LARVAL rearing of mud crab zoea and

LARVAL rearing of mud crab zoea and megalopa has
been achieved but survival rates are very low and
inconsistent (Chen and Jeng 1980; Heasman and
Fielder 1983). Feeding management may be one area
which has to be investigated and modified to
improve larval performance. Moreover, larval
rearing may be simplified and production costs
reduced by partial replacement of natural food with
an artificial diet.
This study was conducted to compare larval
development and survival from zoea (Z) to megalopa
(M) of Scylla serrata (based on the identification of
Keenan et al. 1998) using natural food and/or
artificial diet at different levels..
Methodology
Zoea 1 were stocked at 50 ind/L in 3 L containers.
Larvae were fed different amounts of shrimp larval
diet available commercially (AD) with or without
natural food (NF). The different treatments (T) used
were the following:
T1) 2.0 mg/L/day + 0.25 mg increment/substage;
T2) 2.0 mg/L/day + 0.5 mg increment/substage;
T3) 4.0 mg/L/day + 0.5 mg increment/substage
T4) 4.0 mg/L/day + 1.0 mg increment/substage;
T5) 2.0 mg/L/day + 0.25 mg increment/substage
+NF;
T6) 2.0 mg/L/day + 0.5 mg increment/substage +
NF;
T7) 4.0 mg/L/day + 0.5 mg increment/substage +
NF;
T8) 4.0 mg/L/day + 1.0 mg increment/substage
+NF;
T9) Brachionus rotundiformis and newly hatched
Artemia as control.
B. rotundiformis were maintained at 10–15 ind/
mL. Artemia introduced at the start of zoea 3 were
gradually increased from 1 to 5 ind/mL as the crab
larval stages progressed. In treatments with the
artificial diet, NF were reduced by half.
Survival at each stage was determined by direct
counting. The mean population development index
(PDI) (Quinitio and Villegas 1980) was determined
for each treatment to compare growth. 1Aquaculture Department, Southeast Asian Fisheries
Development Center, Tigbauan, Iloilo 5021. Philippines
126
Rearing water (32 ppt) was replaced daily at
50%–80% of the total volume starting on day 2.
Dead larvae and uneaten feeds were siphoned out
prior to water change.
Three experimental runs with 3–4 replicates for
each treatment were conducted using a completely
randomised design. Survival rates and PDI were
compared using two-way ANOVA and Duncan’s
Multiple Range Test.
Only those zoea in T5, T6, and T9 (control)
reached the megalopa stage; thus, only these three
treatments were compared in succeeding experiments
using the same shrimp commercial diet (54% protein)
in 250 L tanks. The protocol used was the same as in
the previous experiment except that salinity was
reduced gradually from ambient (32 ppt) to 25 ppt,
starting with late zoea 3 and continuing to megalopa.
Water samples for physico-chemical parameters and
microbial analyses were taken 2–3 times weekly
before water change. Survival was estimated at the
end of the experiment. Fatty acid composition of
feeds and newly hatched zoea were analysed.
Results and Discussion
There was a significant reduction in the survival of
zoea 1 three days after stocking in T3 and T4 in three
runs (Figure 1A). At zoea 2, survival rate was
reduced further to 0–2% in T3 and T4 (Figure 1B).
Larvae fed artificial diet alone (T1, T2, T3, and T4)
did not survive beyond zoea 2 (Figure 1C). It was
also noted that survival decreased as the amount of
artificial diet increased. Even in T7 and T8 when
natural foods were added in combination with high
amounts of artificial diet, larvae did not survive
beyond zoea 4 (Figure 1D). High amounts of artificial
diet increased particle sedimentation leading to
water deterioration and increase in bacterial load.
High concentrations of luminous Vibrio were
detected in T3, T4, T7, and T8 both in rearing water
(3.5 × 102 to 2.5 × 103 cfu/mL) and larvae (3.0 × 103
to 5.5 × 104 cfu/mL) while counts were less than
1 × 102/cfu/mL or sometimes not detectable in the
larvae in other treatments. According to Colorni
(1985), these bacteria proliferate and colonise in the
host’s digestive tract and become pathogenic, thus
causing mass mortality. Only the larvae in T5, T6,
and T9 reached the zoea 5 and megalopa stages
(Figures 1E, F). No difference in PDI was observed
among treatments.
