The species Xanthomonas oryzae incl

The species Xanthomonas oryzae includes two pathovars,
namely, oryzae and oryzicola (Swings et al., 1990). These
bacterial pathogens are closely related organisms and were
earlier named as pathovars of Xanthomonas campestris. Rice is
the main host for both pathogens, which are seed-borne and
seed-transmitted.
Bacterial leaf blight of rice (BLB) was first reported in
Fukuoka Prefecture, Japan, during 1884 in rice affected by X.
oryzae pv. oryzae. This disease is considered one of the most
serious rice diseases worldwide although it has declined in
incidence in Japan since the mid 1970s. Nevertheless it is still
prevalent worldwide. The disease was reported in South East
Asia in the early 1960s, where it is currently widespread, and it
still affects the rice crop in its severe form (Goto, 1992). It has
also been reported in several African countries, in Australia,
North America (Lousiana and Texas, US), Central and South
America (OEPP/EPPO, 2006a) but it is only of economic
importance in Asia. Other reported hosts include wild or minor
cultivated Poaceae: Brachiaria mutica, Cenchrus ciliaris,
Cyperus difformis, C. rotundus, Cynodon dactylon, Echinochloa
crus-galli, Leersia spp. (Leersia hexandra, L. oryzoides),
Leptochloa chinensis, Oryza spp., Panicum maximum, Paspalum
scrobiculatum, Zizania aquatica, Z. latifolia, Z. palustris,
and Zoysia japonica (Li et al., 1985; Bradbury, 1986; Valluva-
paridasan & Mariappan, 1989; EPPO/CABI, 1997; Saddler,
2002a). Cyperaceae (sedges) that are naturally infected include
Cyperus difformis and C. rotundus. Variation in virulence
has been observed between isolates, and many races have been
described; however, the different races have not been clearly
defined with specific reactions being assigned to each variety
(Mew, 1987). The diversity of the pathogen has been analysed
based on virulence and PCR-based DNA fingerprinting
(George et al., 1994). Low virulence strains have been reported

in the United States and India (Jones et al., 1989; Gnanamanickam
et al., 1993).
Bacterial leaf streak of rice (BLS) is caused by X. oryzae pv
oryzicola. The disease is present in Tropical Asia, West Afric
and Australia (OEPP/EPPO, 2006b). X. oryzae pv. oryzicol
has reached epidemic proportions in recent years in China
Other hosts affected by the pathogen are: Oryza spp., Leersi
spp., Leptochloa filiformis, Paspalum orbiculare, Zizani
aquatica, Z. palustris and Zoysia japonica. No races have bee
recorded, however, differences in virulence of strains have bee
observed in many countries (Vera Cruz et al., 1984; Adhikari &
Mew, 1985; Saddler, 2002b).
Further information on the biology and ecology of th
species can be found in the EPPO data sheet on X. oryza
(OEPP/EPPO, 1997)
Identity
Taxonomic position: Kingdom: Bacteria; Phylum: Proteobacteria
Class: Gammaproteobacteria; Order: Xanthomonodales; Family
Xanthomonodaceae; Genus: Xanthomonas (Dowson, 1939)
Name: Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Ishiyama 1922
Swings et al. (1990)
Synonyms: Xanthomonas campestris pv. oryzae (Ishiyam
1922) Dye 1978; Xanthomonas oryzae (Ishiyama, 1921
Dowson 1943; Other synonyms are Xanthomonas itoana
Xanthomonas kresek, Xanthomonas translucens f. sp. oryzae
EPPO computer code: XANTOR
Phytosanitary categorization: EPPO A1 list no. 2, EU anne
II/A1 as Xanthomonas campestris pv. oryzae.
Xanthomonas oryzae pv. oryzicola
Name: Xanthomonas oryzae pv. oryzicola (Fang et al., 1956
Swings et al. (1990)
Fig. 1 Symptoms of X. oryzae pv. oryzae (bacterial leaf blight). (a) Rice field plants with X. oryzae pv. oryzae symptoms; (b) X. oryzae pv. oryzae symptoms
in rice nursery beds; (c) Rice seedlings showing X. oryzae pv. oryzae symptoms; (d) Wilting of transplanted seedlings; (e) Kresek symptoms in field plants;
(f) Progressive development of bacterial leaf blight in rice plants grown from infected seed.

Synonyms: Xanthomonas campestris pv. oryzicola (Fang
et al., 1956) Dye 1978; Xanthomonas oryzicola (Fang et al.
