10 µM 2iP (N6-(2-isopentenyl)adenin

10 µM 2iP (N6-(2-isopentenyl)adenine), but not with BA in the medium (Chang and Chang 2003). No inflo- rescences were observed in the presence of NAA alone in the medium (Chang and Chang 2003, Kostenyuk et al. 1999), and thus the auxin role in flower initiation and development is not clear. TDZ was effective for flower initiation in both species. However, it resulted in poor plant growth of C. niveo-marginatum and the flower buds withered after a short period (Kostenyuk et al. 1999). The differences in responses can be related to the species, the origin of explants, or the physiologi- cal stage of the mother plant. The positive response to cytokinin was in accordance with other reports of early flowering in orchids when a high level of cytokinin was used (Duan and Yazawa 1995a). However, in these species it is not clear whether cytokinin is necessary for flower induction or flower development. (Kostenyuk

from vegetative to reproductive phase in Ornithogalum buds occurs inside the bulb during the season before flowering. This change and the development of the in- florescence that follows require specific thermoperiodic conditions for induction, initiation, and elongation of the inflorescence. The authors found that 16 weeks at 30ºC induced this phase change in vitro in excised buds. Inflorescences were developed in vitro if the buds were kept for 6 weeks at 20ºC followed by 4 weeks at 13ºC. The rate of inflorescence development in vitro increased with shoot tip size (a bigger shoot tip was composed of the apex with attached scale tissue). The scale tissue contributed to the increased rate more than the leaf primordia. The inflorescences were developed on a media with Knop’s macro-elements (Knop 1865) and Heller’s microelements (Heller 1953), supplemented with 2% sucrose and solidified by 0.8% agar. However,

et al.1999). It is also suggested that GA

interacts with

in vitro flowering was shown only in buds from flower-

other PGR in flower induction and development of C.

ing-sized bulbs. In this study GA

was the only growth

niveo-marginatum. Reduced levels of nitrogen pro- moted in vitro flowering of C. niveo-marginatum in the presence of BA in the medium. Phosphorous supply provided favorable conditions for in vitro flowering of Cymbidium (Kostenyuk et al. 1999, Chang and Chang 2003). The flowers of C. ensifolium var. misericors were three times smaller than flowers in vivo but structurally normal and produced viable pollen in vitro. The in vitro flowers of Cymbidium niveo-marginatum were colored but there is no information on size, organ development completion, or viability of the pollen and ovules.

Doritis pulcherimma x Kingiella philipinensis
The effects of media components on flower develop- ment were studied in Doritis pulcherrima x Kingiella philippiensis (xDoriella Tiny) plantlets derived from flower stalk explants. The flowers in vitro exhibited normal color, size, and appearance when compared to flowers under natural conditions (Duan and Yazawa 1994, 1995b). In vitro flowering occurred in plantlets after 6-7 (Duan and Yazawa 1994) or 10-12 (Duan and Yazawa 1995b) months in culture in contrast to 3 years under natural conditions. However, these buds withered unless transferred to a BA-free medium. Other cyto- kinins failed to produce flower buds. Flowering buds were observed on low-nitrogen media supplemented with 14.4 µM BA after 80 days. The optimal nitrogen concentration was 6-9 mM and a high ratio of NH +/ NO - ions was beneficial. In addition, root removal also

regulator tested. GA (0.29 mM) could not stimulate in vitro flowering but caused bolting of the meristem and inhibited leaf elongation. No inflorescence differentia- tion was observed in these apices. The optimal treatment for induction was not given to the bulbs prior to GA
3
application, however.

Panax ginseng (ginseng)
Shortening the long juvenile period by ca. 3 years is advantageous for breeding programs of ginseng (Chang and Hsing 1980). In vitro flowering of ginseng was obtained from plantlets developed from either a juve- nile source (Lee et al. 1990, 1991, Tang 2000) or from adult plants (Chang and Hsing 1980, Lin et al. 2003a, 2005). In vitro flowering where the juvenility period was shortened was obtained directly from zygotic embryos (Lee et al. 1991), or indirectly from somatic embryos, which developed from zygotic embryo calli (Lee et al. 1990, Tang 2000). In vitro flowering from adult plant sources was obtained from somatic embryos derived from callus of root pith tissue of mature plants (Chang and Hsing 1980, Lin et al 2005) or amplified from in- florescences that developed from mature plant explants (Lin et al. 2003a). Flowers appeared in vitro after 1-1.5 months of culture on half-strength MS, full-strength B5, or MS medium. BA (4.4-5 µM) in the medium was essential for flower development, but the effect was blocked by 5 µM ABA (Lee et al. 1991). BA was suc- cessfully replaced by 0.5-4.5 µM TDZ in the presence

