Weissling & Giblin-Davis: Rhynchoph

Weissling & Giblin-Davis: Rhynchophorus cruentatus diets 225
OLIGIDIC DIETS FOR CULTURE OF RHYNCHOPHORUS
CRUENTATUS (COLEOPTERA: CURCULIONIDAE)
THOMAS J. WEISSLING1 AND ROBIN M. GIBLIN-DAVIS2
University of Florida, Institute of Food and Agricultural Sciences,
Fort Lauderdale Research and Education Center, 3205 College Ave.,
Fort Lauderdale, FL 33314
ABSTRACT
Several artificial diets were evaluated as alternatives to decomposing pineapple
[Ananas comosus (L.) Merrill] for culture of Rhynchophorus cruentatus (F.) larvae.
The most suitable diet tested for larval growth and survival was a combination of
canned pineapple, oats, sucrose, molasses, brewers yeast, Wesson’s salts, vitamins,
and preservatives. Diets that were not supplemented with brewers yeast provided
poor larval growth and survival. Larvae cultured from artificial diets were placed in
sugarcane (Saccharum officinarum L.) for pupation.
Key Words: Palm weevil, palmetto weevil, laboratory rearing, artificial diets.
RESUMEN
Varias dietas artificiales fueron evaluadas como alternativas a la piña descompuesta
[Ananas comosus (L.) Merrill] para el cultivo de larvas de Rhynchophorus
cruentatus (F.). La mejor dieta probada para el crecimiento y la supervivencia larval
fué una combiación de piña enlatada, cebada, azúcar, melaza, levadura de cerveza, sales
de Weson, vitaminas y preservativos. Las dietas sin levadura de cerveza produjeron
poco crecimiento larval y sobrevivencia. Las larvas criadas en dietas artificiales
fueron colocadas en caña de azúcar (Saccharum officinarum L.) para su pupación.
Rhynchophorus cruentatus (F.) is the only species of palm weevil in the continental
United States (Wattanapongsiri 1966). Unlike several of its congeners, R. cruentatus
is not considered a major pest of palms. However, this species will attack transplanted
or otherwise stressed ornamental palms (Giblin-Davis & Howard 1988, 1989). In
Florida, R. cruentatus is sympatric with the native cabbage palmetto, Sabal palmetto
(Walter) Loddiges ex Schultes (Woodruff 1967), a palm often used as mature specimens
in landscaping due to its low cost, natural abundance, and high transplanting
survivorship.
Semiochemicals emanating from wounded or dying palms (Chittenden 1902, Wattanapongsiri
1966, Weissling et al. 1992, Giblin-Davis et al. 1994) and conspecific
weevils (Weissling et al. 1993, 1994) are attractive to R. cruentatus adults. Females
lay eggs in the leaf bases or directly into the wounds of dying host palms. The larvae
molt several times and are voracious consumers of tissue within the bud and stem.
Last-instar larvae migrate to the periphery of the host, prepare a cocoon from the fi-
1
Present Address: United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service,
3706 W. Nob Hill Blvd., Yakima, WA 98902 2
To whom correspondence should be addressed.
This document was created with FrameMaker 4.0.2
226 Florida Entomologist 78(2) June, 1995
ber, and enter a pupal stage. Following eclosion, adults emerge from the tree. The life
cycle of this weevil usually is completed in less than 84 d (see Giblin-Davis & Howard
1989 for detailed description).
Research on the biology of R. cruentatus, as well as its vector potential for the red
ring nematode [Bursaphelenchus cocophilus (Cobb)], requires the collection of adults
in the field, an expensive and time consuming endeavor. Thus, a laboratory rearing
method for R. cruentatus was needed. Three other species of palm weevils have been
reported to be cultured in the laboratory. Rhynchophorus ferrugineus (Olivier)
(Rananavare et al. 1975) and R. palmarum (L.) (Wilson 1963) can be cultured using
cut petiole or stem tissue of coconut palms, and R. cruentatus has been reared on buds
of an alternate host, Serrenoa repens (Bartram) Small (Berger 1907). However, collection
of palm tissue for culture of weevils is also expensive. Rahalkar et al. (1972) reported
that sugarcane is a good substitute for coconut stem for rearing R. ferrugineus.
This method was improved by incorporating sugarcane in nutrient agar for young larvae
and whole sugarcane stem pieces for older larvae (Rananavare et al. 1975). Culture
of R. ferrugineus was further improved by development of an artificial diet
(Rahalkar et al. 1978, 1985) containing sugarcane bagasse (fiber), coconut cake, yeast,
sucrose, minerals, vitamins, and preservatives. Using a combination of corn flour,
sugarcane fiber, oats, sugar, coconut oil, and propionic acid for a larval medium and
sugarcane for pupation, Sánchez et al. (1993) successfully cultured R. palmarum.
