Motility testsThe majority of bacte

Motility tests
The majority of bacteria are motile by means of flagella.
Motility can be temperature-dependent and some bacteria
tend to be motile at ambient temperatures but not
at 37°C. Two main methods are used to demonstrate
motility:
Method 1: Direct microscopy using a young broth
culture (2–4 hours’ incubation) of the bacterium
incubated at room temperature. A ‘hanging-drop’
preparation is made by placing a drop of the broth
culture in the centre of a clean cover slip and then
inverting it over a plastic or glass ring (about 5 mm
deep) fixed to a microscope slide (Fig. 2.36). The
preparation is brought into focus under low-power
and then examined with the high-power dry
objective with reduced illumination. The bacterium
is motile if individual cells are moving towards and
away from other cells. Brownian movement is a
constant and random jiggling of all bacterial cells
and other small particles and must not be mistaken
for true motility. If the bacterium appears to be
non-motile by direct microscopy, then this negative
result should be checked by the inoculation of
motility media.
Method 2: Semisolid motility media are available
commercially. Tetrazolium salts can be added to
these media to aid in the detection of motility.
Before autoclaving the motility medium, 0.05 g of
2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC) is added
per litre of medium. Tetrazolium salts are colourless
but as the bacterium grows the dye is incorporated
into the bacterial cells where it is reduced to an
insoluble red pigment, formazan. The red colour
forms only in the area of medium where the
bacterium is growing (Fig. 2.37).
■ Motility media are prepared in test tubes. Two
tubes of the medium are stab-inoculated using a
straight wire. One tube is incubated at room
temperature and the other at 37°C. The tubes are
examined for motility after 24 and 48 hours.
Motile bacteria migrate through the semisolid
medium which becomes turbid. If TTC has been incorporated into the medium, the motility is
demonstrated by a red colour throughout the
agar. The growth of a non-motile bacterium is
confined to the stab line.
• Sulphide indole motility (SIM) medium can be used
to detect motility and will also indicate indole and
hydrogen sulphide production.

Kết quả (Việt) 1:

Motility xét nghiệmPhần lớn các vi khuẩn là giống bằng phương pháp tiên mao.Motility có thể phụ thuộc vào nhiệt độ và một số vi khuẩncó xu hướng giống ở nhiệt độ môi trường xung quanh, nhưng khôngở 37° C. Hai phương pháp chính được sử dụng để chứng minhmotility:Phương pháp 1: Kính hiển vi trực tiếp bằng cách sử dụng một canh nhỏvăn hóa (2-4 giờ ủ) của vi khuẩnủ ở nhiệt độ phòng. Một 'treo thả'chuẩn bị được thực hiện bằng cách đặt một giọt canhvăn hóa ở trung tâm của một phiếu cover sạch và sau đóđảo ngược nó lên một vòng nhựa hoặc thủy tinh (khoảng 5 mmsâu) cố định một slide kính hiển vi (hình 2.36). Cácchuẩn bị được đưa vào tập trung theo năng lượng thấpvà sau đó kiểm tra với Giặt sứmục tiêu giảm chiếu sáng. Vi khuẩnlà giống nếu cá nhân các tế bào đang di chuyển về phía vàra khỏi các tế bào khác. Chuyển động Brown là mộtliên tục và ngẫu nhiên jiggling của tất cả các tế bào vi khuẩnvà các hạt nhỏ và không phải nhầmcho đúng motility. Nếu vi khuẩn dường như làPhòng Không-giống bằng kính hiển vi trực tiếp, sau đó này tiêu cựckết quả nên được kiểm tra bằng cách tiêm phòng củamotility phương tiện truyền thông.Phương pháp 2: Pho motility phương tiện truyền thông có sẵnvề mặt thương mại. Các muối Tetrazolium có thể được thêm vàoCác phương tiện truyền thông để hỗ trợ trong việc phát hiện của motility.Trước khi khử trùng vừa motility, 0.05 g2,3,5-triphenyltetrazolium clorua (TTC) được thêm vàomột lít nước trung bình. Các muối Tetrazolium là không màunhưng khi vi khuẩn phát triển thuốc nhuộm được tích hợpvào các tế bào vi khuẩn, nơi nó giảm đến mộtsắc tố màu đỏ không hòa tan, formazan. Màu đỏbiểu mẫu chỉ trong khu vực của phương tiện mà cácvi khuẩn đang phát triển (hình 2,37).■ Motility media được chuẩn bị trong ống nghiệm. Haiống của các phương tiện đang đâm-tiêm chủng bằng cách sử dụng mộtdây dẫn thẳng. Một trong những ống ủ tại Phòngnhiệt độ và khác ở 37° C. Các ốngkiểm tra xem motility sau 24 đến 48 giờ.Giống vi khuẩn di chuyển qua phophương tiện mà trở nên đục. Nếu TTC đã được tích hợp vào các phương tiện, motility làchứng minh bởi một màu đỏ trong suốt cácAgar. Sự phát triển của một loại vi khuẩn không giống làhạn chế dòng đâm.• Sulphide indole motility (SIM) vừa có thể sử dụngđể phát hiện các motility và cũng sẽ cho thấy indole vàhydro sulphide sản xuất.

