Skoog, 1962) basal medium supplemen

Skoog, 1962) basal medium supplemented with 0, 0.5,
1 and
2 mg/L of KIN and 0, 0.5, 1 and 2 mg/L of NAA (16
treatments) (Fig. 1). The media were adjusted to pH
5.6-5.8
and solidified with 7 g/L Agar-agar. The media were
pH
adjusted before autoclaving at 121°C, 1 atm. for 30
min. The
cultures were incubated in growth chamber whose
environmental conditions were adjusted to 26±2°C an
d 75-
80% relative humidity, under a photosynthetic photo
n density
flux 50 μ mol/m
2
/s with a photoperiod of 16 h per day.
Measurements and acclimatization
Characters including shoot length, shoot number, no
de
number, and root number were calculated after 45 da
ys.
Matured plantlets were washed with sterile distille
d water
and transferred into the plastic bags (10-cm in dia
meter)
containing a mixture of peat and perlite (1:1). Pla
ntlets were
kept in a greenhouse at 24 ± 2°C and 70% RH with pe
riodic
irrigation.
Statistical analysis
The experimental design was R.C.B.D. Each experimen
t was
carried out in five replicates and each replicate i
ncludes five
specimens (totally; 25 specimens for each treatment
). Data
processing of the results was carried out by an EXC
EL.
Analysis of variance (ANOVA) was done using MSTATC
statistical software and means were compared using
Duncan's
test.
Conclusion
The results of our experiment indicate that KIN is
a suitable
plant growth regulator on micropropagation of Lisia
nthus
(
Eustoma grandiflorum
) as a single hormone. Also, proper
types and concentrations of growth regulators (KIN
and
NAA) lead to increased shoot and root formation of
Lisianthus cultured
in vitro
.
References
Dennis DJ, Ohteki T, Doreen J (1989) Responses of t
hree cut
flower selections of lisianthus (
Eustoma grandiflorum
) to
spacing, pruning and nitrogen application rate unde
r plastic
tunnel protection. Acta Hortic 246: 237-246.
Fukai S, Miyata H, Goi M (1996) Factors affecting
adventitious shoot regeneration from leaf explants
of
prairie gentian (
Eustoma grandiflorum
(Raf.) Shinners).
Technical Bulletin of Faculty of Agriculture-Kagawa
University 48 (2): 103-109.
Fuller MP, Fuller FM (1995) Plant tissue culture us
ing
Brassica seedlings. J Biol Edu 20 (1): 53-59.
Furukawa H, Matsubara C, Shigematsu N (1990) Shoot
regeneration from the roots of Prairie gentian (
Eustoma
grandiflorum
(Griseb.) Schinners). Plant Tiss Cult Letters 7
(1): 11-13.
Gautam VK, Mittal A, Nanda K, Gupta SC (1983)
In vitro
regeneration of plantlets from somatic explants of
Matthiola incana
. Plant Sci Letters 29: 25-32.
Gomes F, Simões M, Lopes ML, Canhoto M (2010) Effec
t of
plant growth regulators and genotype on the
micropropagation of adult trees of
Arbutus unedo
L.
(strawberry tree). New Biotech 45 (1): 72-82.
Hammaudeh HY, Suwwan MA, Abu Quoud HA, Shibli RA
(1998) Micropropagation and regeneration of Honeoye
strawberry. Dirasat Agric Sci 25: 170-178.
Han BH, Yu HJ, Yae BW, Peak KY (2004)
In vitro
micropropagation of
Lilium longiflorum
'Georgia' by shoot
formation as influenced by addition of liquid mediu
m.
Scientia Hortic 103: 39-49.
Harbaugh BK (2006) Lisianthus,
Eustoma grandiflorum
. In:
Anderson NO (Ed), Flower Breeding and Genetics,
Springer, Netherlands, pp 645–663.
Hartmann HJ, Kester DE, Davies FT, Geneve RT (1997)
Plant Propagation: Principle and Practices. 6
th
ed, Prentica-
Hill, Englewood Cliffs, NJ.
Hashemabadi D, Kaviani B (2010)
In vitro
proliferation of an
important medicinal plant Aloe- A method for rapid
production. Aus J Crop Sci 4 (4): 216-222.
