bacterial concentrations were deter

bacterial concentrations were determined by measuring OD at 600 nm. The OD
values were converted into concentration of E. coli cells (CFU per milliliter) (21,
31). OriginPro 7.5 software was used to analyze the experimental data and for
graphing (see Fig. 1 and 3 to 7).
Bacterial susceptibility to nanosilver. To examine the susceptibility of E. coli
to different silver nanoparticles, nutrient agar plates from a solution of agar were
prepared. A 100-l sample of bacterial suspension cultured in NB (with a
concentration of 105 or 107 CFU/ml of E. coli) was plated on a nutrient agar
plate. The plates were then supplemented with different amounts of nanosize
silver particles (1 to 100 g), and the plates were incubated further at 37°C. The
numbers of resultant colonies were counted after 24 h of incubation. Silver-free
plates incubated under the same conditions were used as controls. The counts
from three independent experiments corresponding to a particular sample were
averaged.
EFTEM analysis was also carried out to examine sections of the treated
bacteria. Images of negatively stained particles were acquired as follows. Concentrated
aqueous suspensions of E. coli cells were deposited on Formvar-coated
grids and allowed to sit for a few minutes. The grids were exposed to aqueous 1%
phosphotungstic acid for 30 s. The residual staining solution was then removed,
and the samples were immediately transferred to a microscope for inspection.
EFTEM images were acquired on a LIBRA 120 (Carl Zeiss) transmission electron
microscope.
Characterization of silver nanoparticles. The synthesized nanoparticles were
characterized by UV-visible spectroscopy and EFTEM. EFTEM images were
observed with a LIBRA 120 (Carl Zeiss) transmission electron microscope. The
samples were prepared by placing a drop of homogeneous suspension on a
copper grid with a lacey carbon film and allowing it to dry in air. Mean particle
size was analyzed from the digitized images with Image Tool software. UVvisible
absorption spectra were recorded with an Optizen 2120 UV-visible spectrophotometer
(Mecasys, Daejeon, Korea) with a 1-cm quartz cell.

Kết quả (Việt) 1:

vi khuẩn nồng độ đã được xác định bằng cách đo OD tại 600 nm. ODgiá trị được chuyển đổi thành các tập trung của E. coli tế bào (CFU mỗi milliliter) (21,31). OriginPro 7,5 phần mềm được sử dụng để phân tích các dữ liệu thử nghiệm và chovẽ đồ thị (xem hình 1 và 3-7).Vi khuẩn nhạy cảm với nanosilver. Để kiểm tra tính nhạy cảm của E. colihạt nano bạc khác nhau, chất dinh dưỡng agar tấm từ một giải pháp của agar làchuẩn bị sẵn sàng. Một mẫu 100-l của vi khuẩn đình chỉ nuôi cấy trong NB (với mộtnồng độ của 105 hoặc 107 CFU/ml của E. coli) được mạ trên một agar dinh dưỡngtấm. Các mảng được bổ sung sau đó với số tiền khác nhau của nanosizebạc hạt (1-100 g), và các tấm được ủ thêm ở 37° C. Cácsố lượng kết quả thuộc địa đã được tính sau 24 h ấp. Bạc miễn phítấm ủ theo các điều kiện tương tự đã được sử dụng như điều khiển. Số lầntừ ba thí nghiệm độc lập tương ứng với một mẫu cụ thể đãTrung bình.EFTEM phân tích cũng được thực hiện để kiểm tra các phần của các điều trịvi khuẩn. Hình ảnh của tiêu cực màu hạt đã được mua lại như sau. Tập trungdung dịch nước đình chỉ của E. coli tế bào đã được gửi vào bọc Formvarlưới và có thể ngồi trong một vài phút. Lưới đã tiếp xúc với dung dịch nước 1%phosphowolframic axit cho 30 s. Dư nhuộm giải pháp sau đó đã được gỡ bỏ,và các mẫu được ngay lập tức chuyển sang một kính hiển vi để kiểm tra.EFTEM hình ảnh đã được mua lại trên một LIBRA 120 (Carl Zeiss) truyền điện tửkính hiển vi.Đặc tính của các hạt nano bạc. Các hạt nano tổng hợpđặc trưng quang phổ UV có thể nhìn thấy và EFTEM. EFTEM hình ảnh đãquan sát bằng kính hiển vi điện tử truyền LIBRA 120 (Carl Zeiss). Cácmẫu đã được chuẩn bị bằng cách đặt một giọt đồng nhất treo trên mộtlưới đồng với một bộ phim lacey cacbon và cho phép nó để khô trong không khí. Có nghĩa là hạtKích thước được phân tích từ các hình ảnh số hóa với công cụ hình ảnh phần mềm. UVvisiblequang phổ hấp thụ được ghi nhận với một phối Optizen 2120 UV-nhìn thấy(Mecasys, Daejeon, Hàn Quốc) với một tế bào thạch anh 1 cm.