Giblin-Davis et al. (1989) determined that R. cruentatus and R. palmarum could be
cultured on decomposing pineapple [Ananas comosus Merrill] syncarp for young larvae
and sugarcane stem for mature larvae. However, variation in the quality and
availability of pineapple, and the inconvenience of working with decomposing material,
prompted the development and evaluation of several agar-based diets for
laboratory-culture of R. cruentatus.
MATERIALS AND METHODS
Insects
R. cruentatus adults were harvested as cocoons from infested S. palmetto, placed
individually in covered 100-ml plastic cups with moistened tissue paper (Giblin-Davis
et al. 1989) and stored at 29 °C until adult emergence. Females and males were placed
as individual pairs in 500-ml covered containers with moistened tissue paper and a
slice of apple (Pyrus malus L.). The apple slices were replaced at 1-3 day intervals,
carefully dissected, and the eggs removed (Weissling & Giblin-Davis 1994). Eggs were
transferred to petri dishes (15 × 100 mm) lined with moistened filter paper, sealed
with parafilm, and stored at 29 °C until neonate larvae emerged.
Diet Preparation
All diets included 50 g bacto-agar (Difco Laboratories, Detroit, MI), 12.5 crushed
vitamin tablets (Centrum; Lederle Laboratories Div., Pearl River, NY), and 1892 ml
water. Each vitamin tablet weighed 1.4 g and contained: vitamins A (5000 I.U.), E (30
I.U.), C (60 mg), B1 (1.5 mg), B2 (1.7 mg), B6 (2 mg), B12 (6 µg), D (400 I.U.), and K1 (25
µg), folic acid (400 µg), niacinamide (20 mg), biotin (30 µg), pantothenic acid (10 mg),
calcium (162 mg), phosphorus (125 mg), iodine (150 µg), iron (18 mg), magnesium (100
mg), copper (2 mg), zinc (15 mg), manganese (2.5 mg), potassium (40 mg), chloride
(36.3 mg), chromium (25 µg), molybdenum (25 µg), selenium (25 µg), nickel (5 µg), tin
(10 µg), silicon (10 µg), and vanadium (10 µg). In addition, all diets contained the pre-
Weissling & Giblin-Davis: Rhynchophorus cruentatus diets 227
servatives: m-para-hydroxybenzoate [14% solution in 95% ethyl alcohol (25 ml)], sorbic
acid [12.5% solution in 95% ethyl alcohol (37.5 ml) in preliminary tests or 6.28 g
sorbic acid potassium salt in refined diets], and 4M potassium hydroxide solution (7.5
ml) (Rahalkar et al. 1985). All other ingredients and amounts are listed in Table 1. All
materials except the crushed vitamin capsules and a 500-ml aliquot of water were
blended for approximately 2 min and poured into a 5.7-liter stainless-steel bowl. The
blender was rinsed with the remaining water and poured into the bowl. The mixture
was then autoclaved for 20 min at 120 °C. As the diet cooled, the crushed vitamin tablets
were added and the media was stirred. Diets were poured into diet cups while still
warm. When diets cooled, a small hole was made in the diet surface to facilitate feeding
and larvae were transferred one per diet cup with a fine camel hair brush. Diet
cups were covered with a lid vented by several small holes. After 24 h, diets were
checked and dead larvae were replaced. All tests were conducted in an environmental
chamber at 29 °C with a photoperiod of 13:11 (L:D).
Preliminary Evaluation of Diets
Ten to twenty replicates of seventeen different diets (Table 1) were evaluated in
preliminary tests for larval and adult biomass gain and survival. We also included the
diet for culture of R. ferrugineus (Rahalkar et al. 1985). Experimental diets consisted
of 100 g of diet in 100-ml cups. Preliminary observations indicated the need for fresh
diet if larvae were left in culture for more than three weeks (unpublished data). Thus,
larvae fed diets 1-17 and the published diet were removed from cups after three weeks
and transferred to 100 g of fresh diet. During this transfer, larvae were rinsed with
water, patted dry with paper toweling, and weighed. After an additional two weeks,
larvae were removed, cleaned, and reweighed. To determine if larvae could be cultured
for more than three weeks without a change in diet, we included diet 18 which
was 200 g of diet 3. However, 100-ml cups were too small for this amount of diet so the
media was placed in 500-ml cups. Larvae on diet 18 remained undisturbed for five
weeks, at which time they were cleaned and weighed. After the final weighing, larvae
from all diets were individually placed into holes (0.95 cm diam) drilled 10 cm into one
end of 23-25 cm lengths of sugarcane (Giblin-Davis et al. 1989). Stems were wrapped
in window screen secured at each end by elastic bands, and placed in an environmental
chamber at 29 °C. After three weeks, stems were split open and cocoons, if present,
were removed and placed in 100-ml vented cups with moistened tissue paper and
stored at 29 °C until adult emergence. If larvae were still present, the cane was carefully
re-wrapped, placed back in the environmental chamber, and checked one week
later.