stimulated in vitro flower bud formation. The authors

of 0.3-2.9 µM GA

(Lin et al. 2005). GA

(5 µM) was

concluded that BA was essential for flower bud forma- tion but inhibited complete flower development.

necessary in the presence of ABA (Lee et al. 1991). However, Tang (2000) showed a low percentage (less than 6%) of in vitro flowering in the presence of 5.8 or

Ornithogalum arabicum

11.6 µM GA

only, in plantlets derived from adventi-

The environmental signals involved in flower induc- tious buds or somatic embryos. This indicates that the

tion and GA

as a substitute for external signals were

role of gibberellin in flower induction or development

examined in vitro (Halaban et al. 1965). The transition is not clear. Flower formation in vitro was inhibited




by a high concentration of NAA (27 µM). In contrast, a lower dose (5.4 µM) seemed to be ineffective (Lin et al. 2005). The flowers were formed on umbels of elongated axillary branches. They were several times smaller than flowers in vivo, but bore well-developed anthers (Lee et al. 1990) with fertile pollen (Chang and Hsing 1980). Immature fruits developed from the flow- ers (Lee et al. 1990, 1991), which eventually degener- ated before maturation. Sterile pollen was observed in


early stage. The inflorescences in vitro were enclosed within 3-4 leaf primordia and eventually dried. Inflores- cences developed in vitro in 80-100% of the plantlets within 30-50 days, only if treated with gibberellin. In this study the plantlets were dipped in 6-600 µM gibberellin solutions, prior to subculture on MS me- dium, in contrast to other studies in which PGR were supplemented in the medium. Inflorescences developed in response to GA , GA , and GA . A pronounced

3 1 4

inflorescences that were amplified directly from other
inflorescences (Lin et al. 2003a).

Zantedescia spp. (calla lily)
Colored Zantedeschia is considered a DNP with regard to flowering (Naor and Kigel 2002). However, gibberellin enhances flowering in treated tubers of Zantedeschia, as well as in several other Araceae species (Corr and Widmer 1987, Tjia 1989, Henny and Hamilton 1992, Funnell 1993, Henny et al. 1999, Kuehny 2000). Plantlets of four Zantedeschia culti- vars regenerated in TC, flowered in vitro in response to gibberellin treatment as shown in Fig. 2A for the ‘Crystal Blush’ cultivar (Naor et al. 2004). Following gibberellin treatment microtubers of the ‘Calla Gold’ cultivar regenerated in TC flowered in vitro (Fig. 2B). The pattern of the inflorescence development in vitro resembled that in vivo. The apex switched from a vegetative to a reproductive phase and developed into a floral stem comprised of a spadix surrounded by a spathe located at the top of a peduncle. In developed inflorescences, female florets located at the base of the primordial spadix could be clearly distinguished from male florets located above them, (Fig 2A). However, the inflorescences in vitro were smaller, sometimes deformed, and in many cases ceased to develop at an

response to GA treatments occurred in plantlets that
regenerated from young established shoot cultures and lasted for 30-40 months of consecutive subculturing. In older cultures, however, the response dissipated. Levels of 0.1-13.3 µM BA alone were not sufficient to induce inflorescence development in Zantedeschia plantlets in vitro. Nevertheless, BA seemed to interact with GA by enhancing inflorescence development. The transition to flowering in Zantedeschia plantlets was solely due to treatments with GA, which was found to be an essential growth regulator for the transition from a vegetative to a reproductive bud. Thus the potential to develop inflorescences in vitro exists in vegetative buds of Zantedeschia plantlets and is expressed when the plantlets are treated with GA. It was also suggested that meristem competence to switch from a vegetative to a reproductive phase exists in Zantedeschia plants, regardless of meristem size or age (Naor et al. 2005).

