Larval rearingAttempts to develop t

Larval rearing
Attempts to develop techniques for mass production
of mud crab seed have been made in Indonesia for
more than 10 years. However, success is still far
from expectations. Most research on various aspects
of larval rearing, such as stocking density, feed and
feeding protocol, water quality management and
disease control were forcefully terminated due to
mass mortality during zoea and megalopa stages.
The highest survival rate at the stage of crab instar
1 (C1), to date, was attained by Marjono and Arifin
(1993). Using stocking densities of 100 Z1 and
16
200 Z1 per litre of water as treatment in 62 000 L
larval rearing tanks, the researchers successfully
harvested 3200–6481 C1/tank and 185–4225 C1/tank,
respectively. In terms of percentage, the highest
survival rate was 3.2% and the minimum was 0.5%.
They recommended 100 Z1/L as the maximum
stocking density for larval rearing.
A lower survival rate at C1 stage (0.07% to
0.19%) was reported by Basyar (1994). Using a
stocking density of 100 Z1/L water and Tetraselmis
chuii at 10 000 cells/mL and Brachionus sp. at 15–30
pieces/mL as larval feed during Z1 and Z2, Basyar
noted survival rate at Z2 ranged between 30.3% to
34.6%. Providing the larvae of the proceeding stages,
megalopa and C1, with various densities of Artemia
nauplii (30 to 50/larva) and Artemia flake at 0.5 to
2 ppm did not improve the survival at C1.
Yunus et al. (1994a, b) tested four stocking
densities (25, 50, 75 and 100 Z1/L), each in
triplicate, for 12 days. They concluded that survival
rate decreased with increasing stocking density. At
100 Z1/L, the average survival rate of the larva was
only 8.9% and at the stocking densities of 75, 50 and
25 Z1/L the average survival rates were 9.7%, 13.7%
and 18.9%, respectively. In all treatments, high
mortality had occurred during the first 6 days of the
experiment or while the larvae were still at stage Z1
to stage Z2. The only reasonable explanation available
from the report was the low water temperature
(24–26 °C). It seems that other factors such as
feeding, pathogens and parasites, and cannibalism
may contribute to the high mortality during the early
larval stages.
Effects of feed and feeding on growth and survival
of mud crab larvae have been tested by several
researchers in Indonesia. From his experiment,
Yunus (1992) found that a higher density of rotifer
(60 pieces/mL) is required to attain higher survival
rates (55%) of Z1 and Z2. Compared to survival
rates after six days of the larval rearing experiment
reported by Yunus et al. (1994b), the survival rate of
Yunus (1992) was much higher. The logic behind it
was that the early larval stage was still too physically
weak to search for food. However, rotifers are slow
moving zooplankton and are suitable for Z1 and Z2
(Mardjono and Arifin 1993). At Z3 and afterward,
the larvae are actively searching for food and they
can be fed with Artemia nauplii. Even at the
megalopa stage they can eat 2-day-old Artemia
(Basyar 1994). Aside from their density and movement,
the size of zooplankton also contributes to the
survival of the early stage zoea. According to
Setyadi et al. (in press), the size of the mouth
opening of Z1 was approximately 100 µm, or smaller
than the size of a rotifer, even compared to S type
rotifers whose size is around 150 µm. This may
explain the high mortality at Z1 and Z2.
Other research to improve survival rate of mud
crab larvae, especially at Z1 and Z2, through enrichment
of rotifers has been reported by Yunus et al. (in
press). Survival of Z1 (5 days after stocking) of
74.1% has been obtained through provision of S type
rotifers at densities of 15–20 pieces/mL, previously
enriched with a mixture of 10 g cod oil, 20 g egg
yolk and 5 g yeast dissolved in 100 L water. The
rotifers were incubated in the medium for 2 hours.
Pathogens and disease
Mass mortality of larvae may occur due to pathogens
and disease. Incubated eggs of berried females
harvested from brackish-water ponds are usually
infested with ectoparasites such as Zoothamnium,
Epistylis and Lagenidium. Madeali et al. (unpublished)
identified four kinds of parasites, namely
Lagennophrys sp., Epistylis sp., Zoothamnium sp.,
and Vorticella sp., on infested eggs of berried
females collected from brackish-water ponds.
Prastowo and Wagimsan (1996) found that in tankreared
broodstock, after hatching, the parasites may
infest the recently hatched zoea ending in mass
mortality. Zafran et al. (1993) isolated a fungus identified
as Lagenidium from zoea used in larval rearing
experiments. They reported that within 24 hours the
fungus may produce 20 to 40 zoospores which will
be released after one hour. The fungus grew best at
35 °C and tolerated temperatures from 20–40 °C and
pH from 4 to 11. It was killed by 24 hours exposure
to 10 ppm formalin or 5 hours exposure to 20 ppm
formalin. Ten ppm formalin was safe for zoea, but
the larvae died if exposed to 20 ppm formalin for
3 hours. Zafran et al. (1993) suggested the use of
formalin to prevent infestation by the fungus of mud
crab zoea.