1956) Dowson 1943; Xanthomonas translucens f. sp. oryzicola
(Fang et al., 1956) Bradbury 1971
EPPO computer code: XANTTO
Phytosanitary categorization: EPPO A1 list no. 3, EU annex
II/A1 as Xanthomonas campestris pv. oryzicola.
Detection
Disease symptoms
X. oryzae pv. oryzae and X. oryzae pv. oryzicola can be clearly
distinguished by symptoms, which reflect the differences in
their modes of infection.
Bacterial leaf blight of rice (BLB)
X. oryzae pv. oryzae enters either through wounds or hydathodes
multiplies in the epitheme and moves to the xylem vessel
where active multiplication results in blight on the leaves. The
symptoms of the disease include leaf blight, wilting (kresek)
(Fig. 1) and pale yellow leaves. Leaf blight is characterized by
wavy elongated lesions, which develop along the leaf margins
They start as small water-soaked stripes from the tips where
water pores are found and rapidly enlarge in length and width,
orming a yellow lesion with a wavy margin along the lead
edges. Later on, diseased areas turn white to grey. These lesions
can develop on one or both sides of the leaf and occasionally
along the midribs, and leaf blight symptoms generally occur
rom maximum tillering stage and onwards. In young lesions,
drops of bacterial ooze can be observed early in the morning.
On panicles the disease causes grey to light brown lesions on
glumes that result in infertility and low quality of the grains.
Kresek is the result of systemic infection that is common in the
ropics in young plants and during the tillering stage of susceptible
cultivars. Leaves of infected plants wilt, roll up, turn grey-green
and whither, and entire plants finally die. Surviving plants look
tunted and yellowish. Yellow or pale yellow leaves are due to
ystemic infections that appear at tillering stage; the youngest
eaves become uniformly pale yellow or show a broad yellow
tripe, and bacteria are found in the internodes and crowns of
affected stems, but not in the leaf itself (Ou, 1985; Goto, 1992).
Bacterial leaf streak of rice (BLS)
X. oryzae pv. oryzicola is a foliar disease that appears at any
growth stage of the host. Cells of X. oryzae pv. oryzicola enter
through the stomata and multiply in the parenchyma tissues of
the leaves. X. oryzae pv. oryzicola infects mainly the parenchyma
of the cells of the leaves, but is not systemic. Initial symptoms
are small water-soaked, transparent interveinal streaks (Fig. 2),
which may elongate and darken. The transparent streaks
differentiate leaf streak lesions from those of X. oryzae pv.
oryzae that are opaque against the light. Bacterial exudates canbe observed as tiny yellow beads. The narrow, long, translucent
lesions may coalesce, forming large patches, and severely
affected fields appear burnt. It is at this stage that leaves wither,
turn brown and eventually die, and the disease can be difficult
to distinguish from bacterial leaf blight (Ou, 1985).
Isolation
Symptomatic samples are processed individually or in small
groups. Precautions are made to avoid cross contaminations
when collecting the samples and during the extraction process.
The samples should be processed as soon as possible after
collection and conserved at 4–8°C until use. Freshly prepared
sample extracts are necessary for a successful isolation. Several
procedures have been used for the isolation of X. oryzae pv.
oryzae from symptomatic and asymptomatic plant parts,
including seeds. Most of the procedures described for the
isolation of X. oryzae pv. oryzae from rice plants, can also be
applied for the isolation of X. oryzae pv. oryzicola. However, it
is known that both bacteria grow slowly on the isolating media
and can be overgrown by fast growing contaminants. Often these
contaminants are of yellow colour (e.g. Pantoea agglomerans
and Xanthomonas-like saprophytic bacteria) thus making
difficult the observations of colonies of the target organisms and
re often visually undistinguishable in colony morphology,
rowth, and colour from strains of both pathogens. Culturing
may fail from advanced stages of infection due to competition
r being overgrown by saprophytic organisms and also from
eeds with low levels of inoculum or under bad conditions of
orage. If disease symptoms are typical but isolation is negative,
he isolation step should be repeated.
irect plating from symptomatic and asymptomatic leaves
ollected from the field
acterial leaf blight in temperate regions can usually be
bserved during the latter part of the seed bed stage (Ou, 1985).
he bacteria can be detected from the upper part of infected
aves before symptoms appear (Goto, 1965; Misukami &
Wakimoto, 1969; Sakthivel et al., 2001). Tabei (1967) reported
hat symptomless rice seedlings may carry the pest.