CONCLUSION
In vitro flowering serves as an important tool to study flower induction and initiation, and floral de- velopment. Controlling the environment and media components enables the manipulation of the different variables, that affect these processes. Understanding the physiology of flowering is the first step towards

Kết quả (Việt) 1:

10 μm 2iP (N6-(2-isopentenyl)adenine), nhưng không phải với BA trong môi (Chang và Chang năm 2003). Không có inflo-rescences đã được quan sát thấy sự hiện diện của NAA một mình trong các phương tiện (Chang và Chang 2003, Kostenyuk et al. năm 1999), và do đó đóng vai auxin trong Hoa bắt đầu và phát triển không phải là rõ ràng. TDZ là hiệu quả cho Hoa bắt đầu ở cả hai loài. Tuy nhiên, nó dẫn đến nghèo thực vật phát triển của C. niveo-marginatum và nụ hoa héo sau một thời gian ngắn (Kostenyuk et al. năm 1999). Sự khác biệt trong phản ứng có thể được liên quan đến các loài, nguồn gốc của explants hoặc giai đoạn physiologi-cal của cây mẹ. Các phản ứng tích cực để cytokinin là phù hợp với các báo cáo khác của thực vật có hoa đầu trong Hoa Lan khi một mức độ cao của cytokinin đã được sử dụng (Duan và Yazawa 1995a). Tuy nhiên, trong các loài nó là không rõ ràng cho dù cytokinin là cần thiết cho hoa cảm ứng hoặc phát triển Hoa. (Kostenyuk từ thực vật để các giai đoạn sinh sản trong Ornithogalum chồi xảy ra bên trong bóng đèn trong mùa giải trước khi lúa trổ. Sự thay đổi này và sự phát triển của tại-sự sau đó yêu cầu điều kiện thermoperiodic cụ thể cho cảm ứng, bắt đầu và kéo dài của cụm hoa. Các tác giả tìm thấy 16 tuần tại 30ºC gây ra này thay đổi giai đoạn trong ống nghiệm ở excised chồi. Cụm hoa được phát triển trong ống nghiệm nếu các chồi được giữ trong 6 tuần tại 20ºC theo sau là 4 tuần tại 13ºC. Tỷ lệ phát triển cụm hoa trong ống nghiệm tăng lên với kích thước Mẹo bắn (bao gồm một tip bắn lớn hơn của đỉnh với kèm theo quy mô mô). Quy mô mô góp phần vào mức tăng hơn lá primordia. Các cụm hoa được phát triển trên một phương tiện truyền thông với Knop của yếu tố vĩ mô (Knop 1865) và Heller của microelements (Heller 1953), bổ sung với 2% Sucroza và củng cố bởi agar 0,8%. Tuy nhiên, et al.1999). Nó cũng được đề nghị rằng GA tương tác với thực vật có hoa trong ống nghiệm được hiển thị chỉ trong chồi hoa- khác xuân hoa cảm ứng và phát triển của C. bóng đèn có kích thước ing. Trong nghiên cứu này GA sự phát triển duy nhất niveo-marginatum. Giảm mức độ nitơ pro - moted trong ống nghiệm thực vật có hoa của C. niveo-marginatum sự hiện diện của BA trong các phương tiện. Phốt pho cung cấp cung cấp điều kiện thuận lợi cho thực vật có hoa trong ống nghiệm của Lan (Kostenyuk et al. 1999, Chang và Chang năm 2003). Hoa của C. ensifolium var. misericors đã ba lần nhỏ hơn Hoa tại vivo nhưng cấu trúc bình thường và sản xuất khả thi phấn trong ống nghiệm. Hoa Lan niveo-marginatum, trong ống nghiệm được màu nhưng không có thông tin về kích thước, cơ quan phát triển hoàn thành hoặc tính khả thi của phấn hoa và noãn.Doritis pulcherimma x Kingiella philipinensisNhững ảnh hưởng của phương tiện truyền thông thành phần hoa phát triển-ment được nghiên cứu ở Doritis trạng x Kingiella philippiensis (xDoriella Tiny) plantlets có nguồn gốc từ Hoa cuống explants. Những bông hoa trong ống nghiệm trưng bày màu bình thường, kích thước, và xuất hiện