Culture Technique Modifications
The biomass and survival of larvae reared for three weeks on diets 2, 3, 12, 13,
and 15 was good in preliminary tests (Table 2). Therefore, larvae were tested again
on these diets when reared in 100-ml cups (100 g of diet) and then transferred to
sugarcane after three weeks. This was done to determine if healthy weevils were produced
under this time and resource saving regimen. Based on acceptable growth of
larvae cultured on diet 18 in 500-ml cups (Table 2), we also compared larval growth
on the diets described above when

Kết quả (Việt) 1:

Weissling & Giblin-Davis: Rhynchophorus cruentatus kiêng 225OLIGIDIC CHẾ ĐỘ ĂN UỐNG CHO NỀN VĂN HÓA CỦA RHYNCHOPHORUSCRUENTATUS (COLEOPTERA: CURCULIONIDAE)THOMAS J. WEISSLING1 VÀ ROBIN M. GIBLIN-DAVIS2Đại học Florida, viện thực phẩm và nông nghiệp khoa học,Fort Lauderdale nghiên cứu và Trung tâm giáo dục, 3205 College Ave.,Fort Lauderdale, FL 33314TÓM TẮTMột số chế độ ăn nhân tạo đã được đánh giá là lựa chọn thay thế để phân hủy dứa[Ananas comosus (L.) Merrill] cho nền văn hóa của Rhynchophorus cruentatus (F.) ấu trùng.Chế độ ăn uống thích hợp nhất thöû nghieäm ấu trùng tăng trưởng và sự sống còn là một sự kết hợp củađóng hộp dứa, yến mạch, sucrose, mật đường, nấm men bia, các muối của Wesson, vitamin,và chất bảo quản. Chế độ ăn uống không được bổ sung với nấm men bia cung cấpsự tăng trưởng nghèo ấu trùng và sự sống còn. Ấu trùng ăn nuôi cấy từ chế độ ăn uống nhân tạo được đặt trong họmía (Saccharum officinarum L.) cho pupation.Từ khóa: Palm weevil, palmetto mọt, Phòng thí nghiệm nuôi, nhân tạo chế độ ăn uống.RESUMENVarias dietas artificiales fueron evaluadas como alternativas a la piña descompuesta[Ananas comosus (L.) Merrill] para el cultivo de larvas de Rhynchophoruscruentatus (F.). La mejor dieta probada para el crecimiento y la supervivencia ấu trùngfué una combiación de piña enlatada, cebada, azúcar, melaza, levadura de cerveza, bán hàngde Weson, vitaminas y preservativos. Las dietas tội lỗi levadura de cerveza produjeronPOCO crecimiento ấu y sobrevivencia. Las larvas criadas en dietas artificialesfueron colocadas en Cana de azúcar (Saccharum officinarum L.) para su pupación.Rhynchophorus cruentatus (F.) là loài duy nhất của palm weevil trong lục địaHoa Kỳ (Wattanapongsiri 1966). Không giống như một số của nó congeners, R. cruentatuskhông được coi là một dịch hại lớn của lòng bàn tay. Tuy nhiên, loài này sẽ tấn công cấyhoặc nếu không nhấn mạnh cảnh palms (Giblin-Davis & Howard 1988, 1989). ỞFlorida, R. cruentatus là loài với bản xứ cải bắp palmetto, Sabal palmetto(Walter) Loddiges cũ Schultes (Woodruff 1967), một lòng bàn tay thường được sử dụng như là trưởng thành mẫutrong cảnh quan do sự phong phú với chi phí thấp, tự nhiên, và cao cấyđường.Semiochemicals phát ra từ lòng bàn tay bị thương hay chết (Chittenden 1902, WattanapongsiriNăm 1966, Weissling et al. năm 1992, Giblin-Davis và ctv 1994) và conspecificWeevils (Weissling et al. năm 1993, 1994) là hấp dẫn đối với người lớn R. cruentatus. Nữđẻ trứng ở gốc lá hoặc trực tiếp vào những vết thương của chết lòng bàn tay máy chủ lưu trữ. Ấu trùngmolt nhiều lần và là người tiêu dùng tham ăn của mô trong bud và thân cây.Cuối cùng-instar ấu trùng di chuyển đến ngoại vi của các máy chủ, chuẩn bị một cái kén từ fi-1Hiện tại địa chỉ: Hoa Kỳ sở nông nghiệp, Dịch vụ nghiên cứu nông nghiệp,3706 người W. Nob Hill Blvd., Yakima, WA 98902 2Để người mà thư cần được giải quyết.Tài liệu này được tạo ra với FrameMaker 4.0.2226 Florida côn trùng học 78(2) tháng 6 năm 1995Ber, và nhập vào một giai đoạn pupal. Sau eclosion, người lớn xuất hiện từ cây. Cuộc sốngchu kỳ của mọt này thường được hoàn thành trong ít hơn 84 d (xem Giblin-Davis & Howardnăm 1989 cho mô tả chi tiết).Nghiên cứu về sinh học của R. cruentatus, véc tơ tiềm năng cho