The isolation of Xanthomonas from symptomatic material is
referable and can be performed using Peptone sucrose agar
PSA), Nutrient Broth Yeast Extract agar medium (NBY),
rowth Factor (GF) agar (Agarwal et al., 1989; Sakthivel et al.,
001). (Appendix 1). The bacteria can also be isolated on
utrient agar (NA) but with a very slow growth; semi-selective
gar substrates like modified XOS agar medium (mXOS)
Di et al., 1991; Gnanamanickam et al., 1994). X. oryzae pv.
ryzicola colonies are also isolated on modified Wakimoto’s
gar (Mew & Mistra, 1994) developed for the detection of X.
ryzae pv. oryzae, but with the omission of ferrous sulfate.
Surface disinfection with 70% alcohol for 15 s followed by
wo to three times rinsing with sterile water is used for isolation
om field plants. Plant parts showing fresh symptoms and with
xudates are selected whenever possible. Sections (2 mm ×
mm) from infected tissue and preferably from the advancing
ortion of lesions are selected. The exudates can be processed
eparately in 1 mL of sterile water. Narrow sections of infected
ssue are cut with a sterilized razor blade or scalpels, placed in
drop of sterile water and covered with a cover slip before the
bservation under the compound microscope for bacterial
reaming, an indication of bac

Kết quả (Việt) 1:

Các loài Xanthomonas oryzae bao gồm hai pathovars,cụ thể là, oryzae và oryzicola (thay đổi và ctv., 1990). Đâytác nhân gây bệnh do vi khuẩn là chặt chẽ liên quan đến sinh vật vàtrước đó được đặt tên như pathovars của Xanthomonas campestris. Gạo làCác máy chủ chính cho cả hai tác nhân gây bệnh, mà được sinh ra hạt giống vàhạt giống-truyền.Vi khuẩn lá giống bọ xanh gạo (BLB) là báo cáo trong vòngFukuoka, Nhật bản, trong năm 1884 trong gạo bị ảnh hưởng bởi X.oryzae pv. oryzae. Bệnh này được coi là một trong nhữnggạo nghiêm trọng bệnh trên toàn thế giới mặc dù nó đã giảm xuống trongtỷ lệ tại Nhật bản từ giữa thập niên 1970. Tuy nhiên nó vẫn còn làphổ biến trên toàn thế giới. Bệnh đã được báo cáo tại Nam đôngChâu á trong đầu những năm 1960, nơi nó là hiện nay phổ biến rộng rãi, và nóvẫn còn ảnh hưởng đến cây trồng lúa trong hình thức nghiêm trọng (Goto, 1992). Đô thị này cócũng được báo cáo trong một số nước châu Phi, tại Úc,Bắc Mỹ (Lousiana và Texas, Hoa Kỳ), Trung và NamMỹ (OEPP/EPPO, 2006a) nhưng nó là chỉ của kinh tếtầm quan trọng ở Châu á. Các máy chủ báo cáo bao gồm hoang dã hoặc nhỏtrồng sơ: Brachiaria mutica, Cenchrus ciliaris,Cyperus difformis, C. gấu, Cynodon gà, Echinochloacrus-galli, Leersia spp. (Leersia hexandra, L. oryzoides),Leptochloa chinensis, Oryza spp., tối đa Panicum, Paspalumscrobiculatum, Zizania aquatica, Z. latifolia, Z. palustris,và Zoysia japonica (Li et al., 1985; Bradbury, 1986; Valluva-paridasan & Mariappan, năm 1989; EPPO/CABI, 1997; Saddler,2002a). Cyperaceae (sedges) mà tự nhiên bị nhiễm bao gồmCyperus difformis và C. gấu. Các biến thể trong virulenceđã được quan sát thấy giữa chủng, và nhiều cuộc đua đãMô tả; Tuy nhiên, các chủng tộc khác nhau chưa rõ ràngdefined với specific phản ứng được gán cho mỗi loại(Mew, 1987). Sự đa dạng của các mầm bệnh đã được phân tíchDựa trên virulence và Đảng Cộng sản Romania dựa trên ADN fingerprinting(George et al., 1994). Thấp virulence chủng đã được báo cáoở Hoa Kỳ và Ấn Độ (Jones et al., năm 1989; Gnanamanickamet al., 1993).Vi khuẩn lá streak của gạo (BLS) là do X. oryzae pvoryzicola. Căn bệnh là hiện diện trong vùng nhiệt đới châu á, West Africvà Úc (OEPP/EPPO, 2006b). X. oryzae pv. oryzicolđã đạt tỷ lệ bệnh dịch trong năm gần đây ở Trung QuốcCác máy chủ bị ảnh hưởng bởi các mầm bệnh: Oryza spp., Leersispp., Leptochloa filiformis, Paspalum orbiculare, ZizaniAquatica, Z. palustris và Zoysia japonica. Không có chủng tộc khác có con ongthu âm, Tuy nhiên, sự khác biệt trong virulence của chủng có con ongquan sát thấy ở nhiều quốc gia (Vera