khi so sánh với Hoa theo điều kiện tự nhiên (Duan và Yazawa 1994, 1995b). Thực vật có hoa trong ống nghiệm diễn ra tại plantlets sau khi 6-7 (Duan và Yazawa 1994) hoặc tháng 10-12 (Duan và Yazawa 1995b) trong văn hóa trái ngược với 3 năm dưới điều kiện tự nhiên. Tuy nhiên, các chồi héo trừ khi chuyển giao cho một phương tiện miễn phí BA. Khác cyto-kinins thất bại trong việc sản xuất nụ hoa. Thực vật có hoa chồi đã được quan sát trên phương tiện truyền thông thấp-nitơ bổ sung với 14,4 μm BA sau 80 ngày. Nồng độ tối ưu nitơ là 6-9 mM và một tỷ lệ cao NH +/ không - ion là mang lại lợi ích. Ngoài ra, gốc cũng loại bỏ điều được thử nghiệm. GA (0,29 mM) có thể không kích thích thực vật có hoa trong ống nghiệm nhưng gây ra bolting của mô phân sinh và ức chế lá kéo dài. Không có cụm hoa differentia-tion được quan sát thấy trong các apices. Việc điều trị tối ưu cho cảm ứng đã không được trao cho các bóng đèn trước khi GA3ứng dụng, Tuy nhiên.Panax ginseng (sâm)Rút ngắn thời gian lâu chưa thành niên bởi khoảng 3 tuổi là thuận lợi cho chăn nuôi các chương trình của nhân sâm (Chang và Hsing 1980). Thực vật có hoa trong ống nghiệm vật nhân sâm nhận được từ plantlets phát triển từ hoặc là một juve-nile nguồn (Lee et al. 1990, 1991, Tang 2000) hoặc từ các nhà máy dành cho người lớn (Chang và Hsing 1980, Lin et al. 2003a, 2005). Trong ống nghiệm hoa mà giai đoạn juvenility đã được rút ngắn được lấy trực tiếp từ zygotic phôi (Lee et al. năm 1991), hoặc gián tiếp từ Soma phôi, phát triển từ phôi thai zygotic calli (Lee et al. 1990, Tang 2000). Thực vật có hoa trong ống nghiệm từ nguồn thực vật dành cho người lớn thu được từ Soma phôi có nguồn gốc từ callus mô cơ ruột cây gốc của cây trưởng thành (Chang và Hsing 1980, Lin et al 2005) hoặc khuếch đại từ trong-florescences phát triển từ cây trưởng thành explants (Lin et al. 2003a). Hoa xuất hiện trong ống nghiệm sau 1-1,5 tháng của nền văn hóa trên một nửa sức mạnh MS, đầy đủ sức mạnh B5 hoặc MS trung bình. BA (4,4-5 μm) trong các phương tiện là điều cần thiết cho Hoa phát triển, nhưng có hiệu lực đã bị chặn bởi 5 μm ABA (Lee et al. năm 1991). BA là suc-cessfully thay thế bởi 0,5-4,5 μm TDZ trong sự hiện diện kích thích sự hình thành của chồi hoa trong ống nghiệm. Các tác giả của 0.3-2,9 μm GA (Lin et al. 2005). GA (5 μm) là kết luận rằng BA là rất cần thiết cho chồi hoa forma-tion nhưng ức chế sự phát triển đầy đủ Hoa. cần thiết sự hiện diện của ABA (Lee et al. năm 1991). Tuy nhiên, nhà đường (năm 2000) cho thấy một tỷ lệ thấp (ít hơn 6%) của thực vật có hoa trong ống nghiệm sự hiện diện của 5.8 hoặc Ornithogalum arabicum 11,6 ΜM GA chỉ, trong plantlets có nguồn gốc từ adventi- Các môi trường tín hiệu tham gia trong induc - tious nụ hoa hoặc Soma phôi. Điều này cho thấy rằng các tion và GA như là một thay thế cho tín hiệu bên ngoài vai trò của gibberellin trong hoa cảm ứng hoặc phát triển kiểm tra trong ống nghiệm (Halaban et al. 1965). Quá trình chuyển đổi không phải là rõ ràng. Hoa hình thành trong ống nghiệm ức chế bởi nồng độ cao của NAA (27 μm). Ngược lại, một liều thấp hơn (5,4 μm) dường như là không hiệu quả (Lin et al. 2005). Những bông hoa được thành lập ngày umbels của chi nhánh ở nách lá thuôn dài. Họ đã nhiều lần nhỏ hơn Hoa tại vivo, nhưng khoan các bao phấn (Lee et al. 1990) với phấn hoa màu mỡ (Chang