các màu đỏvòng nematode [Bursaphelenchus cocophilus (Cobb)], yêu cầu bộ sưu tập của người lớntrong lĩnh vực, một nỗ lực đắt tiền và tốn thời gian. Vì vậy, một phòng thí nghiệm nuôiphương pháp cho R. cruentatus là cần thiết. Ba loài khác của những con mọt palm đãbáo cáo để được nuôi cấy trong phòng thí nghiệm. Rhynchophorus ferrugineus (Olivier)(Rananavare et al. 1975) và R. palmarum (L.) (Wilson 1963) có thể được nuôi cấy sử dụngnuôi mô cuống lá hoặc thân cây cắt của dừa lòng bàn tay, và R. cruentatus, trên chồimột máy chủ thay thế, Serrenoa repens (Bartram) nhỏ (Berger 1907). Tuy nhiên, bộ sưu tậpcọ mô cho nền văn hóa của những con mọt cũng là đắt tiền. Rahalkar et al. (1972) báo cáomía đường đó là một thay thế tốt cho thân cây dừa cho nuôi dạy R. ferrugineus.Phương pháp này đã được cải thiện bằng cách kết hợp mía trong agar dinh dưỡng cho trẻ ấu trùngvà toàn bộ mía gốc miếng cho ấu trùng lớn (Rananavare et al. 1975). Văn hóacủa R. ferrugineus tiếp tục được cải thiện bằng cách phát triển của một chế độ ăn uống nhân tạo(Rahalkar et al. 1978, 1985) có chứa rạ bã cây mía (sợi), dừa bánh, nấm men,Sucroza, khoáng chất, vitamin và chất bảo quản. Bằng cách sử dụng một sự kết hợp của bột ngô,chất xơ mía, yến mạch, đường, dầu dừa và axit propionic cho một phương tiện ấu trùng vàmía cho pupation, Sánchez et al. (1993) thành công nuôi cấy R. palmarum.Giblin-Davis và ctv (1989) xác định rằng R. cruentatus và R. palmarum có thểnuôi cấy vào phân hủy dứa [Ananas comosus Merrill] syncarp cho trẻ ấu trùngvà mía xuất phát cho ấu trùng trưởng thành. Tuy nhiên, sự thay đổi trong chất lượng vàtính khả dụng của dứa, và sự bất tiện này làm việc với phân hủy tài liệu,đã thúc đẩy phát triển và đánh giá một số agar dựa trên chế độ ăn choPhòng thí nghiệm-văn hóa của R. cruentatus.VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁPCôn trùngR. cruentatus người lớn đã được thu hoạch như cocoons từ bị nhiễm khuẩn S. palmetto, đặtcá nhân trong bảo hiểm 100 ml ly nhựa với chất khăn giấy (Giblin-Daviset al. 1989) và được lưu trữ tại 29 ° C cho đến dành cho người lớn xuất hiện. Phái nữ và nam giới được đặtnhư cặp cá nhân trong 500 ml container được bảo hiểm với ẩm khăn giấy và mộtlát của apple (Pyrus malus L.). Apple lát được thay thế cho khoảng 1-3 ngày,cẩn thận chia cắt, và loại bỏ những quả trứng (Weissling & Giblin-Davis 1994). Trứngchuyển giao cho món ăn petri (15 × 100 mm) lót bằng giấy lọc chất, niêm phongvới parafilm, và được lưu trữ tại 29 ° C cho đến khi ấu trùng neonate nổi lên.Chuẩn bị chế độ ăn uốngChế độ ăn uống tất cả bao gồm 50 g bacto-agar (Difco phòng thí nghiệm, Detroit, MI), 12,5 nghiền nátvitamin viên (Centrum; Lederle phòng thí nghiệm Div., Pearl River, NY), và 1892 mlnước. Mỗi viên thuốc vitamin cân nặng 1.4 g và chứa: vitamin A (5000 I.U.), E (30I.U.), C (60 mg), B1 (1,5 tấn), B2 (cách 1.7 mg), B6 (2 mg), B12 (6 μg), D (400 I.U.), và K1 (25μg), folic acid (400 μg), niacinamide (20 mg), biotin (30 μg), pantothenic acid (10 mg),canxi (162 mg), phốt pho (125 mg), iốt (150 μg), sắt (18 mg), magiê (100mg), đồng (2 mg), kẽm (15 mg), mangan (2,5 mg), kali (40 mg), clorua(36,3 mg), Crom (25 μg), molypden (25 μg), selen (25 μg), niken (5 μg), thiếc(10 μg), silic (10 μg), và vanadi (10 μg). Ngoài ra, chế độ ăn uống tất cả chứa các tiềnWeissling & Giblin-Davis: Rhynchophorus cruentatus kiêng 227servatives: m-para-hydroxybenzoat [14% giải pháp trong 95% ethyl rượu (25 ml)], sorbicaxit [12,5% giải pháp trong 95% ethyl rượu (37,5 ml) trong bài kiểm tra sơ bộ hoặc 6.28 gaxit sorbic kali muối trong chế độ ăn uống tinh tế], và 4 M kali hiđrôxít (7,5ml) (Rahalkar et al. 1985). Tất cả các thành phần và số tiền khác được liệt kê trong bảng 1. Tất cảliệu ngoại trừ các viên nang nghiền vitamin và một aliquot 500 ml nướcpha trộn trong khoảng 2 phút và đổ vào một bát