Jain SM, Ochatt SJ (2010) Protocols for
In Vitro
Propagation
of Ornamental Plants. Springer Protocols. Humana Pr
ess.
Kalimuthu K, Senthilkumar R, Vijayakumar S (2007)
In vitro
micropropagation of orchid,
Oncidium
sp. (Dancing Dolls).
Afr J Biotech 6 (10): 1171-1174.
Kunitake H, Nakashima T, Mori K, Tanaka M, Mii M (1
995)
Plant regeneration from mesophyll protoplasts of li
sianthus
(
Eustoma grandiflorum
) by adding activated charcoal into
protoplast culture medium. Plant Cell Tiss Org Cult
43: 59-
65.
Lee-Epinosa HE, Murguia-Gonzalez J, Garcia-Rosas B,
Cordova-Contreras AL, Laguna C (2008)
In vitro
clonal
propagation of vanilla (
Vanilla planifolia
Andrews).
HortSci 43: 454-458.
Ming-xia G, et al. (2008) Study on rapid propa
gation
technology of
Eustoma grandiflorum
in vitro
. J Anhuo
Agric Sci, Abstract, p 9.
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for ra
pid
growth and bioassays with tobacco tissue culture. P
hysiol
Plant 15: 473-497.
Nayak S, Hatwar B, Jain A (2010) Effect of cytokini
n and
auxins on meristem culture of
Bambusa arundinacea
. Der
Pharmacia Letter 2 (1): 408-414.
Nhut DT, Hai NT, Phan MX (2010) A highly efficien
t
protocol for micropropagation of
Begonia tuberous
. In:
Jain SM, Ochatt SJ (eds) Protocols for
In Vitro
Propagation
of Ornamental Plants, Springer protocols. Humana Pr
ess pp
15-20.
Nitsch JP, Nitsch C, Rossini LME, Ha DBD (1967) The
role
of adenine on bud differentiation. Photomorph 17: 4
46-453.
Ordogh M‚ Jambor-Benczur E, Tilly-Mandy A (2006)
Micropropagation of Echo cultivars of
Eustoma
grandiflorum
(ISHS) Acta horticulture: V International
Symposium on
In Vitro
Culture and Horticultural Breeding
725:457-460.
Paek KY, Hahn EJ (2000) Cytokinins, auxins and acti
vated
charcoal affect organogenesis and anatomical
characteristics of shoot-tip cultures of lisianthus
[
Eustoma
grandiflorum
(Raf.) Shinn]. In Vitro Cell Dev Biol-Plant
36: 128-132.
Pati PK, Rath SP, Sharma M, Sood A, Ahuja PS (2005)
In
vitro
propagation of rose-a review. Biotech Advances 94-
114.
Pierik RLM (1987)
In vitro
culture of higher plants.
Dordrecht, The Netherlands, Martinus Nijhoff 45–82.
Roh MS, Halevy AH, Wilkins HF (1989)
Eustoma
grandiflorum
. In: Halevy AH (Ed), Handbook of
Flowering, CRC Press, Boca Raton, FL, pp 322–327.
Roh SM, Lawson RH (1988) Tissue culture in the
improvement of
Eustoma
. HortSci 23: 658.
Semeniuk P, Griesbach RJ (1987).
In vitro
propagation of
prairie gentian. Plant Cell Tiss Org Cult 8: 249-25
3.

