Chiết DNA và phân tích Southern blot
ADN hệ gen được chiết xuất bằng phương pháp CTAB cải tiến dựa
trên các thủ tục được mô tả bởi Murray và Thompson (1980). Năm
microgram DNA của mỗi mẫu, theo ước tính của gel agarose
nhuộm và fluorimetry sau khi điều trị với RNaseA, đã được tiêu hóa
với EcoRV (Gibco BRL-, Geithersburg, Md.) Trong một thể tích cuối cùng của
50 ll. Các DNA tiêu hóa được electrophoresed trên 1% (w / v) agarose
gel. Sau khi điện di, các mảnh DNA đã biến tính và
chuyển lên một Hybond-n` nylon màng (Amersham, Arlington
Heights, Ill.) Theo hướng dẫn của nhà sản xuất.
Hầu hết các XA21 mã hóa khu vực, bao gồm trình tự intron
(đoạn 3,8 kb), từ plasmid tiêu hóa với các enzyme tương tự của
các DNA thấm tương ứng đã được dán nhãn với a- [32P] -dCTP
sử dụng Rediprime nhãn Kit (Amersham, Arlington Heights,
Ill.) và được sử dụng như thăm dò lai.
Phản ứng chuỗi polymerase (PCR) phân tích
Các phân tích PCR được tiến hành dựa trên các thủ tục được mô tả bởi
Huang et al. (1997). Hỗn hợp phản ứng PCR chứa 50 ng
ADN khuôn, 50 ng của mỗi lớp sơn lót, 0,16 mM dNTP, 2.1 mM
MgCl2, 1] đệm PCR (10 mM Tris pH 8.4, 50 mM KCl), và 1 ¹aq DNA polymerase trong một thể tích 25 ul. Mẫu DNA đã được ban đầu bị biến tính ở 94 ° C trong 5 phút, tiếp theo là 30 chu kỳ PCR khuếch đại với các thông số sau: a 30-s biến tính ở 94 ° C, một ủ 30-s mồi ở 55 ° C, và một 1 mở rộng mồi phút ở 72 ° C cho phép để hoàn thành phần mở rộng mồi. Các khuếch đại các sản phẩm đã được electrophoretically giải quyết trên agarose gel 1% trong 1] TAE buffer. Cấy PX071 (chủng tộc 4) và PX099 (đua 6) chủng Xoo đã được sử dụng để cấy cây T1 chuyển gen. Ổ bệnh của từng chủng đã được chuẩn bị bằng cách ủ vi khuẩn trên môi trường Wakimoto của 72 h ở 30 ° C, sau đó đình chỉ mỗi nền văn hóa trong sạch cất vô trùng nước và điều chỉnh các tác nhân gây bệnh cho khoảng 109 tế bào trên mỗi ml. Các nhà máy T1 chuyển gen được trồng trong một IRRI ngăn chặn hiệu ứng nhà kính theo các điều kiện sau đây: 29 ° C và độ ẩm 85%
đang được dịch, vui lòng đợi..