thép không gỉ 5.7-lít. CácMáy xay sinh tố được rửa với nước còn lại và đổ vào bát. Hỗn hợpsau đó là autoclaved cho 20 phút tại 120 ° C. Khi chế độ ăn uống làm mát bằng nước, các vitamin nghiền viên nénđã được bổ sung và phương tiện truyền thông được khuấy. Chế độ ăn uống đã được đổ vào chế độ ăn uống ly trong khi vẫn cònấm. Khi chế độ ăn làm mát bằng nước, một lỗ nhỏ đã được thực hiện ở bề mặt chế độ ăn uống để tạo điều kiện cho ănvà ấu trùng đã là chuyển giao một mỗi cốc chế độ ăn uống với một bàn chải tốt đẹp lạc đà tóc. Chế độ ăn uốngly được che phủ bằng một nắp hơi bởi nhiều lỗ nhỏ. Sau 24 h, chế độ ăn uống đãkiểm tra và chết ấu trùng đã được thay thế. Tất cả các xét nghiệm được tiến hành trong một môi trườngPhòng tại 29 ° C với một photoperiod 13:11 (L:D).Các đánh giá sơ bộ của chế độ ăn uống10-20 sao chép của chế độ ăn uống khác nhau mười bảy (bảng 1) đã được đánh giá ởCác xét nghiệm sơ bộ cho ấu trùng và dành cho người lớn sinh khối lợi và sự sống còn. Chúng tôi cũng bao gồm cácchế độ ăn uống cho nền văn hóa của R. ferrugineus (Rahalkar et al. 1985). Chế độ ăn uống thử nghiệm bao gồm100 g của chế độ ăn uống 100 ml Cup. Quan sát sơ bộ chỉ ra sự cần thiết cho tươichế độ ăn uống nếu ấu trùng đã được còn lại trong văn hóa nhiều hơn ba tuần (thông tin chưa được công bố). Do đó,Ấu trùng ăn chế độ ăn uống 1-17 và chế độ ăn uống xuất bản đã được gỡ bỏ từ cốc sau ba tuầnvà chuyển giao cho 100 g tươi chế độ ăn uống. Trong thời gian chuyển tiếp này, ấu trùng được rinsed vớinước, patted khô với giấy toweling, và cân nặng. Sau một tuần hai bổ sung,Ấu trùng đã được gỡ bỏ, làm sạch và reweighed. Để xác định nếu ấu trùng có thể được nuôi cấytrong hơn ba tuần mà không có một sự thay đổi trong chế độ ăn uống, chúng tôi bao gồm chế độ ăn uống 18 màlà 200 g của chế độ ăn uống 3. Tuy nhiên, 100 ml ly được quá nhỏ cho số tiền này của chế độ ăn uống cho cácphương tiện truyền thông được đặt trong 500 ml ly. Ấu trùng ăn chế độ ăn uống 18 vẫn không bị ảnh hưởng nhất nămtuần, khi họ đã được làm sạch và cân nặng. Sau khi trận chung kết nặng, ấu trùngtừ tất cả chế độ ăn được cá nhân chọn vào lỗ (0.95 cm diam) khoan 10 cm vào mộtkết thúc của 23-25 cm chiều dài của các mía (Giblin-Davis et al. 1989). Thân cây được bọctrong cửa sổ màn hình bảo đảm mỗi cuối bằng dây cao su ban nhạc, và đặt trong một môi trườngPhòng tại 29 ° C. Sau ba tuần, thân cây là chia mở và cocoons, nếu có,đã được loại bỏ và đặt trong 100 ml hơi ly với chất khăn giấy vàlưu giữ tại 29 ° C cho đến dành cho người lớn xuất hiện. Nếu ấu trùng đã được vẫn còn hiện diện, mía cẩn thậngói lại, trở lại đặt trong môi trường Phòng, và kiểm tra một tuầnsau đó.Văn hóa kỹ thuật sửa đổiNhiên liệu sinh học và sự sống còn của ấu trùng nuôi ba tuần vào chế độ ăn uống 2, 3, 12, 13,và 15 là tốt trong bài kiểm tra sơ bộ (bảng 2). Vì vậy, ấu trùng đã được thử nghiệm một lần nữatrên các chế độ ăn khi nuôi 100 ml Cup (100 g của chế độ ăn uống) và sau đó chuyển đếnmía sau ba tuần. Điều này được thực hiện để xác định nếu những con mọt lành mạnh đã được sản xuấttheo thời gian và nguồn lực lưu chế độ này. Dựa trên các phát triển chấp nhận được củaẤu trùng ăn nuôi cấy vào chế độ ăn uống 18 tại 500 ml ly (bảng 2), chúng tôi cũng so sánh ấu trùng tăng trưởngăn kiêng mô tả ở trên khi

Kết quả (Việt) 2:

Weissling & Giblin-Davis: Rhynchophorus chế độ ăn cruentatus 225
chế độ ăn OLIGIDIC CHO VĂN HOÁ CÁC RHYNCHOPHORUS
CRUENTATUS (Coleoptera: CURCULIONIDAE)
THOMAS J. WEISSLING1 VÀ ROBIN M. GIBLIN-DAVIS2
Đại học Florida, Viện Thực phẩm và Nông nghiệp Khoa học,
Fort Lauderdale Nghiên cứu và Trung tâm Giáo dục , Cao đẳng 3205 Ave.,
Fort Lauderdale, FL 33.314
TÓM TẮT
Một số chế độ ăn nhân tạo đã được đánh giá là lựa chọn thay thế để phân hủy dứa
[Ananas comosus (L.) Merrill] cho nền văn hóa của Rhynchophorus cruentatus (F.) ấu trùng.