Other research to control Lagenidium in mud crab
larval rearing has been conducted by Zafran and
Taufik (in press). Effectiveness of four kinds of
fungicide (treflan, malachite green, formalin and
potassium permanganate) in controlling the fungus
and their toxicity to mud crab larvae was tested. The
results indicated that the minimum effective concentrations
(MEC) of treflan and malachite green to
inhibit vesicle formation were equal (0.1 ppm); MEC
to inhibit zoospore production were 0.1 ppm and
0.2 ppm, respectively. The MEC of formalin for
inhibiting vesicle formation was 16 ppm, and permanganate
20 ppm. To inhibit zoospore production
the MEC of formalin and permanganate were
14 ppm and 9 ppm, respectively. Results of toxicity
tests of the four fungicides to zoea 1 of the mud crab
concluded that except for permanganate, the other

Kết quả (Việt) 2:

Nuôi ấu trùng
nỗ lực để phát triển các kỹ thuật để sản xuất hàng loạt
các hạt giống cua biển đã được thực hiện ở Indonesia cho
hơn 10 năm. Tuy nhiên, thành công vẫn còn xa
với mong đợi. Hầu hết các nghiên cứu về các khía cạnh khác nhau
của nuôi ấu trùng, chẳng hạn như mật độ thả giống, thức ăn chăn nuôi và
thức ăn, quản lý chất lượng nước và
kiểm soát dịch bệnh đã chấm dứt một cách mạnh mẽ do
tỷ lệ tử vong hàng loạt trong zoea và megalopa giai đoạn.
Tỷ lệ sống cao nhất ở giai đoạn cua instar
1 ( C1), đến nay, đã đạt được bởi Marjono và Arifin
(1993). Sử dụng mật độ 100 Z1 và
16
200 Z1 mỗi lít nước như điều trị trong 62 000 L
bể nuôi ấu trùng, các nhà nghiên cứu thành công
thu hoạch 3200-6481 C1 / thùng và 185-4.225 C1 / thùng,
tương ứng. Xét về tỷ lệ phần trăm, cao nhất
tỷ lệ sống sót là 3,2% và thấp nhất là 0,5%.
Họ đề nghị 100 Z1 / L là tối đa
mật độ thả giống cho nuôi ấu trùng.
Một tỷ lệ sống thấp ở giai đoạn C1 (0,07% đến
0,19%) đã được báo cáo bởi Basyar (1994). Sử dụng một
mật độ thả 100 Z1 / L nước và Tetraselmis
chuii tại 10 000 tế bào / mL và Brachionus sp. tại 15-30
miếng / mL là thức ăn của ấu trùng trong Z1 và Z2, Basyar
ghi nhận tỷ lệ sống sót ở Z2 dao động từ 30,3% đến
34,6%. Cung cấp các ấu trùng của các giai đoạn tố tụng,
megalopa và C1, với mật độ khác nhau của Artemia
nauplii (30-50 / ấu trùng) và Artemia flake tại 0,5 đến
2 ppm đã không cải thiện sự sống còn ở C1.
Yunus et al. (1994a, b) đã kiểm tra bốn thả
mật độ (25, 50, 75 và 100 Z1 / L), mỗi
ba lần, trong 12 ngày. Họ kết luận rằng sự sống còn
mức giảm với tăng mật độ thả. Tại
100 Z1 / L, tỷ lệ sống trung bình của ấu trùng là
chỉ 8,9% và ở mật độ 75, 50 và
25 Z1 / L tỷ lệ sống trung bình là 9,7%, 13,7%
và 18,9% tương ứng. Trong tất cả các phương pháp điều trị, cao
tỷ lệ tử vong đã xảy ra trong 6 ngày đầu tiên của
thí nghiệm hoặc trong khi ấu trùng vẫn còn ở giai đoạn Z1
đến giai đoạn Z2. Cách giải thích duy lý có sẵn
từ báo cáo là nhiệt độ nước thấp
(24-26 ° C). Dường như các yếu tố khác như
ăn, mầm bệnh và ký sinh trùng, và ăn thịt người
có thể đóng góp vào sự tử vong cao trong những năm đầu
giai đoạn ấu trùng.