Kết quả (Việt) 1:

Skoog, 1962) trung bình cơ sở bổ sung với 0, cách 0.5, 1 và 2 mg/L của KIN và 0, 0.5, 1 và 2 mg/L của NAA (16 phương pháp điều trị) (hình 1). Các phương tiện truyền thông đã được điều chỉnh để pH 5.6-5.8 và kiên cố hóa với 7 g/L Agar-agar. Các phương tiện truyền thông đã pH điều chỉnh trước khi khử trùng tại 121° C, 1 atm. cho 30 min. Các nền văn hóa đã được ủ trong tăng trưởng phòng mà điều kiện môi trường được điều chỉnh để 26±2 ° C mộtd 75-80% độ ẩm tương đối, dưới một bức ảnh quang hợpmật độ n thông lượng 50 μ mol/m2/ s với một photoperiod 16 h cho một ngày. Đo lường và acclimatization Ký tự bao gồm chiều dài bắn, bắn số, khôngde số, và gốc số đã được tính toán sau 45 daYS. Trưởng thành plantlets đã được rửa sạch với vô trùng distilled nước và chuyển vào trong túi nhựa (10-cm ở diamét) có chứa một hỗn hợp của than bùn và perlit (1:1). Plantlets đã giữ trong một nhà kính tại 24 ± 2° C và 70% RH với periodic thủy lợi. Thống kê phân tích Thử nghiệm thiết kế là R.C.B.D. Mỗi experiment là thực hiện trong năm sao chép và mỗi replicate tôincludes năm mẫu vật (hoàn toàn; 25 mẫu vật cho mỗi lần điều trị). Dữ liệu chế biến của các kết quả đã được thực hiện bởi một EXCEL. Phân tích các phương sai (ANOVA) đã được thực hiện bằng cách sử dụng MSTATC thống kê phần mềm và phương tiện đã được so sánh bằng cách sử dụng Của Duncan kiểm tra. Kết luận Kết quả của thử nghiệm của chúng tôi cho thấy rằng KIN là một phù hợp thực vật tăng trưởng điều trên micropropagation của Lisianthus (Hoa grandiflorum) như là một nội tiết tố duy nhất. Ngoài ra, đúng loại và nồng độ tăng trưởng điều chỉnh (KIN và NAA) dẫn đến tăng bắn và hình thành gốc của Lisianthus nuôi cấy trong ống nghiệm. Tài liệu tham khảo Dennis DJ, Ohteki T, Doreen J (1989) phản ứng của tHREE cắt Hoa lựa chọn của lisianthus)Hoa grandiflorum) để khoảng cách, cắt tỉa và nitơ ứng dụng tỷ lệ under nhựa bảo vệ đường hầm. Acta Hortic 246: 237-246. Fukai S, Miyata H, Goi M (1996) các yếu tố ảnh hưởng đến tái sinh adventitious bắn từ lá explants của đồng cỏ cây khổ sâm)Hoa grandiflorum (Raf.) Shinners). Các bản tin kỹ thuật của khoa nông nghiệp-KagawaĐại học 48 (2): 103-109. Fuller MP, Fuller FM (1995) nhà máy mô nền văn hóa chúng tôiing Cây giống Brassica. J Biol Edu 20 (1): 53-59. Furukawa H, Matsubara C, Shigematsu N (1990) bắn tái tạo từ nguồn gốc của đồng cỏ cây khổ sâm)Hoa grandiflorum (Griseb.) Schinners). Thực vật Tiss tôn giáo thư 7 (1): 11-13. Gautam VK, Mittal A, Nanda K, Gupta SC (1983) Trong ống nghiệmtái sinh của plantlets từ explants Soma của Matthiola incana. Thực vật khoa học chữ 29: 25-32. Gomes F, Simões M, Lopes ML, Canhoto M (2010) Effect của Máy điều chỉnh tăng trưởng và kiểu gen trên các micropropagation dành cho người lớn cây của Arbutus unedo L. (strawberry cây). Mới công nghệ sinh học 45 (1): 72-82. Hammaudeh HY, Suwwan MA, Abu Quoud HA, Shibli RA Micropropagation (1998) và tái sinh của Honeoyedâu tây. Dirasat Agric Sci 25:170-178. Vị trí Han BH, Yu HJ, Yae BW, KY (2004) Trong ống nghiệmmicropropagation của Lilium longiflorum 'Georgia' của bắn hình thành như chịu ảnh hưởng của bổ sung các chất lỏng mediu* ||| * [[FOREIGN_CURRENCY]] *. Scientia Hortic 103: 39-49. Harbaugh BK (2006) Lisianthus, Hoa grandiflorum. Trong: Anderson không (Ed), hoa chăn nuôi và di truyền học, Springer, Hà Lan, pp 645-663. Hartmann HJ, Kester DE, Davies FT, Geneve