và Hsing 1980). Chưa trưởng thành quả phát triển từ dòng chảy-ers (Lee et al. 1990, 1991), mà cuối cùng degener-ated trước khi trưởng thành. Vô trùng phấn hoa được quan sát thấy ở giai đoạn đầu. Các cụm hoa trong ống nghiệm được kèm theo trong 3-4 lá primordia và cuối cùng khô. Inflores-cences phát triển trong ống nghiệm trong 80-100% của plantlets trong vòng 30-50 ngày, chỉ khi đối xử với gibberellin. Trong nghiên cứu này, các plantlets đã được nhúng trong 6-600 giải pháp gibberellin μm, trước khi subculture trên MS tôi-dium, trái ngược với các nghiên cứu khác trong PGR mà đã được bổ sung trong các phương tiện. Cụm hoa phát triển để đáp ứng với GA, GA, và GA. Một phát âm 3 1 4 cụm hoa được khuếch đại trực tiếp từ kháccụm hoa (Lin et al. 2003a).Zantedescia spp. (calla lily)Màu Zantedeschia là một DNP đối với thực vật có hoa (Naor và Kigel năm 2002). Tuy nhiên, gibberellin tăng cường thực vật có hoa trong điều trị củ Zantedeschia, cũng như một số khác họ Ráy loài (Corr và Widmer 1987, Tjia 1989, Henny và Hamilton năm 1992, Funnell năm 1993, Henny et al. 1999, Kuehny 2000). Plantlets của bốn Zantedeschia culti-vars tái sinh trong TC, Hoa trong ống nghiệm để đáp ứng với điều trị gibberellin như minh hoạ trong hình 2A cho cây trồng 'Crystal Blush' (Naor et al. năm 2004). Sau gibberellin điều trị microtubers của giống cây trồng 'Calla vàng' tái sinh trong TC hoa trong ống nghiệm (hình 2B). Các mô hình của sự phát triển cụm hoa trong ống nghiệm giống như những gì tại vivo. Đỉnh chuyển từ một thực vật sang một giai đoạn sinh sản và phát triển thành một thân cây hoa bao gồm một spadix được bao quanh bởi một và nằm ở phía trên cùng của một cuống. Trong phát triển cụm hoa, nữ florets nằm tại cơ sở của spadix nguyên thủy có thể được phân biệt rõ ràng từ tỷ florets nằm trên chúng, (hình 2A). Tuy nhiên, các cụm hoa trong ống nghiệm được nhỏ hơn, đôi khi bị biến dạng, và trong nhiều trường hợp không còn phát triển tại một phản ứng với điều trị GA xảy ra trong plantlets màtái tạo từ nền văn hóa nhỏ bắn được thành lập và kéo dài trong 30-40 tháng liên tiếp subculturing. Trong nền văn hóa lớn, Tuy nhiên, các phản ứng ăn chơi. Cấp độ của 0.1-13,3 μm BA một mình là không đủ để tạo ra các cụm hoa phát triển ở Zantedeschia plantlets trong ống nghiệm. Tuy nhiên, BA dường như tương tác với GA bằng cách tăng cường phát triển cụm hoa. Sự chuyển đổi sang thực vật có hoa trong Zantedeschia plantlets là chỉ duy nhất do phương pháp điều trị với GA, được tìm thấy là một điều cần thiết tăng trưởng cho sự chuyển đổi từ một thực vật để một nụ sinh sản. Vì vậy tiềm năng để phát triển các cụm hoa trong ống nghiệm tồn tại trong thực vật chồi của Zantedeschia plantlets và được thể hiện khi các plantlets đang được điều trị với GA. Nó cũng đã được đề xuất rằng mô phân sinh năng lực để chuyển từ một thực vật sang một giai đoạn sinh sản tồn tại trong các nhà máy Zantedeschia, bất kể kích thước mô phân sinh hay tuổi tác (Naor et al. 2005).KẾT LUẬNThực vật có hoa trong ống nghiệm phục vụ như một công cụ quan trọng để nghiên cứu hoa cảm ứng và khởi xướng và de-velopment Hoa. Kiểm soát môi trường và phương tiện truyền thông các thành phần cho phép các thao tác của các yếu tố khác nhau, ảnh hưởng đến các quá trình này. Hiểu biết về sinh lý học của thực vật có hoa là bước đầu tiên hướng tới

