2.3. Jar testsJar tests were used t

2.3. Jar tests
Jar tests were used to determine the optimal dose of each flocculant
following standard protocols employed in the water and wastewater
treatment fields using common jar test equipment [23]. During one
week, HRAP liquor samples were taken and two jar tests were carried
out for each flocculant in order to determine the optimal concentration
for coagulation–flocculation and sedimentation tests. The range of flocculant
doses for jar tests was selected after previous trials in which it
was observed that optimal doses ranged between 10 and 60 mg/L.
Thus, flocculant concentrations tested were: 10, 20, 30, 40, 50 and
60 mg/L. Altogether, five jar test replicates were performed for each
flocculant. In each experiment aliquots of 500 mL were placed in six
beakers. Increasing flocculant concentrations were simultaneously
added to each beaker, intensively stirred (200 rpm) for 1 min, stimulating
the coagulation process. Following that, beakers were gently stirred
(35 rpm) for 15min, enhancing the flocculation process. Finally, formed
flocs were allowed to settle (without stirring) for 15 min (sedimentation
process). Images of the three jar test steps are shown in Fig. 2. At
the end of the process, supernatant liquid samples were taken from
each beaker; turbidity and pH were measured with a HI93703 Hanna
Instruments Turbidimeter and a Crison 506pH-meter, respectively. Turbidity
and pH were also measured from the mixed liquor without
Table 1
Literature results on microalgal biomass harvesting by coagulation–flocculation and sedimentation with different types of organic polymers.
Microalgae Flocculant Dose Biomass recovery Reference
Tetraselmis suecica Zetag 7650 + Al2(SO4)3 5–50 mg/L (Zetag 7650) + 50 mg/L (Al2(SO4)3) ~100% [3]
Parachlorella Cationic starch (Cargill C*Bond HR 35.849) 120 mg/L N95% [2]
Scenedesmus Cationic starch (Greenfloc 120) 20 mg/L N90% [2]
Scenedesmus dimorphus Cationic starch 10–100 mg/L 70 to 95% [10]
Microalgal-bacteria consortia Drewfloc 447, Flocudex CS/5000, Flocusol
CM/78, Chemifloc CV/300 and Chitosan
25–50 mg/L 58 to 99% [5]
Microcystis aeruginosa Chitosan + Fe3O4 1.6 mg/L (Chitosan) + 4–6 mg/L (Fe3O4) 99% [11]
Spirulina, Oscillatoria and Chlorella Chitosan 15 mg/L 90% [12]
Microalgal-bacterial consortia Chitosan 214 mg/L 92% [13]
Chlorella Sorokiniana Chitosan 10 mg/L 90% [14]
Phaeodactylum tricornutum Chitosan 20 mg/L 80–90% [15]

Kết quả (Việt) 1:

2.3. chai thử nghiệmChai thử nghiệm đã được sử dụng để xác định liều lượng tối ưu của mỗi flocculantgiao thức tiêu chuẩn sau đây được sử dụng trong nước và nước thảilĩnh vực điều trị bằng cách sử dụng bình thường kiểm tra thiết bị [23]. Trong mộttuần trước, HRAP rượu mẫu đã được đưa và hai chai thử nghiệm đã được tiến hànhra cho mỗi flocculant để xác định nồng độ tối ưucho đông máu-chất và lắng thử nghiệm. Phạm vi của flocculantliều để chai thử nghiệm được lựa chọn sau khi thử nghiệm trước đó trong mà nóđược quan sát thấy rằng tối ưu liều trải dài từ 10 đến 60 mg/L.Do đó, nồng độ flocculant thử nghiệm là: 10, 20, 30, 40, 50 và60 mg/L. hoàn toàn, năm jar thử nghiệm sao chép được thực hiện cho mỗiflocculant. Trong mỗi thử nghiệm aliquots 500 ml được đặt trong 6lọ. Flocculant ngày càng tăng nồng độ đã đồng thờiThêm vào mỗi cốc, mạnh mẽ khuấy (200 rpm) trong 1 phút, kích thíchquá trình đông máu. Sau đó, lọ nhẹ nhàng được khuấy(35 rpm) trong 15 phút, nâng cao trình chất. Cuối cùng, hình thànhflocs đã được cho phép để giải quyết (mà không khuấy) cho 15 phút (lắngquá trình). Hình ảnh của các bước kiểm tra ba bình được minh họa trong hình 2. Tạicuối cùng của quá trình, supernatant lỏng mẫu được lấy từmỗi cốc; độ đục và độ pH được đo với một Hanna HI93703Dụng cụ Turbidimeter và một Crison 506pH-mét, tương ứng. Độ đụcvà độ pH được đo từ rượu hỗn hợp mà không cóBảng 1Văn học các kết quả trên microalgal thu hoạch nhiên liệu sinh học bởi đông máu-chất và lắng với loại khác nhau của polyme hữu cơ.Microalgae Flocculant liều lượng nhiên liệu sinh học phục hồi tài liệu tham khảoTetraselmis suecica Zetag 7650 + Al2 (SO4) 3 5-50 mg/L (Zetag 7650) + 50 mg/L (Al2(SO4)3) ~ 100% [3]Tinh bột cation Parachlorella (Cargill C * Bond HR 35.849) 120 mg/L N95% [2]Cation Scenedesmus tinh bột (Greenfloc 120) 20 mg/L N90% [2]Scenedesmus dimorphus Cationic tinh bột 10-100 mg/L 70 đến 95% [10]Microalgal-vi khuẩn consortia Drewfloc 447, Flocudex CS/5000, FlocusolCM/78, Chemifloc CV/300 và Chitosan25-50 mg/L 58 đến 99% [5]Microcystis aeruginosa Chitosan + Fe3O4 1.6 mg/L (Chitosan) + 4-6 mg/L (Fe3O4) 99% [11]Spirulina, Oscillatoria và Chlorella Chitosan 15 mg/L 90% [12]Microalgal-vi khuẩn consortia Chitosan 214 mg/L 92% [13]Chlorella Sorokiniana Chitosan 10 mg/L 90% [14]Phaeodactylum tricornutum Chitosan 20 mg/L 80-90% [15]

