(cv Nipponbare) over-expressing bar

(cv Nipponbare) over-expressing barley hva1 gene (encoding a Late Embryogenesis Abundant, LEA) protein. This
group exposed 3-week-old transformed and untransformed
seedlings to two rounds of stress (200 mM NaCl for 10 d,
followed by a recovery period of 10 d and a second round
of 50 mM NaCl stress for 30 d) and noted that the
transgenic plants maintained a higher growth rate initially
and showed better recovery on removal of stress. Sakamoto
et al. (1998) genetically engineered rice with the ability to
synthesize glycinebetaine by introducing the codA gene
(encoding for choline oxidase, obtained from the soil
bacterium Arthrobacter globiformis). Levels of glycinebetaine were as high as 1 and 5 μmol per gram fresh weight
of leaves in two types of transgenic plant in which choline
oxidase was targeted to the chloroplasts (ChlCOD plants)
and to the cytosol (CytCOD plants), respectively. Although
treatment with 0.15 M NaCl inhibited the growth of both
wild-type (WT) and transgenic plants, the transgenic plants
recovered faster than the wild type plants and resumed
normal growth after removal of the salt stress. It was
indicated that ChlCOD plants are more tolerant than
CytCOD plants to photoinhibition under salt stress (and
low-temperature stress). Saijo et al. (2000) generated
transgenic rice (cv Notohikari) plants over-expressing a
Ca2+-dependent protein kinase (OsCDPK7). The youngest
leaves wilted 3 days after salt stress of 200 mM NaCl in
WT plants, while transgenic plants exhibited greater
tolerance. Mohanty et al. (2002) generated transgenic lines
of indica rice Pusa basmati 1 (PB 1) by Agrobacteriummediated transformation with codA gene. In this work,
more than 50% of the transgenic plants could survive salt
stress and set seed whereas the WT plants failed to recover.
Garg et al. (2002) generated transgenic indica rice PB 1,
expressing the fusion gene comprising both trehalose-6-
phosphate synthase and trehalose-6-phosphate phosphatase
obtained from Escherichia coli. Compared to WT rice,
transgenic lines exhibited sustained plant growth, less
photo-oxidative damage, and more favorable mineral
balance under salt (also drought and low temperature)
stress conditions. Jang et al. (2003) reported the generation
of trehalose-producing, transgenic japonica rice plants by
the introduction of a gene encoding a bifunctional fusion
(TPSP) of the trehalose-6-phosphate (T-6-P) synthase (TPS)
and T-6-P phosphatase (TPP) of E. coli, under the control
of the maize ubiquitin promoter. Increased trehalose
accumulation in transgenic plants resulted in increased
tolerance to drought, salt, and cold. Transgenic R1 rice
overexpressing p5cs (encoding pyrroline carboxylate synthase, an enzyme that rate-limits proline biosynthesis)
showed increased biomass than the control plants under
salt stress and water stress conditions (Zhu et al. 1998).
Considering that mechanisms that reduce cytosolic Na+
concentrations could provide a degree of tolerance to

Kết quả (Việt) 1:

(cv Nipponbare) quá hằn lúa mạch hva1 gen (mã hóa một muộn Embryogenesis phong phú, LEA) protein. Điều nàyNhóm tiếp xúc 3 tuần tuổi chuyển đổi và untransformedcây giống phải hai vòng của căng thẳng (200 mM NaCl 10 d,sau một thời gian phục hồi của 10 d và một vòng hai50 mm NaCl căng thẳng cho 30 d) và lưu ý rằng cáccây trồng biến đổi gen duy trì một tốc độ tăng trưởng cao hơn ban đầuvà cho thấy hồi phục tốt hơn về loại bỏ căng thẳng. Sakamotoet al. (1998) genetically engineered rice với khả năngTổng hợp glycinebetaine bằng cách giới thiệu các gene codA(mã hóa cho choline oxidase, thu được từ đấtvi khuẩn Arthrobacter globiformis). Các cấp độ của glycinebetaine đã cao như 1 và 5 μmol / gam trọng lượng tươilá trong hai loại thực vật biến đổi gen trong đó cholineoxidase được nhắm mục tiêu đến các Lạp lục (ChlCOD cây)và để thích (nhà máy CytCOD), tương ứng. Mặc dùđiều trị bằng 0,15 M NaCl ức chế sự phát triển của cả hailoại hoang (WT) và cây trồng biến đổi gen, cây biến đổi genphục hồi nhanh hơn so với các loài thực vật hoang dã loại và tiếp tục trở lạitốc độ tăng trưởng bình thường sau khi loại bỏ căng thẳng muối. Nó đãchỉ ra rằng ChlCOD nhà máy là hơn khoan dung hơnCytCOD nhà máy để photoinhibition bị căng thẳng muối (vànhiệt độ thấp căng thẳng). Saijo et al. (2000) được tạo rabiến đổi gen gạo (cv Notohikari) cây trên-bày tỏ mộtCa2 +-phụ thuộc vào protein kinase (OsCDPK7). Con útlá wilted 3 ngày sau khi các căng thẳng muối 200 mm NaCl trongWT cây, trong khi biến đổi gen thực vật trưng bày lớn hơnkhoan dung. Mohanty et al. (2002) tạo ra dòng biến đổi genindica gạo basmati Pusa 1 (PB 1) bởi Agrobacteriummediated chuyển đổi với codA gen. Trong tác phẩm này,hơn 50% các cây trồng biến đổi gen có thể sống sót muốicăng thẳng và đặt hạt giống trong khi cây WT thất bại trong việc phục hồi.Garg et al. (2002) tạo ra biến đổi gen indica gạo PB 1,thể hiện gen tổng hợp bao gồm cả trehalose-6 -photphat synthase và trehalose-6-phosphate phosphatasethu được từ Escherichia coli. So với WT gạo,trưng bày dòng biến đổi gen thực vật duy trì tốc độ tăng trưởng, ít hơnhình ảnh-oxy hóa thiệt hại, và thuận lợi hơn khoángcân bằng theo muối (còn hạn hán và nhiệt độ thấp)Các điều kiện căng thẳng. Jang et al. (2003) báo cáo các thế hệthực vật biến đổi gen, sản xuất trehalose japonica gạo bởisự ra đời của một gen mã hóa bifunctional fusion(TPSP) của trehalose-6-phosphate (T-6-P) synthase (TPS)và T-6-P phosphatase (TPP) của E. coli, dưới sự kiểm soátcủa promoter ngô ubiquitin. Tăng trehalosetích lũy trong thực vật biến đổi gen dẫn đến gia tăngkhả năng chịu hạn hán, muối và lạnh. Biến đổi gen R1 gạokết p5cs (mã hóa pyrroline carboxylate synthase, một loại enzyme mà sinh tổng hợp proline mức giới hạn)cho thấy sinh khối tăng hơn so với các nhà máy kiểm soát dướicăng thẳng muối và nước căng thẳng điều kiện (Zhu et al. năm 1998).Xem xét cơ chế đó mà giảm cytosolic Na +nồng độ có thể cung cấp một mức độ khoan dung để