Các chế độ ăn uống phù hợp nhất được thử nghiệm cho sự tăng trưởng của ấu trùng và sự sống còn là sự kết hợp của
dứa đóng hộp, yến mạch, sucrose, mật đường, men bia, các muối của Wesson, vitamin,
và chất bảo quản. Chế độ ăn uống mà không được bổ sung men bia cung cấp
sự tăng trưởng của ấu trùng kém và tồn tại. Ấu trùng được nuôi cấy từ chế độ ăn nhân tạo được đặt trong
cây mía (Saccharum officinarum L.) cho hóa nhộng.
Từ khóa:. Palm mọt, Palmetto mọt, nuôi trong phòng thí nghiệm, chế độ ăn nhân tạo
RESUMEN
VARIAS dietas artificiales fueron evaluadas como alternativas một la Piña descompuesta
[Ananas comosus (L .) Merrill] para el cultivo de larvas de Rhynchophorus
cruentatus (F.). La mejor dieťa probada para el crecimiento y la supervivencia ấu trùng
Fue una combiación de Pina enlatada, cebada, Azucar, melaza, levadura de cerveza, bán hàng
de Weson, vitaminas y preservativos. Las dietas tội lỗi levadura de cerveza produjeron
poco crecimiento ấu trùng y sobrevivencia. Las larvas criadas en dietas artificiales
fueron colocadas en Cana de Azucar (Saccharum officinarum L.) para su pupación.
Rhynchophorus cruentatus (F.) là loài duy nhất của loài mọt cọ trong lục địa
Hoa Kỳ (Wattanapongsiri 1966). Không giống như một số congeners của nó, R. cruentatus
không được xem là một dịch hại chính của lòng bàn tay. Tuy nhiên, loài này sẽ tấn công các cấy
cây cọ cảnh hoặc nhấn mạnh (Giblin-Davis & Howard 1988, 1989). Trong
Florida, R. cruentatus là sympatric với bắp cải palmetto bản địa, Sabal Palmetto
(Walter) Loddiges ex Schultes (Woodruff 1967), một cọ thường được sử dụng như là mẫu vật trưởng thành
trong cảnh quan do chi phí thấp của nó, sự phong phú tự nhiên, và cấy cao
khả năng sống sót.
Semiochemicals phát ra từ lòng bàn tay bị thương hoặc chết (Chittenden 1902, Wattanapongsiri
1966, Weissling et al. 1992, Giblin-Davis et al., 1994) và cùng loài
mọt (Weissling et al. 1993, 1994) là hấp dẫn đối với R. cruentatus người lớn. Con cái
đẻ trứng trong các căn cứ lá hoặc trực tiếp vào vết thương của lòng bàn tay chết chủ nhà. Các ấu trùng
lột xác nhiều lần và được người tiêu dùng tham ăn của mô trong chồi và gốc.
ấu trùng cuối-instar di chuyển đến các vùng ngoại vi của máy chủ, chuẩn bị một cái kén từ fi-
1
Địa chỉ hiện tại: Bộ Nông Nghiệp Hoa Kỳ, nghiên cứu nông nghiệp,
3706 W. Nob Hill Blvd., Yakima, WA 98.902 2
Để người thư nên được giải quyết.
Tài liệu này được tạo ra với FrameMaker 4.0.2
226 Florida côn trùng học 78 (2) Tháng Sáu, 1995
ber, và nhập vào một giai đoạn nhộng. Sau eclosion, người lớn xuất hiện từ trên cây. Cuộc sống
chu kỳ của loài mọt này thường được hoàn thành trong ít hơn 84 d (xem Giblin-Davis & Howard
năm 1989 cho mô tả chi tiết).