Kết quả (Việt) 2:

10 mM 2iP (N6- (2-isopentenyl) adenine), nhưng không phải với BA trong trung (Chang và Chang 2003). Không rescences inflo- đã được quan sát trong sự hiện diện của NAA một mình trong môi trường (Chang và Chang 2003, Kostenyuk et al. 1999), và do đó vai trò của auxin trong khởi hoa và phát triển là không rõ ràng. TDZ có hiệu quả cho việc bắt đầu trồng hoa ở cả hai loài. Tuy nhiên, nó dẫn đến sự tăng trưởng của cây kém C. niveo-marginatum và nụ hoa héo sau một thời gian ngắn (Kostenyuk et al. 1999). Sự khác biệt trong phản ứng có thể được liên quan đến các loài, nguồn gốc của cấy, hoặc giai đoạn cal physiologi- của cây mẹ. Các phản ứng tích cực để cytokinin là phù hợp với báo cáo khác của hoa sớm ở lan khi một mức độ cao của cytokinin được sử dụng (Duẩn và Yazawa 1995a). Tuy nhiên, ở các loài này nó không phải là rõ ràng cho dù cytokinin là cần thiết để khởi phát hoa hoặc hoa phát triển. (Kostenyuk từ thực vật đến giai đoạn sinh sản ở ornithogalum chồi xảy ra bên trong các bóng đèn trong mùa trước khi ra hoa. Sự thay đổi này và sự phát triển của sự hưng thịnh trong- rằng sau đòi hỏi điều kiện thermoperiodic cụ thể cho cảm ứng, khởi, và kéo dài của cụm hoa Các tác giả. Tìm thấy rằng 16 tuần ở 30 o C gây ra sự thay đổi giai đoạn này trong ống nghiệm trong nụ cắt bỏ. chùm hoa đã được phát triển trong ống nghiệm nếu các chồi được giữ trong 6 tuần tại 20ºC sau 4 tuần ở 13ºC. Tỷ lệ phát triển ra hoa trong ống nghiệm tăng lên với kích thước shoot tip ( một mẹo chụp lớn được sáng tác trong những đỉnh với mô quy mô kèm theo). Các mô quy mô đóng góp vào tốc độ tăng nhiều hơn so với mầm lá. Những chùm hoa được phát triển trên một phương tiện truyền thông với vĩ mô yếu tố Knop của (Knop 1865) và nguyên tố vi lượng Heller (Heller 1953), có bổ sung 2% sucrose và kiên cố vào agar 0,8%. Tuy nhiên, et al.1999). Nó cũng gợi ý rằng GA tương tác với in vitro hoa được hiển thị chỉ trong nụ trồng hoa từ PGR khác trong cảm ứng hoa và phát triển của C. bóng ing cỡ. Trong nghiên cứu này GA là chỉ tăng trưởng niveo-marginatum. Giảm mức độ nitơ trình moted in vitro hoa của C. niveo-marginatum trong sự hiện diện của BA trong môi trường. Cung cấp phốt pho cung cấp các điều kiện thuận lợi cho in vitro ra hoa của cây địa lan (Kostenyuk et al. 1999, Chang và Chang 2003). Những bông hoa của C. ensifolium var. misericors nhỏ hơn ba lần so với hoa in vivo nhưng cấu trúc bình thường và sản xuất phấn hoa tồn tại trong ống nghiệm. Những bông hoa in vitro của cây địa lan niveo-marginatum có màu nhưng không có thông tin về kích thước, hoàn thành phát triển cơ quan, hoặc khả năng tồn tại của các hạt phấn hoa và noãn. Doritis pulcherimma x Kingiella philipinensis Các tác dụng của các thành phần phương tiện truyền thông trên hoa triển ment đã được nghiên cứu trong Doritis pulcherrima x Kingiella philippiensis (xDoriella Tiny) cây con có nguồn gốc từ cấy hoa cuống. Những bông hoa trong ống nghiệm trưng bày màu sắc bình thường, kích thước, và xuất hiện khi so sánh với hoa trong điều kiện tự nhiên (Duẩn và Yazawa 1994, 1995b). Trong hoa vitro