Kết quả (Việt) 2:

2.3. Kiểm tra Jar
Jar kiểm tra đã được sử dụng để xác định liều tối ưu của mỗi flocculant
sau giao thức chuẩn làm việc trong nước và nước thải
các lĩnh vực điều trị bằng cách sử dụng thiết bị kiểm tra bình thường [23]. Trong suốt một
tuần, các mẫu rượu HRAP được chụp và hai bài kiểm tra bình được thực
hiện cho mỗi flocculant để xác định nồng độ tối ưu
cho các xét nghiệm đông máu-keo tụ và lắng đọng trầm tích. Phạm vi của các flocculant
liều cho bài kiểm tra bình đã được lựa chọn sau khi thử nghiệm trước đây, trong đó nó
được quan sát thấy rằng liều lượng tối ưu dao động giữa 10 và 60 mg / L.
Như vậy, nồng độ flocculant thử nghiệm là: 10, 20, 30, 40, 50 và
60 mg / L. Nhìn chung, năm lần lặp lại thử nghiệm jar đã được thực hiện cho từng
flocculant. Trong mỗi thí nghiệm phân ước của 500 mL được đặt trong sáu
cốc. Nồng độ flocculant Tăng đã đồng thời
thêm vào mỗi cốc thủy tinh, mạnh mẽ khuấy (200 rpm) trong 1 phút, kích thích
quá trình đông máu. Sau đó, ly đã nhẹ nhàng khuấy
(35 rpm) trong 15 phút, tăng cường quá trình keo tụ. Cuối cùng, hình thành
flocs được phép định cư (không khuấy) trong 15 phút (trầm tích
quá trình). Hình ảnh của ba bước thử nghiệm jar được hiển thị trong hình. 2. Tại
cuối của quá trình, mẫu chất lỏng bề được lấy từ
mỗi cốc; độ đục và pH được đo bằng một HI93703 Hanna
Instruments Turbidimeter và một Crison 506pH-mét, tương ứng. Độ đục
và pH cũng được đo lường từ rượu hỗn hợp mà không
Bảng 1
kết quả Tài liệu về thu hoạch sinh khối tảo bằng kết tủa-keo tụ và lắng với các loại khác nhau của các polyme hữu cơ.
Vi tảo flocculant Liều lượng sinh khối phục hồi Reference
Tetraselmis suecica Zetag 7650 + Al2 (SO4) 3 5 50 mg / L (Zetag 7650) + 50 mg / L (Al2 (SO4) 3) ~ 100% [3]
tinh bột Parachlorella Cationic (Cargill C * Bond HR 35,849) 120 mg / L N95% [2]
tinh bột Cationic Scenedesmus ( Greenfloc 120) 20 mg / L N90% [2]
Scenedesmus dimorphus tinh bột Cationic 10-100 mg / L 70-95% [10]
tảo vi khuẩn tập đoàn Drewfloc 447, Flocudex CS / 5000, Flocusol
CM / 78, Chemifloc CV / 300 Chitosan và
25-50 mg / L 58-99% [5]
Microcystis aeruginosa Chitosan + Fe3O4 1,6 mg / L (Chitosan) + 4-6 mg / L (Fe3O4) 99% [11]
Spirulina, Oscillatoria và Chlorella Chitosan 15 mg / L 90% [12]
tập đoàn tảo khuẩn Chitosan 214 mg / L 92% [13]
Chlorella Sorokiniana Chitosan 10 mg / L 90% [14]
Phaeodactylum tricornutum Chitosan 20 mg / L 80-90% [15]