RT (1997)Thực vật tuyên truyền: Nguyên tắc và thực tiễn. 6th Ed, Prentica-Hill, Englewood Cliffs, NJ. Hashemabadi D, Kaviani B (2010) Trong ống nghiệm gia tăng của một nhà máy dược liệu quan trọng Aloe - A phương pháp để nhanh chóng sản xuất. Aus J cây trồng Sci 4 (4): 216-222. Jain SM, Ochatt SJ giao thức (2010) cho Trong ống nghiệm Tuyên truyền của cây cảnh. Giao thức Springer. Humana PrESS. Kalimuthu K, Senthilkumar R, Vijayakumar S (2007) Trong ống nghiệmmicropropagation phong lan, Oncidium SP. (nhảy múa búp bê). AFR J sinh học 6 (10): 1171-1174. Kunitake H, lập T, Mori K, Tanaka M, Mii M (1995) Thực vật tái tạo từ các protoplasts của lisianthus (Hoa grandiflorum) bằng cách thêm than hoạt tính vào protoplast văn hóa Trung bình. Thực vật di động Tiss Org tôn giáo 43: 59-65. Lee-Epinosa ông, Murguia-Gonzalez J, Garcia-Rosas B,Cordova-Contreras AL, Laguna C (2008) Trong ống nghiệm vô tính tuyên truyền của vani)Vani planifolia Andrews). HortSci 43:454-458. Ming-hạ G, et al. (2008) nghiên cứu về nhanh chóng propanhiên công nghệ Hoa grandiflorumtrong ống nghiệm. J Anhuo Khoa học Agric, trừu tượng, p 9. Murashige T, Skoog F (1962) A sửa đổi vừa cho raPID tăng trưởng và bioassays với thuốc lá mô nền văn hóa. Physiol Trồng 15: 473-497. Nayak S, Hatwar B, Jain A (2010) tác dụng của cytokinin và auxins trên mô phân sinh văn hóa của Bambusa arundinacea. Der Pharmacia thư 2 (1): 408-414. Nhut DT, Hải NT, Phan MX (2010) cao efficient giao thức cho micropropagation của Begonia củ. Trong: Jain SM, Ochatt SJ (eds) giao thức cho Trong ống nghiệm Tuyên truyền trong cây giao thức Springer. Humana PrESS pp 15-20. Nitsch JP, Nitsch C, Rossini LME, Hà DBD (1967) các vai trò của adenine vào sự khác biệt bud. Photomorph 17:446-453. Ordogh M' Jambor-Benczur E, A Tilly Mandy (2006) Micropropagation của Echo giống cây trồng của Hoa grandiflorum (ISHS) Acta cho nghề trồng rau: V Quốc tế Hội thảo về Trong ống nghiệm Văn hóa và chăn nuôi làm vườn725:457-460. Pec KY, Hahn EJ (2000) Cytokinins, auxins và activated than ảnh hưởng đến organogenesis và giải phẫu đặc điểm của bắn-Mẹo nền văn hóa của lisianthus [Hoa grandiflorum (Raf.) Shinn]. Trong ống nghiệm di động Dev Biol-nhà máy 36: 128-132. Pati PK, Rath SP, Sharma M, Sood A, Ahuja PS (2005)Ở ống nghiệm tuyên truyền của Hoa hồng một nhận xét. Công nghệ sinh học tiến bộ 94-114. Pierik RLM (1987) Trong ống nghiệm văn hóa của cây cao hơn. Dordrecht, Hà Lan, Martinus Nijhoff 45-82.Roh MS, Halevy AH, Wilkins HF (1989) Hoa grandiflorum. Trong: Halevy AH (Ed), Cẩm nang của Hoa, báo chí CRC, Boca Raton, FL, pp 322-327. Roh SM, Lawson RH (1988) mô nền văn hóa trong các cải thiện Hoa. HortSci 23:658. Semeniuk P, Griesbach RJ (1987). Trong ống nghiệm tuyên truyền của đồng cỏ cây khổ sâm. Nhà máy di động Tiss Org Cult 8:249-253.

Kết quả (Việt) 2:

Skoog, 1962) vừa cơ bản, bổ sung với 0, 0,5,
1 và
2 mg / L của KIN và 0, 0,5, 1 và 2 mg / L NAA (16
phương pháp điều trị) (Fig. 1). Các phương tiện truyền thông đã được điều chỉnh để pH
5,6-5,8
và rắn bằng 7 g / L Agar-agar. Các phương tiện truyền thông đã
pH
điều chỉnh trước khi hấp khử trùng ở 121 ° C, 1 atm. trong 30
phút. Các
nền văn hóa được ủ trong buồng tăng trưởng có
điều kiện môi trường đã được điều chỉnh lên 26 ± 2 ° C một
d 75-
độ ẩm tương đối 80%, dưới một bức ảnh quang
mật độ n
thông lượng 50 μ mol / m
2
/ s với thời gian chiếu sáng 16 h mỗi ngày .
