One of the reasons for the strict s

One of the reasons for the strict standardization of the test 
procedures  is  that many  factors can  influence  the  size of 
the zone of inhibition including:
•  The bacterial concentration of the inoculum: this is 
of great importance and is usually addressed by 
ensuring the turbidity of the inoculum is adjusted to 
a 0.5 McFarland opacity standard. The aim is to have 
a dense lawn of bacterial growth with the individual 
colonies just touching each other (Figs 6.1 and 6.2).
•  The test medium: Mueller–Hinton or modifications 
of this medium (Iso-sensitest agar, Oxoid) is usually 
chosen for routine susceptibility tests. It gives  
good batch-to-batch reproducibility; is low in  sulphonamide, trimethoprim and tetracycline 
inhibitors; and most pathogens grow satisfactorily 
on the medium. However, quality control checks 
should be carried out on each new batch of 
medium.
Excessive amounts of thymidine or thymine in  
a test medium can inhibit sulphonamides and 
trimethoprim, yielding smaller zones or no zones at 
all. Variation in divalent cations, mainly magnesium 
and calcium, will affect the zone size of tetracycline, 
polymyxin and aminoglycoside tests against 
Pseudomonas aeruginosa.
For bacteria, such as streptococci, that are unable  
to grow on Mueller–Hinton agar, blood agar with 
5–10% defibrinated sheep blood can be used. 
However, the zone size, particularly for nafcillin, 
novobiocin and meticillin, will be 2–3 mm smaller 
than the normal control limits (Figs 6.3 and 6.4).
The depth of the agar and the pH of the medium 
must be standardized as these may also have an 
effect on the zone size (see Quality Control 
Methods).
•  The antimicrobial agent and its concentration in the 
disc: the ability of the agent to diffuse through the 
agar varies and the zone of inhibition for some 
drugs, such as streptomycin, is always comparatively 
small. The concentrations of the antimicrobial agents 
in the discs have been chosen to give zone sizes that 
correlate with achievable serum levels in the patient. 
The zone sizes and their interpretation are given in 
Table 6.1. At present there are insufficient data for 
the correlation of in vitro tests and the clinical use of 
topical agents for skin, eye and ear conditions. The 
potency of the agent in the discs must be maintained 
and storage and handling methods are discussed in 
Quality Control Procedures.
•  Incubation conditions: these have been standardized 
for routine susceptibility tests to aerobic incubation 
at 35°C for 16–18 hours and 24 hours for the 
staphylococci. The plates must not be incubated 
under an increased concentration of carbon dioxide 

Kết quả (Việt) 1:

Một trong những lý do cho các tiêu chuẩn nghiêm ngặt của kiểm tra thủ tục là nhiều yếu tố có thể ảnh hưởng đến kích thước của khu vực sự ức chế bao gồm:• Nồng độ vi khuẩn của inoculum: đây là tầm quan trọng lớn và thường được giải quyết bằng cách đảm bảo độ đục của inoculum được điều chỉnh để một cách 0.5 McFarland opacity tiêu chuẩn. Mục đích là để có một bãi cỏ dày đặc của vi khuẩn phát triển với các cá nhân địa chỉ cần chạm vào nhau (Figs 6.1 và 6.2).• Các phương tiện thử nghiệm: Mueller-Hinton hoặc sửa đổi của phương tiện này (Iso-sensitest agar, Oxoid) thường lựa chọn cho các bài kiểm tra thường xuyên tính nhạy cảm. Nó cung cấp cho reproducibility lô hàng loạt tốt; là ít sulphonamide, trimethoprim và tetracycline thuốc ức chế; và hầu hết các tác nhân gây bệnh phát triển một cách Mỹ mãn trên trung bình. Tuy nhiên, kiểm soát chất lượng kiểm tra nên được thực hiện trên mỗi tập mới phương tiện truyền thông.Số tiền quá nhiều thymidine hoặc thymine trong một phương tiện thử nghiệm có thể ức chế Sulphonamide và Trimethoprim, yielding nhỏ khu vực hoặc các khu không có tại Tất cả. Biến đổi trong các tương cation, chủ yếu là magiê và canxi, sẽ ảnh hưởng đến khu vực kích thước của tetracycline, polymycin và aminoglycoside thử nghiệm chống lại Pseudomonas aeruginosa.Đối với vi khuẩn, chẳng hạn như Streptococcus, đó là không thể phát triển trên Mueller-Hinton agar, máu agar với 5-10% defibrinated cừu máu có thể được sử dụng. Tuy nhiên, kích cỡ khu vực, đặc biệt là cho nafcillin, novobiocin và meticillin, sẽ có 2-3 mm nhỏ so với các giới hạn kiểm soát bình thường (Figs 6.3 và 6.4).Độ sâu của agar và độ pH trung bình phải được chuẩn hóa như này cũng có thể có một có hiệu lực vào kích thước của khu vực (xem kiểm soát chất lượng Phương pháp).• Tác nhân kháng khuẩn và nồng độ của nó trong các đĩa: khả năng của các đại lý để khuếch tán thông qua các Agar khác nhau và khu vực của sự ức chế cho một số thuốc, chẳng hạn như streptomycin, luôn luôn là tương đối nhỏ. Nồng độ của các tác nhân kháng khuẩn trong các đĩa đã được chọn để cung cấp cho khu vực kích thước mà tương ứng với mức độ đạt được huyết thanh ở bệnh nhân. Kích thước khu vực và giải thích của họ được đưa ra trong Bảng 6.1. Hiện nay không có đủ dữ liệu cho các mối tương quan của các xét nghiệm trong ống nghiệm và sử dụng lâm sàng Đại lý tại chỗ cho các điều kiện da, mắt và tai. Các tiềm năng của các đại lý ở các đĩa phải được duy trì và lưu trữ và xử lý các phương pháp được thảo luận trong Quy trình kiểm soát chất lượng.• Ấp điều kiện: có được tiêu chuẩn hóa cho bài kiểm tra thường xuyên tính nhạy cảm để ấp hiếu khí 35° c 16 – 18 giờ và 24 giờ cho các staphylococci. Các mảng không phải ủ theo nồng độ tăng lên của khí carbon dioxide