Cruz et al., năm 1984; Adhikari &Mew, 1985; Saddler, 2002b).Thông tin thêm về sinh học và sinh thái của thloài này được tìm thấy trong bảng dữ liệu EPPO ngày X. oryza(OEPP/EPPO, 1997)Nhận dạngPhân loại vị trí: Quốc Anh: vi khuẩn; Ngành: sơLớp: Gammaproteobacteria; Thứ tự: Xanthomonodales; Gia đìnhXanthomonodaceae; Chi: Xanthomonas (Dowson, năm 1939)Name: Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Ishiyama 1922Swings et al. (1990)Synonyms: Xanthomonas campestris pv. oryzae (Ishiyam1922) Dye 1978; Xanthomonas oryzae (Ishiyama, 1921Dowson 1943; Other synonyms are Xanthomonas itoanaXanthomonas kresek, Xanthomonas translucens f. sp. oryzaeEPPO computer code: XANTORPhytosanitary categorization: EPPO A1 list no. 2, EU anneII/A1 as Xanthomonas campestris pv. oryzae.Xanthomonas oryzae pv. oryzicolaName: Xanthomonas oryzae pv. oryzicola (Fang et al., 1956Swings et al. (1990)Fig. 1 Symptoms of X. oryzae pv. oryzae (bacterial leaf blight). (a) Rice field plants with X. oryzae pv. oryzae symptoms; (b) X. oryzae pv. oryzae symptoms in rice nursery beds; (c) Rice seedlings showing X. oryzae pv. oryzae symptoms; (d) Wilting of transplanted seedlings; (e) Kresek symptoms in field plants; (f) Progressive development of bacterial leaf blight in rice plants grown from infected seed.Synonyms: Xanthomonas campestris pv. oryzicola (Fanget al., 1956) Dye 1978; Xanthomonas oryzicola (Fang et al.1956) Dowson 1943; Xanthomonas translucens f. sp. oryzicola(Fang et al., 1956) Bradbury 1971EPPO computer code: XANTTOPhytosanitary categorization: EPPO A1 list no. 3, EU annexII/A1 as Xanthomonas campestris pv. oryzicola.DetectionDisease symptomsX. oryzae pv. oryzae and X. oryzae pv. oryzicola can be clearlydistinguished by symptoms, which reflect the differences intheir modes of infection.Bacterial leaf blight of rice (BLB)X. oryzae pv. oryzae enters either through wounds or hydathodesmultiplies in the epitheme and moves to the xylem vesselwhere active multiplication results in blight on the leaves. Thesymptoms of the disease include leaf blight, wilting (kresek)(Fig. 1) and pale yellow leaves. Leaf blight is characterized bywavy elongated lesions, which develop along the leaf marginsThey start as small water-soaked stripes from the tips wherewater pores are found and rapidly enlarge in length and width,orming a yellow lesion with a wavy margin along the leadedges. Later on, diseased areas turn white to grey. These lesionscan develop on one or both sides of the leaf and occasionallyalong the midribs, and leaf blight symptoms generally occurrom maximum tillering stage and onwards. In young lesions,drops of bacterial ooze can be observed early in the morning.On panicles the disease causes grey to light brown lesions onglumes that result in infertility and low quality of the grains.Kresek is the result of systemic infection that is common in theropics in young plants and during the tillering stage of susceptiblecultivars. Leaves of infected plants wilt, roll up, turn grey-greenand whither, and entire plants finally die. Surviving plants looktunted and yellowish. Yellow or pale yellow leaves are due toystemic infections that appear at tillering stage; the youngesteaves become uniformly pale yellow or show a broad yellowtripe, and bacteria are found in the internodes and crowns ofaffected stems, but not in the leaf itself (Ou, 1985; Goto, 1992).Bacterial leaf streak of rice (BLS)X. oryzae pv. oryzicola is a foliar disease that appears at anygrowth stage of the host. Cells of X. oryzae pv. oryzicola enterthrough the stomata and multiply in the parenchyma tissues ofthe leaves. X. oryzae pv. oryzicola infects mainly the parenchymaof the cells of the leaves, but is not systemic. Initial symptomsare small water-soaked, transparent interveinal streaks (Fig. 2),which may elongate and darken. The transparent streaksdifferentiate