Nghiên cứu về sinh học của R. cruentatus, cũng như tiềm năng của nó đối với các vector đỏ
vòng giun tròn [Bursaphelenchus cocophilus (Cobb)], đòi hỏi các bộ sưu tập của người lớn
trong các lĩnh vực, một nỗ lực tiêu thụ đắt tiền và thời gian. Như vậy, một phòng thí nghiệm nuôi
phương pháp cho R. cruentatus là cần thiết. Ba loài khác của mọt cọ đã được
báo cáo để được nuôi cấy trong phòng thí nghiệm. Rhynchophorus ferrugineus (Olivier)
(Rananavare et al. 1975) và R. palmarum (L.) (Wilson 1963) có thể được nuôi bằng
cắt cuống lá hoặc thân mô của cây dừa, và R. cruentatus đã được nuôi trên chồi
của một máy chủ thay thế , Serrenoa repens (Bartram) Nhỏ (Berger 1907). Tuy nhiên, bộ sưu tập
mô cọ cho nền văn hóa của mọt cũng tốn kém. Rahalkar et al. (1972) báo cáo
rằng cây mía là một thay thế tốt cho thân cây dừa để nuôi R. ferrugineus.
Phương pháp này đã được cải thiện bằng cách kết hợp mía trong môi trường thạch dinh dưỡng cho ấu trùng
và cả gốc mía miếng cho ấu trùng cũ (Rananavare et al. 1975). Văn hóa
của R. ferrugineus được cải thiện hơn nữa sự phát triển của một chế độ ăn nhân tạo
(Rahalkar et al. 1978, 1985) có chứa bã mía (chất xơ), bánh dừa, nấm men,
sucrose, khoáng chất, vitamin, và chất bảo quản. Sử dụng một sự kết hợp của bột bắp,
chất xơ mía, yến mạch, đường, dầu dừa, và axit propionic cho một trung ấu trùng và
mía cho hóa nhộng, Sánchez et al. (1993) thành công nuôi R. palmarum.
Giblin-Davis et al. (1989) xác định rằng R. cruentatus và R. palmarum có thể được
nuôi cấy trên phân hủy dứa [Ananas comosus Merrill] syncarp cho ấu trùng
và bào gốc mía cho ấu trùng trưởng thành. Tuy nhiên, sự khác biệt trong chất lượng và
tính sẵn sàng của dứa, và sự bất tiện khi làm việc với các tài liệu phân hủy,
nhắc việc phát triển và đánh giá của một số chế độ ăn agar-dựa cho
phòng thí nghiệm văn hóa của R. cruentatus.
VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP
Côn trùng
R. người lớn cruentatus được thu hoạch như kén từ nhiễm khuẩn S. Palmetto, đặt
cá nhân trong phủ cốc nhựa 100 ml với khăn giấy ẩm (Giblin-Davis
et al. 1989) và bảo quản ở 29 ° C cho đến khi xuất hiện lớn. Phụ nữ và nam giới được đặt
như cặp cá nhân trong các thùng chứa được bao phủ 500 ml với khăn giấy ẩm và một
lát táo (Pyrus malus L.). Các lát táo đã được thay thế trong khoảng thời gian 1-3 ngày,
mổ xẻ một cách cẩn thận, và những quả trứng bị loại bỏ (Weissling & Giblin-Davis 1994). Trứng gà được
chuyển giao cho đĩa Petri (15 × 100 mm) lót giấy lọc ẩm, kín
với parafilm, và bảo quản ở 29 ° C cho đến khi ấu trùng sơ sinh nổi lên.
Diet Chuẩn bị
Tất cả chế độ ăn bao gồm 50 g Bacto-agar (Difco Laboratories, Detroit, MI ), 12,5 nghiền nát
thuốc viên vitamin (Centrum;. Lederle Laboratories Div, Pearl River, NY), và 1892 ml
nước. Mỗi vitamin tablet nặng 1,4 g và chứa: vitamin A (5000 IU), E (30
IU), C (60 mg), B1 (1,5 mg), B2 (1,7 mg), B6 (2 mg), B12 (6 mg ), D (400 IU), và K1 (25
mg), acid folic (400 mg), niacinamide (20 mg), biotin (30 mg), acid pantothenic (10 mg),
canxi (162 mg), phốt pho (125 mg), iốt (150 mg), sắt (18 mg), magiê (100
mg), đồng (2 mg), kẽm (15 mg), mangan (2,5 mg), kali (40 mg), clorua
(36,3 mg) , crom (25 mg), molypden (25 mg), selenium (25 mg), niken (5 mg), thiếc
(10 mg), silicon (10 mg), và vanadium (10 mg). Ngoài ra, tất cả các chế độ ăn chứa các tiền
Weissling & Giblin-Davis: Rhynchophorus chế độ ăn cruentatus 227
servatives: m-para-hydroxybenzoate [giải pháp 14% trong cồn êtyl 95% (25 ml)], sorbic
acid [giải pháp 12,5% trong 95% rượu ethyl (37,5 ml) trong các thử nghiệm sơ bộ hoặc 6,28 g
axit sorbic muối kali trong khẩu phần ăn tinh], và 4M dung dịch kali hydroxit (7.5
ml) (Rahalkar et al. 1985). Tất cả các thành phần và các khoản khác được liệt kê trong Bảng 1. Tất cả
các tài liệu ngoại trừ các viên nang vitamin nghiền nát và một số chia hết 500 ml nước đã được
pha trộn trong khoảng 2 phút và đổ vào một 5,7-lít bằng thép không gỉ bát. Các
máy xay sinh tố đã được rửa sạch với nước còn lại và đổ vào bát. Hỗn hợp này
sau đó được hấp trong 20 phút ở 120 ° C. Khi chế độ ăn nguội, viên nén vitamin nghiền
được bổ sung và các phương tiện truyền thông đã được khuấy động. Chế độ ăn uống đã được đổ vào cốc chế độ ăn uống trong khi vẫn còn
ấm. Khi chế độ ăn nguội, một lỗ nhỏ đã được thực hiện trong các bề mặt chế độ ăn uống để tạo điều kiện cho ăn
và ấu trùng đã được chuyển giao một chế độ ăn uống mỗi cốc với một bàn chải lông lạc đà tốt. Chế độ ăn uống
chén được bao phủ bằng một nắp thông hơi bằng nhiều lỗ nhỏ. Sau 24 h, chế độ ăn được
kiểm tra và ấu trùng chết được thay thế. Tất cả các bài kiểm tra đã được tiến hành trong một môi trường
buồng ở 29 ° C với thời gian chiếu sáng của 13:11 (L: D).