Các phép đo và quen với khí hậu
Nhân vật bao gồm cả chiều dài bắn, bắn số, không
de
số, và số gốc được tính toán sau 45 da
ys.
cây giống chín được rửa sạch bằng distille vô trùng
nước d
và chuyển vào các túi nhựa (10 cm trong dia
mét)
có chứa một hỗn hợp của than bùn và đá trân châu (1: 1). Pla
ntlets được
lưu giữ trong một nhà kính ở 24 ± 2 ° C và 70% RH với pe
riodic
thủy lợi.
Phân tích thống kê
Thiết kế thí nghiệm là RCBD Mỗi experimen
t đã được
thực hiện trong năm lần nhắc lại, mỗi nhân rộng i
ncludes năm
mẫu (hoàn toàn; 25 mẫu vật cho mỗi lần điều
trị). Dữ liệu
chế biến của các kết quả đã được thực hiện bởi một EXC
EL.
Phân tích phương sai (ANOVA) được thực hiện bằng cách sử dụng MSTATC
phần mềm thống kê và phương tiện được so sánh bằng
Duncan của
thử nghiệm.
Kết luận
Kết quả của thí nghiệm của chúng tôi chỉ ra rằng KIN là
một phù hợp
điều chỉnh tăng trưởng thực vật trên vi nhân của Lisia
nthus
(Eustoma grandiflorum) là một hormone duy nhất. Ngoài ra, đúng chủng loại và nồng độ của điều hòa sinh trưởng (KIN và NAA) dẫn đến tăng chồi và tạo rễ của Cát Tường nuôi cấy in vitro. Tài liệu tham khảo Dennis DJ, Ohteki T, Doreen J (1989) Phản ứng của t hree cắt Lựa chọn hoa của Cát Tường (Eustoma grandiflorum) để khoảng cách, tỉa cành và tỷ lệ ứng dụng nitơ unde r nhựa bảo vệ đường hầm. Acta Hortic 246: 237-246. Fukai S, Miyata H, Goi M (1996) nhân tố ảnh hưởng ngẫu chồi từ mẫu cấy lá ​​của cỏ cây khổ sâm (Eustoma grandiflorum (Raf) Shinners.). Bản tin kỹ thuật của Khoa Nông nghiệp-Kagawa Đại học 48 (2):. 103-109 Fuller MP, Fuller FM (1995) mô thực vật văn hóa chúng tôi ing cây Brassica. J Biol Edu 20 (1):. 53-59 Furukawa H, Matsubara C, Shigematsu N (1990) Bắn tái sinh từ rễ của cây khổ sâm Prairie (Eustoma grandiflorum (Griseb) Schinners.). Nhà máy ống papi Cult Letters 7 (1):. 11-13 Gautam VK, Mittal A, Nanda K, Gupta SC (1983) In vitro tái sinh của cây con từ cấy soma của Matthiola incana. Nhà máy Sci Letters 29:. 25-32 Gomes F, Simões M, Lopes ML, Canhoto M (2010) Effec t của điều hòa sinh trưởng thực vật và kiểu gen trên vi nhân cây trưởng thành của arbutus unedo L. (cây dâu). New Công nghệ sinh học 45 (1):. 72-82 Hammaudeh HY, Suwwan MA, Abu Quoud HA, Shibli RA (1998) Vi và tái sinh của Honeoye dâu. Dirasat Agric Sci 25:. 170-178 Han BH, Yu HJ, Yae BW, Peak KY (2004) Trong ống nghiệm vi nhân Lilium longiflorum 'Georgia' bởi shoot hình như bị ảnh hưởng bởi việc bổ sung các chất lỏng mediu. M Scientia Hortic 103: 39- 49. Harbaugh BK (2006) Cát Tường, Eustoma grandiflorum. Trong: Anderson NO (Ed), Flower Chăn nuôi và Di truyền học,. Springer, Hà Lan, pp 645-663 Hartmann HJ, Kester DE, Davies FT, Geneve RT (1997) Nhà máy Tuyên truyền: Nguyên tắc và Thực hành. 6 th ed, Prentica- Hill, Englewood Cliffs, NJ. Hashemabadi D, Kaviani B (2010) Trong ống nghiệm gia tăng của một cây thuốc quan trọng Aloe- Một phương pháp để nhanh chóng sản xuất. Aus J Crop Sci 4 (4):. 