In the succeeding runs, only T5, T6, and T9 were
compared using the same amount of artificial diets in
250 L fibreglass tanks. Two-way analysis of variance
showed a significant interaction (P

Kết quả (Việt) 1:

Nuôi ấu trùng của bùn cua zoea và megalopa cóđạt được nhưng tỷ lệ sống sót là rất thấp vàkhông phù hợp (Chen và Minquan 1980; Heasman vàFielder 1983). Cho ăn quản lý có thể là một khu vựcmà đã được điều tra và sửa đổi đểcải thiện hiệu suất ấu. Hơn nữa, ấu trùngnuôi có thể được đơn giản và chi phí sản xuấtgiảm các thay thế một phần của thực phẩm tự nhiên vớimột chế độ ăn uống nhân tạo.Nghiên cứu này được tiến hành để so sánh ấu trùngphát triển và sự sống còn từ zoea (Z) để megalopa(M) của Scylla serrata (dựa trên việc xác địnhKeenan et al. 1998) bằng cách sử dụng thực phẩm tự nhiên và/hoặcchế độ ăn uống nhân tạo ở các cấp độ khác nhau...Phương phápZoea 1 được thả tại 50 ind/L trong thùng chứa 3 L.Ấu trùng được cho ăn các số tiền khác nhau của tôm ấu trùngchế độ ăn uống có sẵn thương mại (quảng cáo) có hoặc không cóthực phẩm tự nhiên (NF). Điều trị khác nhau (T) được sử dụnglà sau đây:T1) 2.0 mg/L/ngày + mg 0,25 tăng/substage;T2) 2.0 mg/L/ngày + 0,5 mg tăng/substage;T3) 4.0 mg/L/ngày + 0,5 mg tăng/substageT4) 4.0 mg/L/ngày + 1.0 mg tăng/substage;T5) 2.0 mg/L/ngày + mg 0,25 tăng/substage+ NF;T6) 2.0 mg/L/ngày + 0,5 mg tăng/substage +NF;T7) 4.0 mg/L/ngày + 0,5 mg tăng/substage +NF;T8) 4.0 mg/L/ngày + 1.0 mg tăng/substage+ NF;T9) Brachionus rotundiformis và vừa được nởArtemia như kiểm soát.B. rotundiformis đã được duy trì ở 10 – 15 ind /mL. Artemia giới thiệu tại bắt đầu zoea 3dần dần tăng lên từ 1 đến 5 ind/mL như con cuagiai đoạn ấu trùng tiến triển. Trong phương pháp điều trị với cácchế độ ăn uống nhân tạo, NF đã được giảm một nửa.Sự sống còn ở từng giai đoạn đã được xác định bởi trực tiếpđếm. Chỉ số phát triển có nghĩa là dân(PDI) (Quinitio và Villegas đã phá hoại 1980) đã được xác địnhĐối với mỗi lần chữa trị để so sánh sự phát triển. 1Aquaculture vùng Rhône-Alpes, đông nam á thủy sảnTrung tâm phát triển, Tigbauan, Iloilo 5021. Philippines126Nuôi nước (32 ppt) được thay thế hàng ngày lúc50%-80% của tổng khối lượng bắt đầu vào ngày 2.Ấu trùng ăn chết và nguồn cấp dữ liệu uneaten được siphonedtrước khi thay đổi nước.Ba chạy thử nghiệm với 3-4 sao chép chomỗi lần chữa trị được tiến hành bằng cách sử dụng một hoàn toànrandomised thiết kế. Tỷ lệ sống sót và PDIso sánh bằng cách sử dụng hai chiều ANOVA và của DuncanNhiều phạm vi thử nghiệm.Chỉ là zoea T5, T6 và T9 (kiểm soát)đạt đến giai đoạn megalopa; Vì vậy, chỉ baphương pháp điều trị đã được so sánh trong thành công thí nghiệmbằng cách sử dụng tôm cùng một thương mại thức ăn (54% đạm)trong xe tăng 250 L. Giao thức được sử dụng là tương tự như trongCác thử nghiệm trước đó trừ rằng độ mặn đãgiảm dần dần từ môi trường xung quanh (32 ppt) đến 25 ppt,bắt đầu với cuối zoea 3 và tiếp tục để megalopa.Nước mẫu cho tham số lý-hóa học vàvi khuẩn phân tích được thực hiện 2-3 lần lượttrước khi thay đổi nước. Sự sống còn ước tính cáckết thúc của thử nghiệm. Acid béo thành phần củanguồn cấp dữ liệu và zoea mới nở được phân tích.Kết quả và thảo luậnCó là một sự giảm đáng kể trong sự sống còn củazoea 1 ba ngày sau khi thả trong T3 và T4 trong bachạy (con số 1A). Zoea 2, tỷ lệ sống làgiảm xa hơn đến 0-2% trong T3 và T4 (hình 1B).