xảy ra ở cây con sau 6-7 (Duẩn và Yazawa 1994) hoặc 10-12 (Duẩn và Yazawa 1995b) tháng trong văn hóa trái ngược với 3 năm trong điều kiện tự nhiên. Tuy nhiên, những chồi héo trừ khi chuyển sang môi trường BA-miễn phí. Kinins cyto- khác không đưa ra được nụ hoa. Nụ hoa đã được quan sát trên phương tiện truyền thông-nitơ thấp có bổ sung 14,4 mM BA sau 80 ngày. Nồng độ nitơ tối ưu là 6-9 mM và một tỷ lệ cao của NH + / NO - ion có lợi. Ngoài ra, loại bỏ rễ cũng điều chỉnh được thử nghiệm. GA (0,29 mM) không thể kích thích ra hoa trong ống nghiệm nhưng không gây ra sự bỏ rơi của mô phân sinh và ức chế lá kéo dài. Không có sự khác biệt hóa cụm hoa đã được quan sát thấy trong các apices. Việc điều trị tối ưu cho cảm ứng đã không được trao cho các bóng đèn trước khi GA 3 ứng dụng, tuy nhiên. Panax ginseng (sâm) Rút ngắn thời kỳ vị thành niên dài ca. 3 năm là thuận lợi cho các chương trình sinh sản của nhân sâm (Chang và Hsing 1980). Trong hoa in vitro của sâm được lấy từ cây con phát triển từ một trong hai nguồn sản phẩm thiếu nhi (Lee et al. 1990, 1991, Tang 2000) hoặc từ các nhà máy lớn (Chang và Hsing 1980, Lin et al. 2003a, 2005). Trong hoa vitro đó giai đoạn tuổi trẻ đã được rút ngắn được lấy trực tiếp từ phôi zygotic (Lee et al. 1991), hoặc gián tiếp từ phôi soma, được phát triển từ mô sẹo phôi zygotic (Lee et al. 1990, Tang 2000). Trong hoa in vitro từ nguồn thực vật lớn được lấy từ phôi soma có nguồn gốc từ mô sẹo của mô pith gốc của cây trưởng thành (Chang và Hsing 1980, Lin et al 2005) hoặc khuếch đại từ florescences trong- đã phát triển từ mẫu cấy cây trưởng thành (Lin et al. 2003a). Hoa xuất hiện trong ống nghiệm sau 1-1,5 tháng nuôi cấy trên nửa sức mạnh MS, đầy đủ sức mạnh B5, hoặc môi trường MS. BA (4,4-5 mM) trong môi trường là điều cần thiết cho sự phát triển hoa, nhưng hiệu quả đã bị chặn lại bởi 5 mM ABA (Lee et al. 1991). BA là suc- cessfully thay thế bằng 0,5-4,5 mM TDZ trong sự hiện diện kích thích trong ống nghiệm hình thành nụ hoa. Các tác giả của 0,3-2,9 mM GA (Lin et al. 2005). GA (5 mM) đã kết luận rằng BA là cần thiết cho nụ hoa tion forma- nhưng ức chế sự phát triển hoa hoàn chỉnh. Cần thiết trong sự hiện diện của ABA (Lee et al. 1991). Tuy nhiên, Tang (2000) cho thấy một tỷ lệ thấp (dưới 6%) trong ống nghiệm có hoa trong sự hiện diện của 5,8 hoặc ornithogalum arabicum 11.6 mM GA chỉ, trong cây con có nguồn gốc từ adventi- Các tín hiệu môi trường liên quan đến hoa nụ hỏi đầy tranh cãi induc- hay phôi soma. Điều này chỉ ra rằng các tion và GA là một thay thế cho tín hiệu bên ngoài là vai trò của gibberellin trong cảm ứng hoa hay phát triển nghiên cứu trong ống nghiệm (Halaban et al. 1965). Việc chuyển đổi là không rõ ràng. Flower hình thành trong ống nghiệm bị ức chế bởi nồng độ cao của NAA (27 mM). Ngược lại, liều thấp hơn (5,4 mM) có vẻ có hiệu quả (Lin et al. 2005). Những bông hoa được hình thành trên umbels chi nhánh nách kéo dài. Chúng nhỏ hơn hoa in vivo nhiều lần, nhưng mang bao phấn phát triển tốt (Lee et al. 1990) với phấn màu mỡ (Chang và Hsing 1980). Trái cây non phát triển từ ers flow- (Lee et al. 1990, 1991), mà cuối cùng degener- ated trước khi trưởng thành. Phấn hoa vô trùng đã được quan sát thấy trong giai đoạn đầu. Những chùm hoa trong ống nghiệm đã được đính kèm trong vòng 3-4 mầm lá và cuối cùng khô. Cences Inflores- phát triển trong ống nghiệm trong 80-100% của các cây con trong vòng 30-50 ngày, chỉ khi đối xử với gibberellin. Trong nghiên cứu này, các cây con được nhúng trong dung dịch gibberellin 6-600 mM, trước khi tiểu văn hóa trên MS ME dium, trái ngược với các nghiên cứu khác, trong đó PGR đã được bổ sung trong môi trường. Cụm hoa phát triển để đáp GA, GA, và GA. Một phát âm 3 1 4 chùm hoa đó được khuếch đại trực tiếp từ các cụm hoa (Lin et al. 2003a). Zantedescia spp. (calla lily) màu Zantedeschia được coi là một DNP liên quan đến hoa với (Naor và Kigel 2002). Tuy nhiên, gibberellin tăng cường hoa củ điều trị của Zantedeschia, cũng như trong một số loài khác Araceae (Corr và Widmer 1987, Tjia 1989, Henny và Hamilton năm 1992, Funnell 1993, Henny et al. 1999, Kuehny 2000). Cây con của bốn Zantedeschia culti- VAR tái sinh trong TC, hoa trong ống nghiệm để đáp ứng với điều trị gibberellin như thể hiện trong hình. 2A cho giống các 'pha lê Blush' (Naor et al. 2004). Sau microtubers xử lý gibberellin của 'Calla vàng' trồng tái sinh trong TC hoa trong ống nghiệm (Hình. 2B). Các mô hình của phát triển ra hoa trong ống nghiệm giống như trong cơ thể sống. Đỉnh chuyển từ một vật sang một giai đoạn sinh sản và phát triển thành một gốc hoa bao gồm một spadix bao quanh bởi một mo cau nằm ở đầu một cuống. Trong chùm hoa phát triển, hoa con gái nằm ở đáy của spadix nguyên thủy có thể được phân biệt rõ ràng từ hoa con đực nằm phía trên họ, (Hình 2A). Tuy nhiên, những chùm hoa trong ống nghiệm nhỏ hơn, đôi khi bị biến dạng, và trong nhiều trường hợp ngừng phát triển với một đáp ứng với điều trị GA xảy ra ở cây con mà tái sinh từ nền văn hóa shoot lập trẻ và kéo dài 30-40 tháng cấy truyền liên tiếp. Tuy nhiên, trong các nền văn hóa cũ, các phản ứng tiêu tan. Mức 0,1-13,3 mM BA một mình là không đủ để gây ra phát triển ra hoa trong Zantedeschia cây giống in vitro. Tuy nhiên, BA dường như tương tác với GA bằng cách tăng cường phát triển ra hoa. Việc chuyển đổi sang hoa trong Zantedeschia cây con là hoàn toàn do điều trị với GA, được tìm thấy là một điều cần thiết cho sự phát triển các quá trình chuyển đổi từ một vật để một chồi sinh sản. Do đó, tiềm năng để phát triển cụm hoa trong ống nghiệm tồn tại trong chồi của Zantedeschia cây con và được thể hiện khi cây con được điều trị với GA. Nó cũng gợi ý rằng thẩm quyền mô phân sinh để chuyển đổi từ một vật sang một giai đoạn sinh sản tồn tại trong các nhà máy Zantedeschia, bất kể kích thước mô phân sinh hoặc tuổi (Naor et al. 2005). KẾT LUẬN Trong hoa vitro phục vụ như là một công cụ quan trọng để nghiên cứu cảm ứng hoa và bắt đầu , và phát triển hoa. Kiểm soát các thành phần môi trường và phương tiện truyền thông cho phép các thao tác của các biến khác nhau, ảnh hưởng đến các quá trình này. Hiểu về sinh lý học của hoa là bước đầu tiên hướng tới