2.3. Total phenolics and phenolic c

2.3. Total phenolics and phenolic composition
2.3.1. Samples extraction
Fresh-cut apples were homogenised in a Waring blender and a 10 g sample was added to 40 mL of 80% ethanol. After 1 h of extraction with magnetic stirring at 900 rpm at room temperature, the extract was centrifuged (Allegra X-30R, Beckman Coulter, USA) at 10,000 g for 10 min at 4 C. Supernatant was collected and residues were re-extracted twice. All three supernatants were combined for subsequent analyses.
2.3.2. Total phenolics
Total phenolics content was determined according to the Folin– Ciocalteau method (Suresh et al., 2013). Extract (100 mL) was mixed with 3.9 mL of water, followed by addition of 250 mL of Folin– Ciocalteau reagent and 750 mL of sodium carbonate solution. The mixturewasallowedtoreact inavortex mixerand thenincubatedfor 2 h at room temperature (22 2C) in dark. Absorbance of the mixture was measured at 765 nm by spectrophotometer (Hitachi U2800 Spectrophotometer, Japan). Total phenolics content was determined from a calibration curve prepared with standard gallic acid solution and was expressed as mass of gallic acid equivalents per fresh weight mass of fruit, mg/kg.
2.3.3. Phenolic composition
Phenolic composition was measured on an Agilent Technologies (Waldbronn, Germany) 1100 Series HPLC system equipped with a photodiode array detector (DAD) according to Hagen et al. (2006) with some modifications. Ten microlitres of filtered samples were separated on a Hypersil BDS C18 column (250 mm 4.6 mm, 5 mm) (Thermo, Bellefonte, PA, USA) eluted with a mobile phase consisted of 2% (v/v) acetic acid in water (solvent A) and 2% (v/v) acetic acid in water and acetonitrile (50:50, v/v, solvent B) at a flow rate of 16.67 mL/s. The phenolic compounds were eluted by a linear gradient from 10 to 55% B in 50 min and monitored at 254 nm, 280 nm and 320 nm. Standard curves for each polyphenol standard were prepared with five different concentration levels and triplicate injections at each level. The concentration of the phenolic compounds was expressed as the mass of phenolics per fresh weight mass of fruit, mg/kg.
2.4. Measurement of color
The color of fresh-cut apples was measured with a Minolta Chroma Meter Model CR-300 (Minolta. Tokyo, Japan), on using the CIELAB color parameters, L* (lightness), a* (green chromaticity), and b* (yellow chromaticity). The results were expressed as a mean value from three replications of the 10 measured samples. Whiteness index (WI) and browning index (BI) were calculated as follows (Palou et al., 1999):
WI ¼ L 3b
BI ¼ ½100ð0x: 172 0:31Þ

where x = (a* + 1.75 L*)/(5.645 L* + a* 3.012 b*)

Kết quả (Việt) 1:

2.3. tổng số phenolics và phenolic thành phần2.3.1. mẫu khai thácTươi cắt táo đã được homogenised trong một máy xay sinh tố Waring và một mẫu 10 g đã được thêm vào 40 mL 80% ethanol. Sau 1 h khai thác với khuấy từ 900 rpm ở nhiệt độ phòng, các chiết xuất là ly (Allegra X-30R, Beckman Coulter, MỸ) tại 10.000 g cho 10 phút tại 4 C. Supernatant đã được thu thập và dư lượng đã được tái trích hai lần. Tất cả ba supernatants đã kết hợp nhất phân tích tiếp theo.2.3.2. tổng phenolicsPhenolics tất cả nội dung đã được xác định theo phương pháp Folin-Ciocalteau (tùng và ctv., năm 2013). Giải nén (100 mL) được trộn lẫn với 3.9 mL nước, sau đó bằng cách thêm 250 ml thuốc thử Folin-Ciocalteau và 750 mL của natri cacbonat giải pháp. Mixturewasallowedtoreact inavortex mixerand thenincubatedfor 2 h ở nhiệt độ phòng (22 2 c) trong bóng tối. Hấp thu của hỗn hợp đã được đo tại 765 nm bởi phối (Hitachi U2800 phối, Nhật bản). Tổng số phenolics nội dung đã được xác định từ một đường cong hiệu chuẩn chuẩn bị với các giải pháp tiêu chuẩn gallic acid và được thể hiện như là khối lượng của gallic acid tương đương một tươi trọng lượng khối lượng của trái cây, mg/kg.2.3.3. phenolic thành phầnPhenolic thành phần đã được đo trên một hệ thống Series HPLC 1100 Agilent Technologies (Waldbronn, Đức) được trang bị với một photodiode array detector (CHA) theo Hagen et al. (2006) với một số sửa đổi. Mười microlitres lọc mẫu đã được tách ra trên một cột Hypersil BDS C18 (250 mm 4,6 mm, 5 mm) (nhiệt, Bellefonte, PA, MỸ) eluted với một điện thoại di động giai đoạn bao gồm axit axetic 2% (v/v) trong nước (dung môi A) và 2% (v/v) axit axetic trong nước và acetonitrile (50: 50, v/v, dung môi B) tại một tỷ lệ lưu lượng 16.67 mL/s. Các hợp chất phenolic đã được eluted bởi một gradient tuyến tính từ 10 đến 55% B trong 50 phút và theo dõi tại 254 nm, 280 nm và 320 nm. Các đường cong chuẩn cho mỗi polyphenol tiêu chuẩn đã được chuẩn bị với mức độ khác nhau tập trung năm và triplicate tiêm ở mỗi cấp. Nồng độ các hợp chất phenolic được thể hiện như là khối lượng của phenolics mỗi tươi trọng lượng khối lượng của trái cây, mg/kg.2.4. đo lường của màu sắcMàu sắc tươi cắt táo đã được đo với một Minolta Chroma mét mẫu CR-300 (Minolta. Tokyo, Nhật bản), sử dụng các CIELAB màu tham số, L * (nhẹ nhàng), một * (màu xanh lá cây chromaticity), và b * (vàng chromaticity). Kết quả đã được thể hiện như một giá trị trung bình từ ba replications của các mẫu đo 10. Chỉ số độ trắng (WI) và chỉ số màu nâu (BI) được tính như sau (Palou và ctv., 1999):WI ¼ L 3bBI ¼ ½100ð0x: 172 0:31Þ trong trường hợp x = (một * + 1.75 L *) / (5.645 L * + một * 3.012 b *)