Ấu trùng ăn nhân tạo chế độ ăn uống một mình (T1, T2, T3 và T4)không tồn tại vượt ra ngoài zoea 2 (hình 1 c). Nó đãcũng lưu ý rằng sự sống còn giảm như sốchế độ ăn uống nhân tạo tăng lên. Ngay cả trong T7 và T8 khithực phẩm tự nhiên đã được thêm vào kết hợp với caosố lượng nhân tạo chế độ ăn uống, ấu trùng đã không tồn tạingoài zoea 4 (hình 1D). Các số tiền cao của nhân tạochế độ ăn uống tăng hạt lắng dẫn đếnnước bị hư hại và tăng trong vi khuẩn tải.Nồng độ cao của sáng Vibriophát hiện trong T3, T4, T7 và T8 cả hai trong nuôi nước(3,5 × 102 đến 2,5 × 103 cfu/mL) và ấu trùng (3.0 × 103đến 5,5 × 104 cfu/mL) trong khi đếm ít hơn1 x 102/cfu/mL hoặc đôi khi không phát hiện trong cácẤu trùng trong phương pháp điều trị khác. Theo Colorni(1985), các vi khuẩn sinh sôi nảy nở và colonise trong cácđường tiêu hóa của chủ nhà và trở thành gây bệnh, do đógây tử vong hàng loạt. Chỉ các ấu trùng ở T5, T6,và T9 đến zoea 5 và giai đoạn megalopa(Con số 1E, F). Không có sự khác biệt trong PDI được quan sát thấytrong số phương pháp điều trị.Trong tập đầu thành công, duy nhất T5, T6 và T9 đãso sánh bằng cách sử dụng cùng một lượng chế độ ăn nhân tạo trongXe tăng 250 L bằng sợi thủy tinh. Hai cách phân tích các phương saicho thấy một sự tương tác quan trọng (P < 0,03) giữachạy và phương pháp điều trị. Của ba chạy tiến hànhsử dụng một chế độ ăn ấu thương mại tôm, hai chạycho thấy xu hướng tương tự trong khi chạy khác khôngHiển thị sự khác biệt đáng kể trong sự sống còn megalopa(Hình 2). Trong tập 1 và 3, T5, vui lòng đã cung cấp một cách đáng kểsự sống còn cao hơn (3.71% và 1,33%) hơn T9 (1,84%và 0,45%) và T6 (1,37% và 0,45%). PDI khôngkhác biệt giữa các phương pháp điều trị trong ba chạy.Nói chung, zoea đạt đến giai đoạn megalopa trong15-17 ngày. Nhưng đã không được đồng bộ ngay cảtrong phương pháp điều trị. Ong (1964) báo cáo rằng cácphát triển của zoea 1 để megalopa yêu cầu mộttối thiểu 18 ngày. Nhiệt độ nước trải dàitừ 26.5-29 ° C trong suốt tất cả ba chạy. CácCấp số 2-N và NH3-N trong các thử nghiệmchạy là 0,0-0,04 và 0,0-0,58 ppm, tương ứng.Chất béo là quan trọng như nguồn axit béo chotrao đổi chất năng lượng, và để duy trì tính toàn vẹn cấu trúccủa màng tế bào. Axit béo, cụ thể n-3axit béo không bão hòa cao (HUFA) như20:5N-3 (axit eicosapentaenoic; EPA) và 22:6n-3(docosahexaenoic acid; DHA) là thành phần thiết yếutrong chế độ ăn của động vật giáp xác (Kanazawa et al.1977; Jones et al. 1979). EPA và DHA nội dungtrong chế độ ăn uống thương mại tôm là gần gũi vớinhững người zoeae cua (bảng 1). Ngược lại, DHAkhông có mặt trong cả hai B. rotundiformis và Artemiatrong khi EPA thấp trong Artemia. Chlorella virginica,mà thành lập các thức ăn của B. rotundiformis, chứacao EPA và điều này được phản ánh trong cácrotifers. Bất kỳ thiếu hụt axit béo thiết yếu đặc biệtn-3 HUFA trong rotifers và Artemia có thể cóđược bù đắp bằng cách cho nguồn cấp dữ liệu bổ sung để cuaẤu trùng ăn. Chế độ ăn uống nhân tạo cũng có thể phục vụ như là làm giàucho rotifers và Artemia, mà lần lượt được thực hiện trongẤu trùng. Bổ sung chế độ ăn uống nhân tạocó thể cải thiện sự tăng trưởng và sự sống còn của ấu trùng cuavà làm giảm các yêu cầu đối với thực phẩm tự nhiên. MộtCác thử nghiệm đang được tiến hành bằng cách sử dụng mộtcua công thức chế độ ăn uống để tiếp tục cải thiện sự sống cònẤu trùng.