Ảnh hưởng của thức ăn chăn nuôi và thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống
của ấu trùng cua biển đã được thử nghiệm bởi nhiều
nhà nghiên cứu ở Indonesia. Từ thí nghiệm của mình,
Yunus (1992) thấy rằng mật độ cao hơn của luân trùng
(60 miếng / mL) là cần thiết để đạt được sự sống còn cao hơn
tỷ giá (55%) của Z1 và Z2. So với sự sống còn
lãi sau sáu ngày thử nghiệm nuôi ấu trùng
được báo cáo bởi Yunus et al. (1994b), tỷ lệ sống của
Yunus (1992) là cao hơn nhiều. Các logic đằng sau nó
là ấu trùng vẫn còn quá sức
yếu để tìm kiếm thức ăn. Tuy nhiên, luân trùng được làm chậm
chuyển động vật phù du và rất thích hợp cho Z1 và Z2
(Mardjono và Arifin 1993). Tại Z3 và sau đó,
ấu trùng đang tích cực tìm kiếm thức ăn và chúng
có thể được cho ăn bằng Artemia nauplii. Ngay cả ở
giai đoạn megalopa họ có thể ăn Artemia 2 ngày tuổi
(Basyar 1994). Ngoài mật độ và sự di chuyển của họ,
kích thước của động vật phù du cũng góp phần vào sự
tồn tại của các zoea giai đoạn đầu. Theo
Setyadi et al. (Trên báo chí), kích thước của miệng
mở Z1 là khoảng 100 mm, hoặc nhỏ
hơn kích thước của một luân trùng, thậm chí so với các loại S
luân trùng có kích thước khoảng 150 micromet. Điều này có thể
giải thích tỷ lệ tử vong cao ở Z1 và Z2.
Một nghiên cứu khác để cải thiện tỷ lệ sống sót của bùn
ấu trùng cua, đặc biệt là ở Z1 và Z2, thông qua chương trình làm giàu
của luân trùng đã được báo cáo của Yunus et al. (Trong
báo chí). Sự sống còn của Z1 (5 ngày sau khi thả giống) của
74,1% đã được thu được thông qua việc cung cấp các loại S
luân trùng ở mật độ 15-20 con / ml, trước đây
làm giàu với một hỗn hợp của 10 g dầu cá, 20 g trứng
lòng đỏ và 5 g nấm men hòa tan trong 100 L nước. Các
luân trùng được nuôi cấy trong môi trường trong 2 giờ.
Pathogens và bệnh
chết hàng loạt của ấu trùng có thể xảy ra do tác nhân gây bệnh
và bệnh tật. Trứng ủ nữ berried
thu hoạch từ các ao nước lợ thường
bị nhiễm khuẩn với ectoparasites như Zoothamnium,
Epistylis và Lagenidium. Madeali et al. (Chưa xuất bản)
xác định được bốn loại ký sinh trùng, cụ thể là
Lagennophrys sp., Epistylis sp., Zoothamnium sp.,
và Vorticella sp., về trứng bị nhiễm khuẩn của berried
nữ từ những ao nước lợ.
Prastowo và Wagimsan (1996) thấy rằng trong tankreared
bố mẹ, sau khi nở, các ký sinh trùng có thể
tàn phá các zoea gần đây nở kết thúc khối lượng
tử vong. Zafran et al. (1993) đã phân lập một loại nấm được xác định
như Lagenidium từ zoea sử dụng trong nuôi ấu trùng
thí nghiệm. Họ báo cáo rằng trong vòng 24 giờ các
loại nấm có thể sản xuất 20-40 du động bào tử đó sẽ
được phát hành sau một giờ. Các loại nấm phát triển tốt nhất ở
35 ° C và nhiệt độ dung nạp từ 20-40 ° C và
pH từ 4 đến 11. Nó đã bị giết bởi 24 giờ tiếp xúc
với 10 ppm formalin hoặc 5 giờ tiếp xúc với 20 ppm
formalin. Mười ppm formalin là an toàn cho zoea, nhưng
ấu trùng chết nếu tiếp xúc với 20 ppm formalin cho
3 giờ. Zafran et al. (1993) đã đề nghị sử dụng
formalin để ngăn chặn sự phá hoại bởi nấm bùn
cua zoea.
Một nghiên cứu khác để kiểm soát Lagenidium trong cua
nuôi ấu trùng đã được tiến hành bởi Zafran và
Taufik (trên báo chí). Hiệu quả của bốn loại
thuốc diệt nấm (treflan, xanh malachite, formalin và
kali permanganat) trong việc kiểm soát các loại nấm
và gây độc cho ấu trùng cua biển đã được thử nghiệm. Các
kết quả cho thấy nồng độ hiệu quả tối thiểu
(MEC) của treflan và xanh malachite để
ức chế sự hình thành mụn nước là bằng nhau (0,1 ppm); MEC
để ức chế sản xuất bào tử động là 0,1 ppm và
0,2 ppm, tương ứng. Các MEC formalin cho
ức chế sự hình thành mụn nước là 16 ppm, và permanganat
20 ppm. Để ức chế sản xuất bào tử động
MEC formalin và permanganat là
14 ppm và 9 ppm, tương ứng. Kết quả của độc tính
kiểm tra của bốn loại thuốc trừ nấm để zoea 1 của cua
kết luận rằng ngoại trừ permanganat, khác