của protozoannhiễm trùng này được xác định là cung cấp nguồn cấp dữ liệu trực tiếp. Để khắc phục vấn đềprotozoacide (tiền-D) đã được áp dụng trong truyền thông văn hóa nguồn cấp dữ liệu trực tiếp. Việc áp dụngProto-D giảm cuộc tấn công ký. Phòng thí nghiệm nền văn hóa của cua ấu trùng thườngbị nghiêm trọng tỷ lệ tử vong từ bệnh, đặc biệt là từ vi khuẩn epibiotic vàẤu trùng mycosis (Armstrong et al. 1976, Hamasaki và Hatai năm 1993). Ở ấu trùngnuôi của S. serrata lên đến 80% của tỷ lệ tử vong có thể được quy chovi khuẩn nguyên nhân và oxytetracycline chứng minh các tế dự phòng tốt nhất hóa họccho cua các ấu trùng (nghĩa năm 2005). Vi khuẩn gây bệnh được coi là một trong cácnghiêm trọng nhất nguyên nhân tử vong cao đầu cua ấu trùng. Nó có thể một cách an toàngiả định rằng tất cả độc (nước biển, thức ăn sống và quản lý hàng ngày nuôi)vào các bồn chứa văn hóa là nguồn tiềm năng của nhiễm trùng (Blackshaw năm 2001).Thật không may, trong phiên tòa hiện nay, lần đầu tiên 3 zoea lô từ 3 nở cuađã sống sót đến giai đoạn zoea IV, sau khi khối lượng tỷ lệ tử vong do ô nhiễm trongxe tăng nuôi ấu. Phần đại diện của 1.900.000 zoea từ cuối cùngnở cua được nuôi dưỡng cẩn thận trong phòng thí nghiệm với các phương pháp điều trị 3 ở trêntrong một thời gian của 15 ngày và số đại diện của megalopa đã được sản xuấttừ OTC điều trị. Hơn nữa, tỷ lệ tử vong đột ngột khối lượng của megalopa làquan sát do nhiễm trùng do vi khuẩn sáng, mà đã được khắc phục vớiđiều trị kháng sinh (Furacin). Sự sống còn tổng thể từ zoea để megalopa giai đoạnlà khoảng 1,3%, mặc dù nuôi dạy 1.900.000 zoea đã không thể dogiới hạn của nuôi Tiện nghi trong phòng thí nghiệm. Nghiên cứu về nuôi dạy con cua bùnẤu trùng ăn từ Indonesia (Marjono và thành năm 1993), Việt Nam (hoàng 1999),Philippines (Quinitio 2001) và Ấn Độ (RGCA 2014) cho thấy tỷ lệ sống sót của3,2%, 3,7%, 24% và 8%, tương ứng. Trong nghiên cứu hiện nay, cuối cùng crabletsđược sản xuất từ megalopa sau 10 ngày hoặc nuôi-tổng cộng 25-27 ngàycần thiết để sản xuất crablet trong tình trạng kiểm soát. Cua có khu phức hợpchu kỳ cuộc sống, nơi ấu trùng đi qua 5 giai đoạn zoea (3-5 ngày mỗi) và mộtmegalopa giai đoạn (8-10 ngày) trước khi cuối cùng metamorphosing vào đầu tiên benthicvị thành niên cua các giai đoạn (crablet, hình 1). Đây là lần đầu tiên ở Bangladesh đểsản xuất crablet từ các tuyên truyền nhân tạo của cua. Trong một nỗ lực Sarowaret al. (2012) báo cáo chỉ nở của cua trong các điều kiện giam giữ trong

Kết quả (Việt) 2:

Sự sống còn và phát triển của ấu trùng mới nở zoea-I được so sánh với ba
phương pháp điều trị bằng cách sử dụng OTC-90 (OTC 90% + Sucrose 10%), ciprofloxacin và một probiotic
(Vib-con 10, Hoa Kỳ) trong nước biển xử lý sơ bộ với ngày thay thế một phần nước
trao đổi. Động vật sống và ấu trùng cua được giữ lại trong bể nuôi với
sự giúp đỡ của một màn hình mắt lưới của 70 và 300 mm trong luân trùng và Artemia cho ăn