Kết quả (Việt) 2:

nồng độ vi khuẩn được xác định bằng cách đo OD ở 600 nm. Các OD
giá trị đã được chuyển đổi thành nồng độ E. coli tế bào (CFU mỗi ml) (21,
31). OriginPro 7,5 phần mềm được sử dụng để phân tích các dữ liệu thực nghiệm và cho
vẽ đồ thị (xem hình. 1 và 3-7).
Tính nhạy cảm của vi khuẩn để nanosilver. Để kiểm tra sự nhạy cảm của E. coli
với các hạt nano bạc khác nhau, tấm thạch dinh dưỡng từ một dung dịch agar đã
chuẩn bị. Một mẫu 100-? L của dịch khuẩn được nuôi cấy trong NB (với
nồng độ 105 hoặc 107 CFU / ml E. coli) được mạ trên môi trường thạch dinh dưỡng
tấm. Các tấm được sau đó được bổ sung với số lượng khác nhau của nanosize
hạt bạc (1-100? G), và các tấm được ủ thêm ở 37 ° C. Các
con số của các thuộc địa kết quả được tính sau 24 giờ ủ. Silver-free
tấm ủ theo các điều kiện tương tự đã được sử dụng như điều khiển. Đếm
từ ba thí nghiệm độc lập tương ứng với một mẫu cụ thể được
tính trung bình.
Phân tích EFTEM cũng đã được thực hiện để kiểm tra các phần của điều trị
vi khuẩn. Hình ảnh của các hạt màu tiêu cực đã được mua lại như sau. Tập trung
huyền phù dung dịch nước của các tế bào E. coli được lắng tụ trên Formvar bọc
lưới và được phép ngồi trong một vài phút. Các lưới đã được tiếp xúc với dung dịch 1%
axit phosphotungstic trong 30 s. Các giải pháp nhuộm dư sau đó đã được gỡ bỏ,
và các mẫu được lập tức chuyển đến một kính hiển vi để kiểm tra.
EFTEM hình ảnh đã được thu thập trên một LIBRA 120 (Carl Zeiss) điện tử truyền qua
kính hiển vi.
Đặc tính của hạt nano bạc. Các hạt nano tổng hợp được
đặc trưng bởi các tia cực tím có thể nhìn thấy quang phổ và EFTEM. Hình ảnh EFTEM đã được
quan sát với một LIBRA 120 (Carl Zeiss) kính hiển vi điện tử truyền qua. Các
mẫu đã được chuẩn bị bằng cách đặt một giọt huyền phù đồng trên một
lưới đồng với một bộ phim lacey carbon và cho phép nó để khô trong không khí. Mean hạt
kích thước đã được phân tích từ những hình ảnh được số hóa với công cụ hình ảnh phần mềm. UVvisible
quang phổ hấp thụ được ghi lại với một Optizen 2120 UV-quang phổ nhìn thấy được
(Mecasys, Daejeon, Hàn Quốc) với một tế bào thạch anh 1-cm.