leaf streak lesions from those of X. oryzae pv.oryzae that are opaque against the light. Bacterial exudates canbe observed as tiny yellow beads. The narrow, long, translucentlesions may coalesce, forming large patches, and severelyaffected fields appear burnt. It is at this stage that leaves wither,turn brown and eventually die, and the disease can be difficultto distinguish from bacterial leaf blight (Ou, 1985).IsolationSymptomatic samples are processed individually or in smallgroups. Precautions are made to avoid cross contaminationswhen collecting the samples and during the extraction process.The samples should be processed as soon as possible aftercollection and conserved at 4–8°C until use. Freshly preparedsample extracts are necessary for a successful isolation. Severalprocedures have been used for the isolation of X. oryzae pv.oryzae from symptomatic and asymptomatic plant parts,including seeds. Most of the procedures described for theisolation of X. oryzae pv. oryzae from rice plants, can also beapplied for the isolation of X. oryzae pv. oryzicola. However, itis known that both bacteria grow slowly on the isolating mediaand can be overgrown by fast growing contaminants. Often thesecontaminants are of yellow colour (e.g. Pantoea agglomeransand Xanthomonas-like saprophytic bacteria) thus makingdifficult the observations of colonies of the target organisms andre often visually undistinguishable in colony morphology,rowth, and colour from strains of both pathogens. Culturingmay fail from advanced stages of infection due to competitionr being overgrown by saprophytic organisms and also fromeeds with low levels of inoculum or under bad conditions oforage. If disease symptoms are typical but isolation is negative,he isolation step should be repeated.irect plating from symptomatic and asymptomatic leaves ollected from the fieldacterial leaf blight in temperate regions can usually bebserved during the latter part of the seed bed stage (Ou, 1985).he bacteria can be detected from the upper part of infectedaves before symptoms appear (Goto, 1965; Misukami &Wakimoto, 1969; Sakthivel et al., 2001). Tabei (1967) reportedhat symptomless rice seedlings may carry the pest.The isolation of Xanthomonas from symptomatic material is
referable and can be performed using Peptone sucrose agar
PSA), Nutrient Broth Yeast Extract agar medium (NBY),
rowth Factor (GF) agar (Agarwal et al., 1989; Sakthivel et al.,
001). (Appendix 1). The bacteria can also be isolated on
utrient agar (NA) but with a very slow growth; semi-selective
gar substrates like modified XOS agar medium (mXOS)
Di et al., 1991; Gnanamanickam et al., 1994). X. oryzae pv.
ryzicola colonies are also isolated on modified Wakimoto’s
gar (Mew & Mistra, 1994) developed for the detection of X.
ryzae pv. oryzae, but with the omission of ferrous sulfate.
Surface disinfection with 70% alcohol for 15 s followed by
wo to three times rinsing with sterile water is used for isolation
om field plants. Plant parts showing fresh symptoms and with
xudates are selected whenever possible. Sections (2 mm ×
mm) from infected tissue and preferably from the advancing
ortion of lesions are selected. The exudates can be processed
eparately in 1 mL of sterile water. Narrow sections of infected
ssue are cut with a sterilized razor blade or scalpels, placed in
drop of sterile water and covered with a cover slip before the
bservation under the compound microscope for bacterial
reaming, an indication of bac

Kết quả (Việt) 2:

Các loài Xanthomonas oryzae bao gồm hai pathovars,
cụ thể là, oryzae và oryzicola (Swings et al., 1990). Những
vi khuẩn gây bệnh có liên quan chặt chẽ và các sinh vật đã được
trước đó có tên là pathovars của Xanthomonas campestris. Gạo là
các máy chủ chính cho cả hai tác nhân gây bệnh, trong đó là hạt giống-borne và
hạt giống truyền.