Kết quả (Việt) 2:

(cv Nipponbare) qua thể hiện gen lúa mạch hva1 (mã hóa, LEA phôi Late dồi dào) protein. Điều này
nhóm tiếp xúc 3 tuần tuổi biến đổi và chưa chuyển đổi
cây giống để hai vòng căng thẳng (200 mM NaCl cho 10 d,
theo sau là một khoảng thời gian phục hồi của 10 d và một vòng thứ hai
của 50 mM NaCl căng thẳng cho 30 d) và lưu ý rằng
cây chuyển gen duy trì tốc độ tăng trưởng cao hơn ban đầu
và cho thấy sự phục hồi tốt hơn về loại bỏ căng thẳng. Sakamoto
et al. (1998) biến đổi gen lúa có khả năng
tổng hợp glycinebetaine bằng cách giới thiệu các gen Coda
(mã hóa cho choline oxidase, thu được từ đất
globiformis vi khuẩn Arthrobacter). Mức glycinebetaine đã cao đến 1 và 5 mmol mỗi gram trọng lượng tươi
của lá trong hai loại cây trồng biến đổi gen trong đó choline
oxidase được nhắm mục tiêu đến các lục lạp (cây ChlCOD)
và bào tương (cây CytCOD), tương ứng. Mặc dù
điều trị bằng 0,15 M NaCl ức chế sự tăng trưởng của cả hai
hoang dã (WT) và cây trồng biến đổi gen, cây chuyển gen
phục hồi nhanh hơn so với cây hoang dại và tiếp tục
phát triển bình thường sau khi loại bỏ sự căng thẳng muối. Nó đã được
chỉ ra rằng thực vật ChlCOD được khoan dung hơn
các nhà máy CytCOD để photoinhibition dưới mặn (và
stress nhiệt độ thấp). Saijo et al. (2000) tạo ra
lúa biến đổi gen (cv Notohikari) cây qua thể hiện một
Ca2 + protein kinaza -dependent (OsCDPK7). Là con út
lá héo 3 ngày sau khi căng thẳng muối của 200 mM NaCl trong
nhà máy WT, trong khi các cây chuyển gen trưng bày lớn hơn
khoan dung. Mohanty et al. (2002) tạo ra dòng chuyển gen
của lúa indica Pusa Basmati 1 (PB 1) bằng cách chuyển đổi Agrobacteriummediated với gen Coda. Trong tác phẩm này,
hơn 50% cây chuyển gen có thể tồn tại muối
căng thẳng và đặt hạt giống trong khi các nhà máy WT không hồi phục.
Garg et al. (2002) tạo ra indica chuyển gen lúa PB 1,
thể hiện các gen tổng hợp bao gồm cả trehalose-6-
phosphate synthase và phosphatase trehalose-6-phosphate
lấy từ Escherichia coli. So với gạo WT,
dòng chuyển gen biểu hiện tăng trưởng bền vững thực vật, ít
ảnh hỏng oxy hóa và khoáng sản thuận lợi hơn
sự cân bằng trong muối (còn hạn hán và nhiệt độ thấp)
điều kiện căng thẳng. Jang et al. (2003) báo cáo các thế hệ
của, cây lúa japonica chuyển gen trehalose sản xuất bởi
sự ra đời của một gen mã hóa một hợp nhị chức
(TPSP) của trehalose-6-phosphate (T-6-P) synthase (TPS)
và T-6 phosphatase -P (TPP) của E. coli, dưới sự kiểm soát
của promoter ubiquitin ngô. Tăng trehalose
tích lũy trong cây chuyển gen dẫn tới tăng
khả năng chịu hạn, mặn và lạnh. Lúa chuyển gen R1
biểu hiện tốt p5cs (mã hóa pyrroline carboxylate synthase, một loại enzyme có tỷ lệ hạn proline sinh tổng hợp)
cho thấy sinh khối tăng hơn so với các nhà máy kiểm soát thuộc
mặn và điều kiện căng thẳng về nước (Zhu et al. 1998).
Xét rằng cơ chế giảm cytosolic Na +
nồng độ có thể cung cấp một mức độ khoan dung để