giai đoạn, tương ứng. Bòn rút hàng ngày được thực hiện trong từng điều trị để bừng ra
thức ăn sống ăn thừa, ấu trùng chết và chất thải. Trong thời gian nuôi, động vật nguyên sinh nặng
phá hoại đã được quan sát thấy ở ấu trùng của phương pháp trị liệu bằng ciprofloxacin và
chế phẩm sinh học, nhưng không phải trong điều trị với OTC. Các nguồn có thể của các sinh vật đơn bào
nhiễm trùng đã được xác định là cung cấp thức ăn sống. Để khắc phục những vấn đề
protozoacide (Proto-D) đã được áp dụng trong môi trường nuôi cấy trực tiếp thức ăn. Các ứng dụng của
Proto-D giúp làm giảm các cuộc tấn công sinh vật đơn bào. Phòng thí nghiệm các nền văn hóa của ấu trùng cua thường
bị tử vong nghiêm trọng do bệnh, đặc biệt là từ vi khuẩn epibiotic và
bệnh nấm ấu trùng (Armstrong et al. 1976, Hamasaki và Hatai 1993). Trong giai đoạn ấu trùng
nuôi S. serrata lên đến 80% tỷ lệ tử vong có thể do
nguyên nhân vi khuẩn và oxytetracycline chứng minh các hóa chất phòng bệnh tốt nhất
cho ấu trùng cua (Nghĩa 2005). Vi khuẩn gây bệnh được coi là một trong những
nguyên nhân nghiêm trọng nhất đối với tỷ lệ tử vong cao của ấu trùng cua sớm. Nó có thể là một cách an toàn
giả định rằng tất cả các yếu tố đầu vào (nước biển, thức ăn sống và quản lý hàng ngày trong nuôi)
vào bể nuôi là nguồn tiềm năng của nhiễm trùng (Blackshaw 2001).
Thật không may, trong nghiên cứu này, 3 lô zoea đầu tiên từ 3 cua nở
đã sống sót đến giai đoạn zoea-IV, sau khi chết hàng loạt do ô nhiễm trong
bể nuôi ấu trùng. Các phần đại diện của 1,9 triệu zoea từ cuối cùng
cua nở được nuôi cẩn thận trong phòng thí nghiệm với 3 phương pháp điều trị trên
trong thời hạn 15 ngày và số đại diện của megalopa được sản xuất
từ việc điều trị OTC. Hơn nữa, tỷ lệ tử vong đột ngột khối lượng của megalopa đã được
quan sát thấy do nhiễm vi khuẩn phát sáng, mà đã được khắc phục với
kháng sinh (Furacin) điều trị. Sự sống còn tổng thể từ zoea đến giai đoạn megalopa
khoảng 1,3%, mặc dù nuôi là 1,9 triệu zoea là không thể do sự
hạn chế của các cơ sở nuôi trong phòng thí nghiệm. Các nghiên cứu về nuôi cua
ấu trùng từ Indonesia (Marjono và Arifin 1993), Việt Nam (Hoàng 1999),
Philippine (Quinitio 2001) và Ấn Độ (RGCA 2014) cho thấy tỷ lệ sống của
3,2%, 3,7%, 24% và 8%, tương ứng. Trong nghiên cứu này, cuối cùng crablets
được sản xuất từ các megalopa sau 10 ngày hoặc rearing- tổng cộng 25-27 ngày
cần thiết để crablet sản xuất trong điều kiện kiểm soát. Cua có một phức tạp
chu kỳ cuộc sống, ở đó ấu trùng đi qua năm giai đoạn zoea (3-5 ngày mỗi) và một
giai đoạn megalopa (8-10 ngày) trước khi cuối cùng đã biến thái thành những sinh vật đáy đầu tiên
giai đoạn cua vị thành niên (crablet, Fig. 1) . Đây là lần đầu tiên ở Bangladesh để
sản xuất crablet từ cấy nhân tạo các cua. Trong một nỗ lực Sarowar
et al. (2012) đã báo cáo chỉ nở của cua trong điều kiện nuôi nhốt ở