Bệnh héo rũ gạo (BLB) là fi đầu tiên được báo cáo trong
Fukuoka Prefecture, Nhật Bản, trong năm 1884 trong lúa bị ảnh hưởng bởi X.
oryzae pv. oryzae. Căn bệnh này được coi là một trong những hầu hết
các bệnh nghiêm trọng trên toàn thế giới lúa mặc dù nó đã giảm trong
tỷ lệ mắc ở Nhật Bản kể từ giữa những năm 1970. Tuy nhiên nó vẫn được
thịnh hành trên toàn thế giới. Các bệnh đã được báo cáo trong khu vực Đông Nam
Á trong những năm đầu thập niên 1960, nơi nó đang lan rộng, và nó
vẫn ảnh hưởng đến vụ lúa ở dạng nặng của nó (Goto, 1992). Nó đã
được báo cáo ở một số nước châu Phi, Australia,
Bắc Mỹ (Lousiana và Texas, Mỹ), Trung và Nam
Mỹ (OEPP / EPPO, 2006a) nhưng nó là duy nhất của kinh tế
quan trọng ở châu Á. Báo cáo khác bao gồm các host hoang dã hoặc nhỏ
trồng Poaceae: Brachiaria mutica, Cenchrus Ciliaris,
Cyperus difformis, C. rotundus, Cynodon dactylon, Echinochloa
crus-galli, Leersia spp. (Leersia hexandra, L. oryzoides),
leptochloa chinensis, Oryza spp, Panicum tối đa, Paspalum.
scrobiculatum, Zizania aquatica, Z. latifolia, Z. palustris,
và zoysia japonica (Li et al, 1985;. Bradbury, 1986; Valluva-
paridasan & Mariappan, 1989; EPPO / CABI, 1997; Saddler,
2002a). Cyperaceae (sedges) bị nhiễm tự nhiên bao gồm
difformis Cyperus rotundus và C.. Sự khác nhau về tính độc hại
đã được quan sát giữa các phân lập, và nhiều chủng tộc đã được
mô tả; Tuy nhiên, các chủng tộc khác nhau đã không được rõ ràng
de fi ned với phản ứng c fi Speci được gán cho mỗi loại
(Mew, 1987). Sự đa dạng của các tác nhân gây bệnh đã được được phân tích
dựa vào độc lực và PCR dựa trên DNA fi ngerprinting
(George et al., 1994). Chủng độc lực thấp đã được báo cáo tại Hoa Kỳ và Ấn Độ (Jones et al, 1989;. Gnanamanickam . et al, 1993). Vi khuẩn bệnh sọc lá lúa (BLS) là do X. oryzae pv oryzicola. Các bệnh có mặt ở Tropical Á, Tây Afric và Australia (OEPP / EPPO, 2006b). X. oryzae pv. oryzicol đã đạt tỷ lệ dịch bệnh trong những năm gần đây ở Trung Quốc host khác bị ảnh hưởng bởi các tác nhân gây bệnh là:. Oryza spp, Leersi spp, leptochloa liformis fi, Paspalum orbiculare, Zizani. aquatica, Z. palustris và zoysia japonica. Không chủng tộc đã ong ghi lại, tuy nhiên, sự khác biệt về tính độc hại của chủng có ong quan sát thấy ở nhiều nước (Vera Cruz et al, 1984;. Adhikari & Mew, 1985; Saddler, 2002b). Xem thêm thông tin về sinh học và sinh thái của thứ loài có thể được tìm thấy trong các bảng dữ liệu EPPO trên X. Oryza (OEPP / EPPO, 1997) nhận dạng phân loại các mục: Quốc Anh: Vi khuẩn; Ngành: Proteobacteria Class: Gammaproteobacteria; Đặt hàng: Xanthomonodales; Gia đình Xanthomonodaceae; Chi: Xanthomonas (Dowson, 1939) Tên: Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Ishiyama 1922 Swings et al (1990). Từ đồng nghĩa:. Xanthomonas campestris pv oryzae (Ishiyam 1922) Dye 1978; Xanthomonas oryzae (Ishiyama, 1921 Dowson 1943; từ đồng nghĩa khác là Xanthomonas itoana Xanthomonas kresek, Xanthomonas oryzae translucens f sp.. EPPO mã máy tính: XANTOR kiểm dịch thực vật phân loại: EPPO A1 danh sách không có 2, EU anne. II / A1 là Xanthomonas campestris pv oryzae.. Xanthomonas oryzae pv oryzicola. Name:.. Xanthomonas oryzae oryzicola (pv Fang et al, 1956 . Swings et al ( 1990) Hình 1 triệu chứng của X. oryzae pv oryzae (lá do vi khuẩn bạc lá) (a) Cây lúa fi