Cryptosporidiosis is caused by prot

Cryptosporidiosis is caused by protozoan parasites of the genus Cryptosporidium, in which there are 18 ‘valid’ species. In livestock, C. parvum, C. andersoni, C. baileyi, C. meleagridis and C. galli have been reported to cause morbidity and outbreaks of disease. Laboratory identification is required to confirm diagnosis. Cryptosporidium parvum cryptosporidiosis causes scour in young, unweaned mammalian livestock, however, weaned and adult animals can also become infected. Signs range from a mild inapparent infection to severe scouring, and the young, old or immunocompromised are most susceptible. Mortality is low. Weaned and adult animals normally do not exhibit signs of disease, but will excrete oocysts that may contaminate the environment. Cryptosporidium andersoni cryptosporidiosis affects the digestive glands of the abomasum of older calves and adult cattle. Some infected animals exhibit reduced weight gain, but do not develop diarrhoea. Cryptosporidium baileyi, C. meleagridis and C. galli cryptosporidiosis are diseases of birds. Cryptosporidium baileyi affects primarily the bursa of Fabricius and cloaca of gallinaceous birds, C. meleagridis affects primarily the ileum of turkey poults and C. galli infects the surface, ductal, and glandular epithelium of the proventriculusof adult hens and some wild birds. Identification of the agent: There is no prescribed test for cryptosporidium infection. The demonstration of cryptosporidium species oocysts or cryptosporidium antigen in a properly collected and submitted sample is sufficient for a positive diagnosis. Diagnosis is established microscopically, with the acid-fast Ziehl–Neelsen or auramine phenol methods using unconcentrated or concentrated faecal smears. Microscopy-based methods for detecting oocysts and enzyme-linked immunosorbent assays for detecting cryptosporidium antigens are relatively insensitive, but are sufficiently sensitive for detecting clinical cases. Neither tinctorial- nor fluorescence-based stains can determine the species of cryptosporidium present if the oocysts fall within the size range of 4– 6 µm. These methods can detect oocysts in clinically ill animals, but sometimes are not sufficiently sensitive to detect infection in clinically normal animals. Nucleic acid detection tests have a greater sensitivity. The polymerase chain reaction (PCR) and restriction fragment length polymorphism (RFLP) and/or sequencing can be used to determine some or all cryptosporidium species/genotypes or subtypes. Those typing and subtyping systems used for veterinary (and human) samples should also be used for environmental samples, to avoid any confusion arising from using different systems during the investigation of disease outbreaks with both veterinary and public health implications. However the sensitivity of subtyping systems will need to be increased so that they can be used with clinical and environmental samples containing small numbers (

Kết quả (Việt) 1:

Cryptosporidiosis được gây ra bởi ký sinh trùng protozoan thuộc chi Cryptosporidium, trong đó có 18 loài 'giá trị'. Trong chăn nuôi, C. parvum, C. andersoni, C. baileyi, C. meleagridis và C. galli đã được báo cáo để gây ra bệnh tật và bùng phát của bệnh. Phòng thí nghiệm xác định là cần thiết để xác nhận chẩn đoán. Cryptosporidium parvum cryptosporidiosis nguyên nhân sự lau trong chăn nuôi động vật có vú nhỏ, unweaned, Tuy nhiên, động vật cai và dành cho người lớn cũng có thể trở thành bị nhiễm. Dấu hiệu bao gồm từ một inapparent nhiễm nhẹ đến nặng cọ rửa, và trẻ, già hoặc immunocompromised là nhạy cảm nhất. Tỷ lệ tử vong là thấp. Động vật cai và dành cho người lớn bình thường không thể hiện các dấu hiệu của bệnh, nhưng sẽ bài tiết oocysts mà có thể làm ô nhiễm môi trường. Cryptosporidium andersoni cryptosporidiosis ảnh hưởng đến các tuyến tiêu hóa abomasum con bê lớn và người lớn gia súc. Một số động vật bị nhiễm bệnh triển lãm giảm cân, nhưng không phát triển tiêu chảy. Cryptosporidium baileyi, C. meleagridis và C. galli cryptosporidiosis là bệnh của các loài chim. Cryptosporidium baileyi ảnh hưởng đến chủ yếu là bursa của Fabricius và cloaca của các loài chim gallinaceous, C. meleagridis ảnh hưởng đến chủ yếu là hồi tràng của Thổ Nhĩ Kỳ poults và C. galli lây nhiễm bề mặt, ductal và glandular biểu mô của gà mái dành cho người lớn của proventriculusof và một số loài chim hoang dã. Nhận dạng của các đại lý: đó là không có thử nghiệm theo quy định cho các nhiễm trùng cryptosporidium. Các cuộc biểu tình của cryptosporidium loài oocysts hoặc cryptosporidium kháng nguyên trong mẫu đúng cách thu thập và gửi lên là đủ cho một chẩn đoán tích cực. Chẩn đoán thành lập microscopically, với các acid-fast Ziehl – Neelsen hoặc auramine phenol phương pháp bằng cách sử dụng unconcentrated hoặc tập trung faecal smears. Kính hiển vi dựa trên phương pháp để phát hiện oocysts và immunosorbent liên kết với enzyme thử nghiệm để phát hiện kháng nguyên cryptosporidium là tương đối không nhạy cảm, nhưng đủ nhạy cảm để phát hiện các trường hợp lâm sàng. Không phải tinctorial-cũng không phải dựa trên sự phát huỳnh quang vết bẩn có thể xác định loài cryptosporidium hiện nay nếu các oocysts nằm trong phạm vi kích thước của 4-6 μm. Những phương pháp này có thể phát hiện oocysts lâm sàng bệnh động vật, nhưng đôi khi không đủ nhạy cảm để phát hiện các nhiễm trùng ở động vật bình thường lâm sàng. Các xét nghiệm phát hiện axit nucleic có một độ nhạy cảm cao hơn. Phản ứng chuỗi polymerase (PCR) và hạn chế mảnh dài đa hình (RFLP) và/hoặc trình tự có thể được sử dụng để xác định một số hoặc tất cả cryptosporidium loài/kiểu gen hoặc phân nhóm. Những người đánh máy và subtyping hệ thống được sử dụng cho các mẫu thuốc thú y (và con người) cũng nên được sử dụng cho các mẫu về môi trường, để tránh bất kỳ rắc rối phát sinh từ việc sử dụng các hệ thống khác nhau trong quá trình điều tra của dịch bệnh với thuốc thú y và sức khỏe cộng đồng ý nghĩa. Tuy nhiên sự nhạy cảm của subtyping hệ thống sẽ cần phải được tăng lên do đó họ có thể được sử dụng với lâm sàng và môi trường mẫu có chứa số lượng nhỏ (< 10) của oocysts. Các giới hạn hiện tại của các loài phân biệt đối xử subtyping hệ thống là rằng họ là chỉ áp dụng đối với C. parvum và C. hominis. Phân biệt đối xử subtyping hệ thống phòng không-'parvum' và không 'hominis' mầm bệnh (bao gồm phần lớn các tác nhân gây bệnh gia súc) vẫn chưa được phát triển. Các mẫu vật để chẩn đoán chính nên được thu thập trong quá trình nhiễm cấp tính, và nên được xử lý càng sớm càng tốt, lý tưởng nhất, trong vòng 24 giờ. Vận chuyển đến các phòng thí nghiệm cần theo quy định International Air Transport Association, được tóm tắt trong bộ sưu tập chương 1.1.1 và lô hàng chẩn đoán mẫu vật.

Kết quả (Việt) 2:

Cryptosporidium là do ký sinh trùng đơn bào thuộc giống Cryptosporidium, trong đó có 18 loài 'hợp lệ'. Trong chăn nuôi, C. parvum, C. andersoni, C. baileyi, C. meleagridis và C. galli đã được báo cáo gây bệnh tật và sự bùng phát của bệnh. xác định trong phòng thí nghiệm là cần thiết để xác nhận chẩn đoán. Cryptosporidium parvum nguyên nhân cryptosporidiosis sói ở trẻ, chăn nuôi động vật có vú unweaned, tuy nhiên, cai sữa và động vật người lớn cũng có thể bị nhiễm. Dấu hiệu từ một nhiễm trùng inapparent nhẹ để cọ rửa nghiêm trọng, và những người trẻ, già hay suy giảm miễn dịch dễ bị nhất. Tỷ lệ tử vong thấp. Cai sữa và động vật trưởng thành bình thường không thể hiện dấu hiệu của bệnh, nhưng sẽ tiết ra kén hợp tử có thể gây ô nhiễm môi trường. Cryptosporidium cryptosporidiosis andersoni ảnh hưởng đến các tuyến tiêu hóa của dạ múi khế của bê cũ và gia súc trưởng thành. Một số động vật bị nhiễm bệnh biểu hiện giảm cân, nhưng không bị tiêu chảy. baileyi Cryptosporidium, C. meleagridis và C. galli cryptosporidiosis là bệnh của các loài chim. Cryptosporidium baileyi ảnh hưởng chủ yếu là bursa của Fabricius và lỗ huyệt của các loài chim thuộc về loài gà, C. meleagridis ảnh hưởng chủ yếu là hồi tràng poults gà tây và C. galli nhiễm bề mặt, ống động mạch, và biểu mô tuyến của gà mái trưởng thành proventriculusof và một số loài chim hoang dã. Nhận diện tác nhân: Không có xét nghiệm theo quy định đối với nhiễm Cryptosporidium. Các cuộc biểu tình của oocyst loài cryptosporidium hay kháng nguyên cryptosporidium trong một mẫu thu thập đúng cách và trình là đủ cho một chẩn đoán dương tính. Chẩn đoán được thành lập trên kính hiển vi, với các axit nhanh Ziehl-Neelsen hoặc các phương pháp phenol auramine sử dụng smears phân unconcentrated hoặc tập trung. phương pháp hiển vi dựa trên việc phát hiện kén hợp tử và các xét nghiệm miễn dịch liên kết enzyme để phát hiện kháng nguyên cryptosporidium là tương đối nhạy cảm, nhưng là đủ nhạy để phát hiện các trường hợp lâm sàng. Cả vết bẩn tinctorial- cũng không huỳnh quang dựa trên có thể xác định các loài cryptosporidium mặt nếu kén hợp nằm trong phạm vi kích thước của 4- 6 micron. Những phương pháp này có thể phát hiện kén hợp tử ở động vật bị bệnh lâm sàng, nhưng đôi khi không đủ nhạy cảm để phát hiện nhiễm ở động vật bình thường về mặt lâm sàng. Nucleic xét nghiệm phát hiện axit có độ nhạy cao hơn. Phản ứng chuỗi polymerase (PCR) và hạn chế chiều dài đoạn đa hình (RFLP) và / hoặc trình tự có thể được sử dụng để xác định một số hoặc tất cả các loài cryptosporidium / kiểu gen hoặc phân nhóm. Những hệ thống nhóm và phân nhóm sử dụng cho mẫu thú y (và con người) cũng nên được sử dụng cho các mẫu môi trường, để tránh bất kỳ sự nhầm lẫn nào phát sinh từ việc sử dụng các hệ thống khác nhau trong việc điều tra các vụ dịch bệnh với cả hai ý nghĩa sức khỏe thú y và công cộng. Tuy nhiên độ nhạy của hệ thống subtyping sẽ cần phải tăng lên để họ có thể được sử dụng với các mẫu bệnh phẩm và môi trường có chứa một số lượng nhỏ (<10) của oocyst. những hạn chế hiện tại của hệ thống subtyping loài phân biệt được rằng họ là chỉ áp dụng đối với C. parvum và C. hominis. hệ thống subtyping phân biệt đối xử đối với phi'parvum 'và không'hominis' mầm bệnh (bao gồm phần lớn các mầm bệnh gia súc) vẫn chưa được phát triển. Mẫu vật để chẩn đoán chính phải được thu thập trong quá trình nhiễm cấp tính, và cần được xử lý càng sớm càng tốt, tốt nhất là trong vòng 24 giờ. Giao thông vận tải cho các phòng thí nghiệm phải phù hợp với các quy định của Hiệp hội Vận tải Hàng không Quốc tế, được tóm tắt trong Chương 1.1.1 Thu thập và vận chuyển mẫu vật chẩn đoán.