Sơ bộ đánh giá của Chế độ ăn uống
Mười hai mươi lần nhắc lại mười bảy chế độ ăn khác nhau (Bảng 1) được đánh giá trong
các bài kiểm tra sơ bộ cho ấu trùng và trưởng thành tăng sinh khối và tồn tại. Chúng cũng bao gồm các
chế độ ăn uống cho nền văn hóa của R. ferrugineus (Rahalkar et al. 1985). Khẩu phần thí nghiệm gồm
100 g của chế độ ăn uống trong cốc 100 ml. Quan sát sơ bộ cho thấy sự cần thiết phải tươi
chế độ ăn uống nếu ấu trùng đã để lại trong nền văn hóa trong hơn ba tuần (số liệu chưa công bố). Do đó,
ấu trùng ăn thức ăn 1-17 và các chế độ ăn uống được công bố đã được gỡ bỏ từ ly sau ba tuần
và chuyển giao cho 100 g của chế độ ăn uống lành. Trong thời gian chuyển giao này, ấu trùng được rửa với
nước, vỗ nhẹ khô với khăn tắm giấy, và nặng. Sau khi thêm hai tuần,
ấu trùng đã được gỡ bỏ, làm sạch và cân lại. Để xác định xem các ấu trùng này được nuôi cấy
trong hơn ba tuần mà không có một sự thay đổi trong chế độ ăn uống, chúng tôi bao gồm chế độ ăn uống 18 mà
là 200 g của chế độ ăn uống 3. Tuy nhiên, ly 100 ml là quá nhỏ so với số tiền này của chế độ ăn uống nên các
phương tiện truyền thông đã được đặt trong ly 500 ml. Ấu trùng vào chế độ ăn uống 18 vẫn không bị xáo trộn trong năm
tuần, vào thời điểm mà họ đã được làm sạch và cân nặng. Sau khi cân nhắc cuối cùng, ấu trùng
từ tất cả các chế độ ăn được đặt riêng vào lỗ (0,95 cm diam) khoan 10 cm vào một
kết thúc 23-25 ​​cm chiều dài của cây mía (Giblin-Davis et al. 1989). Thân cây được quấn
trong cửa sổ màn hình bảo đảm tại mỗi đầu của các ban nhạc đàn hồi, và được đặt trong một môi trường
buồng ở 29 ° C. Sau ba tuần, thân cây được chia mở và kén, nếu có,
đã được gỡ bỏ và được đặt trong cốc huyệt 100 ml với khăn giấy ẩm và
bảo quản ở 29 ° C cho đến khi xuất hiện lớn. Nếu ấu trùng vẫn tồn tại, mía đã được cẩn thận
bọc lại, đặt trở lại trong buồng môi trường, kiểm tra và một tuần
sau đó.
Văn hóa Kỹ thuật sửa đổi
sinh khối và khả năng sống của ấu trùng được nuôi trong ba tuần về chế độ ăn 2, 3, 12, 13,
và 15 là tốt trong các thử nghiệm sơ bộ (Bảng 2). Do đó, ấu trùng được kiểm tra lại
bằng các chế độ ăn kiêng khi nuôi trong cốc 100 ml (100 g của chế độ ăn uống) và sau đó chuyển giao cho
mía sau ba tuần. Điều này đã được thực hiện để xác định nếu mọt khỏe mạnh được sản xuất
theo thời gian và tài nguyên phác đồ tiết kiệm này. Căn cứ vào tốc độ tăng trưởng chấp nhận được của
ấu trùng được nuôi cấy trên chế độ ăn uống 18 trong 500 ml ly (Bảng 2), chúng ta cũng so sánh tăng trưởng của ấu trùng
vào khẩu phần ăn khi mô tả ở trên