lĩnh với X. oryzae pv oryzae triệu chứng;..... (b) X. oryzae pv oryzae triệu chứng trong luống lúa; ( . c) cây lúa cho thấy X. oryzae pv oryzae triệu chứng; (d) Héo cây giống cấy; (e) các triệu chứng Kresek trong các nhà máy fi lĩnh; (f) phát triển tiến bộ của vi khuẩn bạc lá ở cây lúa được trồng từ hạt giống bị nhiễm bệnh. Từ đồng nghĩa: Xanthomonas campestris pv oryzicola. (Fang Dye 1978 et al, 1956).; Xanthomonas oryzicola (Fang et al. 1956) Dowson 1943; Xanthomonas translucens f. sp. oryzicola (. Fang et al, 1956) Bradbury 1971 EPPO mã máy tính: XANTTO dịch tễ các loại: danh sách EPPO A1 không. 3, EU phụ lục II / A1 là Xanthomonas campestris pv. oryzicola. Phát hiện các triệu chứng bệnh X. oryzae pv. oryzae và X. oryzae pv. oryzicola có thể được rõ ràng phân biệt bởi các triệu chứng, mà lại fl ect sự khác biệt về chế độ của họ bị nhiễm trùng. Bệnh héo rũ gạo (BLB) X. oryzae pv. oryzae vào hoặc thông qua các vết thương hoặc hydathodes đa phần trong các epitheme và di chuyển đến các tàu xylem nơi kết quả phép nhân tích cực trong bệnh bạc lá trên lá. Các triệu chứng của bệnh bao gồm cháy lá, héo (kresek) (Fig. 1) và lá màu vàng nhạt. Cháy lá được đặc trưng bởi tổn thương kéo dài lượn sóng, mà phát triển dọc theo mép lá Họ bắt đầu sọc nước ngâm nhỏ từ những lời khuyên nơi lỗ chân lông nước được phát hiện và nhanh chóng mở rộng chiều dài và chiều rộng, orming một tổn thương màu vàng với một biên độ sóng dọc theo chì cạnh. Sau đó, các khu vực bệnh chuyển sang màu trắng xám. Các tổn thương này có thể phát triển trên một hoặc cả hai mặt của lá và đôi dọc theo gân chính, và các triệu chứng cháy lá thường xảy ra giai đoạn đẻ nhánh tối đa rom và trở đi. Trong tổn thương trẻ, giọt dịch khuẩn có thể được quan sát thấy vào sáng sớm. Trên chùy bệnh gây tổn thương màu xám để ánh sáng màu nâu trên lớp mày mà dẫn đến vô sinh và chất lượng thấp của các loại ngũ cốc. Kresek là kết quả của nhiễm trùng hệ thống mà là phổ biến trong các ropics trong cây con và trong giai đoạn đẻ nhánh của nhạy cảm giống. Lá của cây bị nhiễm bệnh héo, cuộn lên, biến màu xám-xanh và đi đến đâu, và toàn bộ nhà máy fi nally chết. Cây còn sống sót tìm tunted và màu vàng. Lá vàng màu vàng hoặc xanh xao là do nhiễm trùng ystemic xuất hiện ở giai đoạn đẻ nhánh; út mái hiên trở thành thống nhất màu vàng nhạt hoặc hiển thị một màu vàng rộng lòng bò, và vi khuẩn được tìm thấy trong các lóng và ngọn bị ảnh hưởng thân, nhưng không phải trong các lá bản thân (Ou, 1985; Goto, 1992). Vi khuẩn bệnh sọc lá lúa (BLS ) X. oryzae pv. oryzicola là một bệnh trên lá xuất hiện ở bất kỳ giai đoạn phát triển của máy chủ. Các tế bào của X. oryzae pv. oryzicola nhập qua các lỗ khí và nhân lên trong các mô của nhu mô lá. X. oryzae pv. oryzicola lây nhiễm chủ yếu là nhu mô của tế bào của lá, nhưng không phải là toàn thân. Triệu chứng ban đầu là nước ngâm, minh bạch vệt interveinal nhỏ (Hình. 2), trong đó có thể kéo dài kích thước và tối. Các vệt suốt phân biệt tổn thương streak lá từ những người của X. oryzae pv. oryzae đó được đục chống lại ánh sáng. Các dịch tiết từ vi khuẩn canbe quan sát như hạt vàng nhỏ xíu. Các hẹp, dài, mờ vết bệnh có thể hợp lại, tạo thành các bản vá lỗi lớn, và nghiêm trọng ruộng bị ảnh hưởng xuất hiện cháy. Nó là ở giai đoạn này mà lá héo, chuyển sang màu nâu và