Kết quả (Việt) 2:

Một trong những lý do cho các tiêu chuẩn nghiêm ngặt của các kiểm tra 
thủ tục là có nhiều yếu tố có thể ảnh hưởng đến kích thước của 
vùng ức chế bao gồm:
• Nồng độ vi khuẩn của các tác nhân gây bệnh: đây là 
rất quan trọng và thường được giải quyết bằng cách 
đảm bảo độ đục của gây bệnh được điều chỉnh để 
một tiêu chuẩn opacity 0,5 McFarland. Mục đích là để có 
một bãi cỏ dày đặc của sự tăng trưởng của vi khuẩn với các cá nhân 
thuộc địa chỉ chạm vào nhau (hình 6.1 và 6.2).
• Các phương tiện kiểm tra: Mueller-Hinton hoặc sửa đổi 
của môi trường này (Iso-sensitest thạch, Oxoid) thường được 
chọn cho thử nghiệm nhạy cảm thường xuyên. Nó cung cấp cho  
lô-to-lô tốt tái lặp; là thấp trong sulphonamide, trimethoprim và tetracycline 
ức chế; và hầu hết các tác nhân gây bệnh phát triển một cách thỏa đáng 
trên trung bình. Tuy nhiên, kiểm tra kiểm soát chất lượng 
cần phải được thực hiện trên mỗi lô mới 
vừa.
Một lượng quá mức của thymidine hay thymine trong  
một môi trường thử nghiệm có thể ức chế sulphonamide và 
trimethoprim, năng suất khu nhỏ hơn hoặc không có khu vực ở 
tất cả. Sự khác nhau về các cation hóa trị hai, chủ yếu là magiê 
và canxi, sẽ ảnh hưởng đến kích thước vùng tetracycline, 
kiểm tra polymyxin và aminoglycosid chống 
Pseudomonas aeruginosa.
Đối với vi khuẩn, chẳng hạn như liên cầu, mà không thể  
phát triển trên môi trường thạch Mueller-Hinton, thạch máu với 
5-10 % defibrinated máu cừu có thể được sử dụng. 
Tuy nhiên, kích thước khu vực, đặc biệt là cho nafcillin, 
novobiocin và meticillin, sẽ nhỏ hơn 2-3 mm 
so với giới hạn bình thường kiểm soát (hình 6.3 và 6.4).
Độ sâu của thạch và độ pH của các phương tiện 
phải được tiêu chuẩn hóa như những cũng có thể có 
hiệu lực vào kích thước khu vực (xem Kiểm soát chất lượng 
phương pháp).
• các tác nhân kháng khuẩn và nồng độ của nó trong 
đĩa: khả năng của các đại lý để khuếch tán qua 
thạch khác nhau và các khu vực của sự ức chế đối với một số 
loại thuốc, chẳng hạn như streptomycin, luôn luôn là tương đối 
nhỏ. Nồng độ các chất kháng khuẩn 
trong đĩa đã được chọn để cung cấp các kích cỡ vùng đó 
tương quan với nồng độ huyết thanh đạt được trong bệnh nhân. 
Các vùng kích thước và giải thích của họ được đưa ra trong 
bảng 6.1. Hiện nay không có đủ dữ liệu cho 
các mối tương quan trong ống nghiệm kiểm tra và sử dụng lâm sàng của 
đại lý tại chỗ cho da, mắt và tai điều kiện. Các 
hiệu lực của các đại lý trong các đĩa phải được duy trì 
và lưu trữ và xử lý các phương pháp được thảo luận trong 
thủ tục kiểm soát chất lượng.
• Các điều kiện ủ bệnh: những điều này đã được tiêu chuẩn hóa 
cho thử nghiệm nhạy cảm thường xuyên để ủ hiếu khí 
ở 35 ° C trong 16-18 giờ và 24 giờ cho 
tụ cầu. Các tấm không được ủ 
dưới nồng độ tăng lên của khí carbon dioxide