Kết quả (Việt) 2:

Vận động kiểm tra
Phần lớn các vi khuẩn có hoạt lực bằng roi.
Vận động có thể được nhiệt độ phụ thuộc và một số vi khuẩn
có xu hướng di chuyển được ở nhiệt độ môi trường xung quanh nhưng không phải
ở 37 ° C. Hai phương pháp chính được sử dụng để chứng minh
khả năng vận động:
Phương pháp 1: kính hiển vi trực tiếp sử dụng nước dùng trẻ
văn hóa (2-4 giờ ủ bệnh) của vi khuẩn
ủ ở nhiệt độ phòng. A 'treo thả'
chuẩn bị được thực hiện bằng cách đặt một giọt nước dùng
văn hóa ở trung tâm của một trượt nắp sạch và sau đó
đảo ngược nó qua một vòng nhựa hoặc thủy tinh (khoảng 5 mm
sâu) cố định với một kính hiển vi (Hình. 2,36 ). Việc
chuẩn bị được đưa vào tập trung dưới công suất thấp
và sau đó kiểm tra với những khô năng lượng cao
quan với giảm chiếu sáng. Vi khuẩn này
là di chuyển được nếu các tế bào cá nhân đang di chuyển hướng tới và
đi từ các tế bào khác. Chuyển động Brown là một
jiggling liên tục và ngẫu nhiên của tất cả các tế bào vi khuẩn
và các hạt nhỏ khác và không được nhầm lẫn
cho nhu động đúng. Nếu vi khuẩn dường như
không di chuyển được bằng kính hiển vi trực tiếp, sau đó tiêu cực này
kết quả sẽ được kiểm tra bởi việc tiêm phòng của
nhu động phương tiện truyền thông.
Phương pháp 2: phương tiện truyền thông vận động của nửa cứng có sẵn
thương mại. Muối tetrazolium có thể được thêm vào
các phương tiện truyền thông để hỗ trợ trong việc phát hiện các khả năng vận động.
Trước khi hấp khử trùng môi nhu động, 0,05 g
2,3,5-triphenyltetrazolium clorua (TTC) được thêm vào
mỗi lít trung bình. Muối tetrazolium không màu
nhưng như vi khuẩn phát triển thuốc nhuộm được đưa
vào tế bào vi khuẩn, nơi nó được giảm đến một
sắc tố màu đỏ không tan, formazan. Màu đỏ
hình thức duy nhất trong khu vực trung nơi
vi khuẩn đang phát triển (Hình. 2.37).
■ phương tiện truyền thông Vận động được chuẩn bị trong ống nghiệm. Hai
ống của môi trường là đâm-tiêm sử dụng một
dây thẳng. Một ống được ủ ở phòng
nhiệt độ và khác ở 37 ° C. Các ống này được
kiểm tra về khả năng vận động sau 24 và 48 giờ.
Vi khuẩn Bào di chuyển qua nửa rắn
trung bình mà trở nên đục. Nếu TTC đã được tích hợp vào môi trường, các nhu động được
thể hiện bằng một màu đỏ trong suốt
thạch. Sự phát triển của một loại vi khuẩn không di chuyển được được
giới hạn trong các dòng đâm.
• sulphide nhu động indole (SIM) trung bình có thể được sử dụng
để phát hiện khả năng vận động và cũng sẽ chỉ ra indole và
hydrogen sulphide sản xuất.