Materials and methodsThe experiment

Materials and methods
The experiment was a complete randomised design
with four treatments and 12 replicates. We used 320
female commercial Cobb 500 broiler chickens (Baiada
Poultry Pty Ltd., Tamworth, Australia), which were
hatched from a 42–week–old parent flock. The parent
birds were vaccinated against MD with Rispens CVI988
vaccine so that the chicks would contain maternal
antibody to serotype–1 MDV. The experimental
treatments (n = 80) were: HVT 4000, vaccinated in ovo
on day 18 of incubation with 4000 plaque forming units
(pfu) of HVT; HVT 8000, vaccinated in ovo on day 18 of
incubation with 8000 pfu of HVT; SHAM, injected in
ovo on day 18 of incubation with diluent only; UNVACC,
no treatment on day 18 of incubation.
Birds were vaccinated at the hatchery
(Baiada Poultry Pty. Ltd., Kootingal, Australia) using
the automated INOVOJECT® method (Embrex
Inc. NC, USA). The vaccine was a live cell–associated
HVT (Strain FC 126, Batch no. 3203; The Marek’s
Company, North Ringwood, Vic. Australia). Doses
were administered using 100 µl of the diluent
supplied by the manufacturer. All birds, including
those of the unvaccinated treatment, were vaccinated
against infectious bronchitis (IB) at hatch using
aerosol and a live IB virus of the Vic S strain (Fort Dodge,
Vic, Australia).
The experiment was conducted in four climate–
controlled rooms at the University of New England,
Armidale, Australia. The rooms, hallway and cages were
cleaned, disinfected and treated with a virucide (Virkon
S, Antec International Janos Hoey Pty. Ltd., Forbes,
NSW Australia) prior to the commencement of the
experiment. Rooms were maintained under positive
pressure, and temperature and humidity were controlled
using a computerised system.
Chicks were brooded from days 0–14 in 24 multi–
tiered mini–brooders with 0.406 m² cage floor space
(0.03–0.04 m2/bird). On arrival, birds were permanently
marked using toe–web cut marks and allocated to
treatments. Each treatment was divided into groups of
11 or 12 birds and weighed. Each group of chicks was
randomly allocated to one of 24 mini–brooders (six
replicates per treatment). From days 14–56 of the
experiment, chickens were reared in four rooms in
48 group AME cages (12 cages per room) with a cage
floor space of 0.322 m² (0.06–0.07 m2/bird). All rooms
contained the same number of chickens from each
treatment. On day 7, birds were individually identified
with wing–tags.
Feed and water were provided in galvanized iron
troughs and were available ad libitum. Birds were fed a
commercial broiler starter crumble diet from day 0–17
and a commercial broiler finisher diet from day 18–49
(Ridley Agriproducts Pty. Ltd., Tamworth, Australia).
The birds were also provided with water–soluble multi–
vitamins on day 36 (CCD Animal Health, Girraween,
Australia) because of mortality due to ascites.
Temperature at the start of the brooding period
was set to oscillate between 34°C and 38ºC (average
36ºC). Temperature was reduced in increments of
2ºC every two days until a temperature of 22ºC was
reached on day 14. From day 14, the temperature of all
rooms was set to oscillate between 21°C and 23ºC until
termination of the experiment on day 49. Data loggers,
which measured temperature and humidity hourly, were
placed in the rooms on day 35. The lighting schedule
consisted of continuous light for the first five days and
a 12–hour light–dark cycle from day 5

Kết quả (Việt) 1:

Vật liệu và phương phápCác thử nghiệm là một thiết kế hoàn toàn randomisedvới phương pháp điều trị 4 và 12 sao chép. Chúng tôi sử dụng 320nữ thương mại Cobb 500 gà thịt (BaiadaChăn nuôi gia cầm Pty Ltd, Tamworth, Úc), đãnở từ một đàn 42-tuần-old phụ huynh. Phụ huynhchim đã tiêm phòng chống MD với Rispens CVI988vắc xin để cho gà con sẽ chứa các bà mẹkháng thể để serotype – 1 MDV. Các thử nghiệmphương pháp điều trị (n = 80): HVT 4000, tiêm trong ovovào ngày 18 ấp với 4000 mảng bám hình thành các đơn vị(pfu) của HVT; HVT 8000, tiêm phòng tại ovo ngày 18ấp trứng với 8000 pfu HVT; SHAM, tiêm trongovo ngày 18 ấp với pha loãng UNVACC,không có điều trị ngày 18 ấp.Chim đã tiêm phòng tại trại giống(Baiada cầm Pty. Ltd., Kootingal, Australia) bằng cách sử dụngphương pháp tự động INOVOJECT® (EmbrexInc NC, USA). Vắc-xin là sống một tế bào-liên kếtHVT (căng FC 126, lô số 3203; Marek'sCông ty, North Ringwood, Vic. Úc). Liều lượngđược quản lý bằng cách sử dụng 100 ml pha loãngđược cung cấp bởi các nhà sản xuất. Tất cả các loài chim, bao gồm cảnhững người điều trị unvaccinated, được tiêm phòngĐối với viêm phế quản truyền nhiễm (IB) tại bằng cách sử dụng hatchBình xịt và virus IB sống của các chủng Vic S (Fort Dodge,Vic, Úc).Các thử nghiệm được tiến hành tại bốn khí hậu-kiểm soát phòng tại Đại học New England,Armidale, Úc. Phòng, hành lang và lồnglàm sạch, khử và được điều trị với một virucide (VirkonS, Antec quốc tế Janos Hoey Pty. Ltd., Forbes,NSW Australia) trước khi bắt đầu cácthử nghiệm. Phòng được duy trì theo tích cựcáp lực, và nhiệt độ và độ ẩm được kiểm soátbằng cách sử dụng một hệ thống điện toán.Gà con đã được đã từ ngày 0-14 trong 24 multi-mini-brooders tầng với không gian sàn lồng 0.406 m² (0.03 – 0.04 m2/chim). Khi đến nơi, chim đã vĩnh viễnđánh dấu bằng cách sử dụng ngón chân-trang web cắt đánh dấu và được giao chophương pháp điều trị. Mỗi lần điều trị này được chia thành các nhóm11 hoặc 12 loài chim và cân nặng. Mỗi nhóm gà làngẫu nhiên được phân bổ cho một trong 24 mini-brooders (sáusao chép một điều trị). Từ ngày 14 – 56 của cácthử nghiệm, gà được nuôi trong bốn phòng ở48 nhóm AME lồng (12 lồng cho mỗi phòng) với một lồngtầng không gian của 0.322 m² (0,06-0,07 m2/chim). Tất cả các phòngcó cùng số lượng gà từ mỗiđiều trị. Vào ngày 7, chim đã được xác định riêng rẽvới cánh-tags.Thức ăn và nước được cung cấp trong sắt mạ kẽmMáng và quảng cáo có sẵn libitum. Chim được cho ăn mộtthương mại thịt starter sụp đổ chế độ ăn uống từ ngày 0-17và một chế độ ăn vỗ thương mại thịt từ ngày 18 – 49(Ridley Agriproducts Pty Ltd, Tamworth, Úc).Những con chim cũng được cung cấp với nhiều nước – hòa tan-vitamin vào ngày 36 (CCD thú y, Girraween,Úc) vì tỷ lệ tử vong do ascites.Nhiệt độ lúc bắt đầu của thời kỳ dàiđã được thiết lập để dao động giữa 34° C và 38ºC (trung bình36ºC). Nhiệt độ đã giảm xuống trong từng bước của2ºC mỗi hai ngày cho đến khi nhiệt độ 22ºCđến ngày 14. Từ ngày 14, nhiệt độ của tất cảPhòng được thiết lập để dao động giữa 21° C và 23ºC cho đến khichấm dứt thử nghiệm vào ngày 49. Dữ liệu Logger,đo nhiệt độ và độ ẩm mà theo giờ, đãĐặt phòng vào ngày 35. Lịch chiếu sángbao gồm ánh sáng liên tục trong năm ngày đầu tiên vàmột ánh sáng-tối 12-giờ chu kỳ từ ngày 5

Kết quả (Việt) 2:

Vật liệu và phương pháp
Thí nghiệm là hoàn toàn ngẫu nhiên
với bốn phương pháp điều trị và 12 lần nhắc lại. Chúng tôi sử dụng 320
thương mại Cobb 500 gà thịt nữ (Baiada
gia cầm Pty Ltd, Tamworth, Australia), đã được
ấp ủ từ một bầy mẹ 42 tuần tuổi. Phụ huynh
cầm được tiêm phòng MD với Rispens CVI988
vắc-xin để các gà con sẽ chứa mẹ
kháng thể để serotype-1 MDV. Các thử nghiệm
phương pháp điều trị (n = 80) là: HVT 4000, tiêm chủng trong ovo
vào ngày 18 ấp với 4.000 đơn vị mảng bám hình thành
(PFU) của HVT; HVT 8000, tiêm chủng trong ovo vào ngày 18 của
ủ với 8000 PFU của HVT; Sham, tiêm trong
ovo vào ngày 18 ấp với chỉ pha loãng; UNVACC,
không điều trị vào ngày 18 ấp.
Chim đã được chích ngừa tại trại giống
(Baiada gia cầm Pty. Ltd., Kootingal, Úc) sử dụng
các phương pháp INOVOJECT® tự động (Embrex
Inc. NC, USA). Vắc-xin là một tế bào có liên quan trực tiếp
HVT (Strain FC 126, hàng loạt không 3203;. Các Marek
. Công ty, Bắc Ringwood, Vic Australia). Liều dùng
được quản lý sử dụng 100 ml dung môi
được cung cấp bởi nhà sản xuất. Tất cả các loài chim, trong đó có
những điều trị chưa được tiêm chủng, đã tiêm phòng
chống viêm phế quản truyền nhiễm (IB) tại hatch sử dụng
bình xịt và một loại virus IB sống của các chủng Vic S (Fort Dodge,
Vic, Australia).
Thí nghiệm được tiến hành tại bốn climate-
được kiểm soát phòng tại Đại học New England,
Armidale, Úc. Các phòng, hành lang và lồng được
làm sạch, khử trùng và điều trị với một virucide (Virkon
S, Antec International Janos Hoey Pty. Ltd., Forbes,
NSW Australia) trước khi bắt đầu các
thí nghiệm. Phòng được duy trì dưới tích cực
áp, nhiệt độ và độ ẩm được kiểm soát
bằng cách sử dụng hệ thống máy vi tính.
Chicks đã được nghiền ngẫm từ ngày 0-14 trong 24 đa
phân tầng mini-lò ấp với 0,406 gian sàn lồng m²
(0,03-0,04 m2 / con). Khi đến nơi, con chim đã vĩnh viễn
đánh dấu bằng cắt vết chân-web và phân bổ cho các
phương pháp điều trị. Mỗi lần điều trị đã được chia thành các nhóm
11 hoặc 12 loài chim và nặng. Mỗi nhóm gà được
phân ngẫu nhiên vào một trong 24 mini-lò ấp trứng (sáu
lần nhắc lại mỗi lần điều trị). Từ ngày 14-56 của
thí nghiệm, gà được nuôi trong bốn phòng trong
lồng AME 48 nhóm (12 lồng mỗi phòng) với một cái lồng
không gian sàn của 0,322 m² (0,06-0,07 m2 / con). Tất cả các phòng
chứa cùng một số gà từ mỗi
điều trị. Vào ngày 7, chim đã được xác định riêng rẽ
với cánh đuôi.
Thức ăn và nước uống được cung cấp sắt mạ kẽm
đáy và được ăn tự do quảng cáo có sẵn. Chim được cho ăn một
khởi gà thịt thương mại sụp đổ chế độ ăn uống từ ngày 0-17
và một chế độ ăn uống của gà thịt xuất chuồng thương mại từ ngày 18-49
(Ridley Agriproducts Pty. Ltd., Tamworth, Australia).
Các loài chim cũng được cung cấp với đa tan trong nước
vitamin vào ngày 36 (CCD Thú y, Girraween,
Úc) vì tỷ lệ tử vong do tràn dịch màng bụng.
nhiệt độ lúc bắt đầu của thời kỳ ấp trứng
đã được thiết lập để dao động giữa 34 ° C và 38ºC (trung bình
36ºC). Nhiệt độ đã giảm trong gia của
2ºC mỗi hai ngày cho đến khi nhiệt độ 22ºC đã
đạt vào ngày 14. Từ ngày 14, nhiệt độ của tất cả các
phòng đã được thiết lập để dao động giữa 21 ° C và 23ºC cho đến khi
chấm dứt cuộc thử nghiệm vào ngày 49. Dữ liệu logger,
mà đo nhiệt độ và độ ẩm hàng giờ, được
đặt trong phòng vào ngày 35. lịch trình ánh sáng
bao gồm ánh sáng liên tục trong năm ngày đầu tiên và
12 giờ chu kỳ ánh sáng-tối từ ngày thứ 5