216-222 Jain SM, Ochatt SJ (2010) Nghị định thư cho In Vitro Tuyên truyền của cảnh Cây cảnh. Springer Protocols. Humana Pr ess. Kalimuthu K, Senthilkumar R, Vijayakumar S (2007) Trong ống nghiệm vi nhân phong lan, Oncidium sp. (Dancing Dolls). AFR J Công nghệ sinh học 6 (10):. 1171-1174 Kunitake H, T Nakashima, Mori K, Tanaka M, Mii M (1 995) tái sinh cây từ bào trần diệp nhục của li sianthus (Eustoma grandiflorum) bằng cách thêm thành viên mới than củi vào môi trường nuôi cấy nguyên hình. Plant Cell ống papi Org Cult 43: 59. 65. Lee-Epinosa HE, Murguia-Gonzalez J, Garcia-Rosas B, Cordova-Contreras AL, Laguna C (2008) Trong ống nghiệm dòng vô tính lan truyền của vani (Vanilla Planifolia Andrews). HortSci 43 :. 454-458 Ming-xia G, et al. (2008) Nghiên cứu propa nhanh gation công nghệ của Eustoma grandiflorum trong ống nghiệm. J Anhuo Agric Sci, Abstract, p 9. Murashige T, F Skoog (1962) A vừa sửa lại cho ra pid tăng trưởng và sinh trắc nghiệm nuôi cấy mô với thuốc lá. P hysiol Plant 15:. 473-497 Nayak S, Hatwar B, Jain A (2010) Ảnh hưởng của cytokini n và auxin về văn hóa của mô phân sinh Bambusa arundinacea. Der Pharmacia Letter 2 (1):. 408-414 Nhựt DT, NT Hải, Phan MX (2010) A cao efficien t giao thức cho vi nhân Begonia củ. Trong: Jain SM, Ochatt SJ (eds) Nghị định thư cho trong Vitro Tuyên truyền của cảnh Cây cảnh, giao thức Springer. Humana Pr ess pp 15-20. Nitsch JP, Nitsch C, Rossini LME, Hà DBD (1967) Các vai trò của adenine trên nụ sự khác biệt. Photomorph 17: 4 46-453. Ordogh M, Jambor-Benczur E, Tilly-Mandy A (2006) Vi của Echo giống của Eustoma grandiflorum (ISHS) Acta vườn: V International Symposium vào trong ống nghiệm văn hóa và giống Horticultural 725: 457- 460. Paek KY, Hahn EJ (2000) cytokinin, auxin và acti hoạt hóa than ảnh hưởng đến sinh cơ quan và giải phẫu đặc điểm của nền văn hóa shoot-tip của Cát Tường [Eustoma grandiflorum (Raf.) Shinn]. Trong Vitro di Dev Biol-Plant 36:. 128-132 Pati PK, Rath SP, Sharma M, Sood A, Ahuja PS (2005) trong ống nghiệm nhân giống hoa hồng-bình luận. Công nghệ sinh học tiến bộ 94- 114. Pierik RLM (1987) Trong ống nghiệm văn hóa của thực vật bậc cao. Dordrecht, Hà Lan, Martinus Nijhoff 45-82. Roh MS, Halevy AH, Wilkins HF (1989) Eustoma grandiflorum. Trong: Halevy AH (Ed), Sổ tay có hoa, CRC Press, Boca Raton, FL, pp 322-327. Roh SM, Lawson RH (1988) Nuôi cấy mô trong cải thiện Eustoma. HortSci 23: 658. Semeniuk P, Griesbach RJ (1987). Trong ống nghiệm nhân giống của cỏ cây khổ sâm. Plant Cell ống papi Org Cult 8: 249-25 3.