cuối cùng chết, và căn bệnh này có thể được sùng bái khăn để phân biệt từ vi khuẩn cháy lá (Ou, 1985). Isolation triệu chứng mẫu được xử lý riêng biệt hoặc nhỏ nhóm. Biện pháp phòng ngừa được thực hiện để tránh nhiễm bẩn chéo khi thu thập mẫu và trong quá trình khai thác. Các mẫu phải được xử lý càng sớm càng tốt sau khi thu thập và bảo tồn tại 4-8 ° C cho đến khi sử dụng. Tươi chuẩn bị chiết xuất mẫu là cần thiết cho một sự cô lập thành công. Một số thủ tục đã được sử dụng để phân lập X. oryzae pv. oryzae từ bộ phận của cây có triệu chứng và không có triệu chứng, bao gồm cả hạt. Hầu hết các thủ tục được mô tả cho các cô lập của X. oryzae pv. oryzae từ cây lúa, cũng có thể được áp dụng để phân lập X. oryzae pv. oryzicola. Tuy nhiên, nó được biết rằng cả vi khuẩn phát triển chậm trên các phương tiện truyền thông cách ly và có thể được mọc trùm bởi các chất ô nhiễm ngày càng tăng nhanh. Thường thì những chất gây ô nhiễm là các màu vàng (ví dụ như agglomerans Pantoea và vi khuẩn Xanthomonas như hoại sinh) do đó làm cho khăn sùng bái các quan sát của các thuộc địa của các sinh vật mục tiêu và lại thường trực rỏ ở thuộc địa hình thái, rowth, và màu sắc từ các dòng của cả hai tác nhân gây bệnh. Nuôi có thể thất bại từ giai đoạn tiến triển của nhiễm trùng do cạnh tranh r được mọc trùm bởi các sinh vật hoại sinh và cũng từ eeds với mức độ thấp của chất tiêm chủng hoặc trong điều kiện xấu của Orage. Nếu các triệu chứng bệnh điển hình nhưng cô lập là tiêu cực, anh bước cô lập nên được lặp đi lặp lại. irect mạ từ lá có triệu chứng và không có triệu chứng ollected từ fi lĩnh lá acterial bạc lá ở các vùng ôn đới thường có thể được bserved trong phần sau của sân khấu giường giống (Ou, . 1985) ông vi khuẩn có thể phát hiện được từ phần trên của nhiễm Aves trước khi các triệu chứng xuất hiện (Goto, 1965; Misukami & Wakimoto, 1969;. Sakthivel et al, 2001). Tabei (1967) báo cáo hat giống lúa có triệu chứng có thể thực hiện các dịch hại. Sự cô lập của Xanthomonas từ vật liệu có triệu chứng là referable và có thể được thực hiện bằng cách sử dụng agar sucrose Peptone PSA), dinh dưỡng Broth Yeast Extract agar trung bình (nBằng), rowth Factor (GF) agar (Agarwal et al, 1989;.. Sakthivel et al, 001). (Phụ lục 1). Vi khuẩn cũng có thể được phân lập trên môi trường thạch utrient (NA), nhưng với một tốc độ tăng trưởng rất chậm; bán có chọn lọc các chất nền gar như Modi fi ed XOS môi trường thạch (mXOS) Di et al., 1991; Gnanamanickam et al., 1994). X. oryzae pv. ryzicola thuộc địa cũng đang bị cô lập trên Modi fi ed Wakimoto của gar (Mew & Mistra, 1994) được phát triển cho các phát hiện của X. ryzae pv. oryzae, nhưng với sự thiếu sót của sulfat sắt. Surface khử trùng bằng cồn 70% trong 15 s tiếp theo wo đến ba lần rồi rửa lại với nước vô trùng được sử dụng để phân lập om cây fi lĩnh. Bộ phận cây có triệu chứng tươi và với xudates được lựa chọn bất cứ khi nào có thể. Phần (2 mm × mm) từ các mô bị nhiễm và tốt nhất là từ tiến ortion các tổn thương được lựa chọn. Các dịch tiết có thể được xử lý eparately trong 1 ml nước vô trùng. Phần thu hẹp của nhiễm ssue được cắt bằng một lưỡi dao cạo hay dao mổ vô trùng, được đặt trong giọt nước vô trùng và được phủ bằng một nắp trượt trước khi bservation dưới kính hiển vi cho vi khuẩn Reaming, một dấu hiệu của bac