3.5. Polyphenol oxidase (PPO) hoạt động
Browning của bề mặt mới cắt sản phẩm liên quan đến quá trình oxy hóa của các hợp chất phenolic do tác động của PPO, dẫn đến sự hình thành màu nâu bằng sản phẩm (Huque et al., 2013). Trong nghiên cứu này, các hoạt động PPO tăng lên đáng kể trong thời gian lưu trữ (Bảng 2) trong tất cả các mẫu. Sự gia tăng trong hoạt động PPO với thời gian lưu trữ cũng đã được báo cáo trong 'đỏ Jonagored' lát táo (Rocha và Morais, 2002). Các hoạt động PPO trong việc kiểm soát vẫn còn thấp hơn so với các phương pháp điều trị khác một chút khi bảo quản. Mặc dù tia cực tím, CA và phương pháp điều trị CA + UV cải thiện các hoạt động PPO (P <0,05) so với sự kiểm soát và không có sự khác biệt đáng kể (P> 0,05) đã được quan sát trong ba phương pháp điều trị, mức độ màu nâu là khác nhau đáng kể. Điều trị trầm trọng hơn CA nâu, trong khi điều trị tia UV và CA + UV ức chế các màu nâu của táo tươi cắt. Điều này có thể là do khả năng điều trị tia cực tím để tạo thành một màng mỏng và khô, đóng vai trò như rào cản đối với oxy, cần thiết cho các phản ứng enzym nâu. Mặt khác, hoạt động PPO cao không luôn luôn tương quan với màu nâu cao, kể từ khi hoạt động PPO cao hơn trong ống nghiệm có thể không chỉ ra các hoạt động cao trong cơ thể (Wang et al., 2015) và nồng độ hợp chất phenolic và thành phần cũng có thể ảnh hưởng đến màu nâu ( Mishra et al., 2013). Trong một từ, màu nâu là một cơ chế phức tạp và một cuộc điều tra có hệ thống hơn về cơ chế nâu qua biểu hiện gen, hoạt động của enzyme, và sự trao đổi chất phenolic là bắt buộc.
3.6. Phân tích vi sinh
tươi cắt trái cây là một môi trường màu mỡ cho vi sinh vật phát triển do số lượng cao của độ ẩm và lượng đường hiện tại trên bề mặt. Các nghiên cứu về sự phát triển của vi khuẩn tăng trưởng là cần thiết để đảm bảo an toàn vi sinh vật của những sản phẩm (Rojas-GRAU et al., 2007). Những thay đổi trong số lượng vi khuẩn của trái táo tươi cắt trong 15 d lưu trữ được hiển thị trong hình. 2. Số lượng vi khuẩn của tất cả các phương pháp điều trị tăng như thời gian lưu trữ mở rộng. Tuy nhiên, CA, UV và điều trị kết hợp của họ làm chậm sự tăng trưởng của vi sinh vật. Các chất độc hại có thể được tạo ra khi số lượng vi sinh vượt quá 6,0 log CFU / g (Wu et al., 2012). Đối với trái táo tươi cắt được điều trị bởi CA, UV và CA + UV, số lượng vi khuẩn không vượt quá 6,0 log CFU / g sau 15 d, trong khi số lượng vi khuẩn trong sự kiểm soát là hơn 6,0 log CFU / g sau 7 ngày lưu trữ. Điều đáng chú ý là Salmonella và coliform tổng số và phân táo tươi cắt cũng được đánh giá trong nghiên cứu này và không ai trong số những vi sinh vật đã được phát hiện trong bất kỳ mẫu.
Xử lý UV sản xuất 1,5 log CFU / giảm g trong số vi khuẩn và giảm này trong phạm vi giảm bình thường như các nghiên cứu khác cho thấy rằng tác động diệt khuẩn của tia UV-C trong trái cây tươi cắt và rau thường là trong vòng 1 và 2 chu kỳ log (Schenk et al, 2012;.. Graça et al, 2013). Những kết quả này gợi ý rằng một sự kết hợp của tia cực tím với kháng sinh khác là cần thiết để đạt được
hình. 2. đếm vi khuẩn của trái táo tươi cắt và bảo quản ở 5 C.
giảm vi khuẩn hơn. CA thường được công nhận là an toàn (GRAS) để sử dụng như một thành phần thực phẩm (Park et al., 2011) và thường được sử dụng để kiểm soát ô nhiễm vi sinh vật của trái cây tươi cắt và rau quả (Rahman et al., 2011). Trong nghiên cứu này, điều trị CA đã làm giảm vi khuẩn cao hơn (khoảng 2,1 log CFU / g) so với tia cực tím đã làm. Theo dự kiến, CA + Xử lý UV nâng cao tác dụng kháng khuẩn, làm giảm dân số của tổng số vi khuẩn 2,6 log CFU / g vào ngày 0 và duy trì mức thấp nhất trong số tất cả các mẫu trong suốt 15 d của lưu trữ.
đang được dịch, vui lòng đợi..
