(Haberlandt, 1902) and unequivocall

(Haberlandt, 1902) and unequivocally demonstrated for the first time in plants by Steward et al. (1958). Cell tissue and organ culture through in vitro condition (Debergh and Zimmerman, 1991) can be employed for large scale propagation of disease free clones and gene pool conservation. Aromatic plant industry has applied immensely in vitro propagation approach for large scale plant multiplication of elite superior varieties. As a result, hundreds of plant tissue culture laboratories have been constructed worldwide, especially in the developing countries due to cheap labor costs. However, micropropagation technology is more costly than conventional propagation methods and unit cost per plant becomes unaffordable, thus compels to adopt strategies to cut down the production cost (IAEA-TECDOC-1384, 2004).

Micropropagation of aromatic plants: Micropropagation has superiority over conventional method of propagation because of high multiplication rate and disease free plants. Efficient plant regeneration protocol is essential for genetic manipulation of crop species. Aromatic plants are used as dried roots, buds, seeds, berries and fruits commonly used for their flavor and other properties (Samuel et al., 2001). India is in rich repository of aromatic plants used as spices and accounts for about 47% of the global trade (Peter et al., 2007). The productivity of many of these crops is low due to lack of high yielding, biotic stress resistant varieties and the absence of disease-free planting material of elite genotypes. Though, vegetative propagation is prevalent in many tropical and herbal aromatic plants, it is not adequate to meet the demand (Nirmal Babu and Divakaran, 2003). Mustafa and Hariharan (1998) have developed a new tissue culture method for the large-scale multiplication of Zingiberaceous family which constitutes a vital group of rhizomatous aromatic plants characterized by the presence of volatile oils and oleoresins of export value. Protocols for clonal multiplication of many economically and medicinally important Zingiberaceous species like Amomum subulatum (large cardamom), Curcuma aromatica (kasturi turmeric), C. amada (mango ginger) (Prakash et al., 2004), C. domestica, C. zedoaria (Yasuda et al., 1988; Prakash et al., 2004), C. aeruginosa (Balachandran et al., 1990). C caesia (Bharalee et al., 2005), Alpinia sp. (Barthakur and Bordoloi, 1992; Geetha et aZ.,1997) Kaempferia galangal (Ajith and Seeni, 1995; Chan and Thong, 2004; Chirangini et al., 2005), ginger (Hosoki and Sagawa, 1977; Nadgauda et al., 1980; Nirmal Babu et al., 1997) and Hedychium spicatum (Badoni et al., 2010) were developed. However, regeneration of ginger plantlets through callus phase has been reported from leaf, vegetative bud, ovary, anther explants (Nirmal Babu et al., 1992, 1996, 1997; Kackar et al., 1993) and anther callus from diploid and tetraploid ginger (Nirmal Babu, 1997).

Black pepper micropropagation was reported using various explants from both mature and juvenile tissues (Broome and Zimmerman, 1978; Mathews and Rao, 1984; Philip et al., 1992; Nazeem et al., 1993, 2004; Nirmal Babu et al., 2005). Plant regeneration was reported in black pepper from shoot tip and leaf with or without intervening callus phase (Nirmal Babu et al., 1997; Nazeem et al., 1993; Bhat et al., 1995), whereas, Shaji et al. (1998) reported variability among genotypes for callus induction. But cyclic somatic embryogenesis from black pepper zygotic embryos was reported by Joseph et al. (1996) and Nair and Gupta (2003, 2005). Successful cardamom regeneration from callus of seedling explants was reported by many scientist (Priyadarshan and Zachariah, 1986; Nirmal Babu et al., 1993), whereas, commercialization of micropropagated turmeric plant was reported by Nadgauda et al. (1978), Keshavachandaran and Khader (1989), Nirmal Babu et al. (1997) and Meenakshi et al. (2001). Organogenesis and plantlet formation were achieved from the callus cultures of turmeric (Nirmal Babu et al., 1997; Salvi et al., 2000, 2001;

Kết quả (Việt) 1:

(Haberlandt, 1902) và cách dứt khoát đã chứng minh cho lần đầu tiên trong các nhà máy bởi Steward et al. (1958). Tế bào mô và cơ quan văn hóa thông qua các điều kiện trong ống nghiệm (Debergh và Zimmerman, 1991) có thể được sử dụng cho quy mô lớn tuyên truyền của bệnh nhân bản miễn phí và hồ bơi gen bảo tồn. Thơm thực vật ngành công nghiệp đã áp dụng phương pháp tiếp cận vô cùng trong ống nghiệm tuyên truyền cho quy mô lớn thực vật nhân ưu tú giống cao cấp. Kết quả là, hàng trăm phòng thí nghiệm mô nền văn hóa của thực vật đã được xây dựng trên toàn thế giới, đặc biệt là ở các nước đang phát triển do chi phí lao động rẻ. Tuy nhiên, công nghệ micropropagation là tốn kém hơn so với phương pháp thông thường tuyên truyền và đơn vị chi phí cho mỗi thực vật trở thành khả năng chi trả, do đó buộc phải áp dụng các chiến lược để cắt giảm chi phí sản xuất (IAEA-TECDOC-1384, năm 2004).Micropropagation of aromatic plants: Micropropagation has superiority over conventional method of propagation because of high multiplication rate and disease free plants. Efficient plant regeneration protocol is essential for genetic manipulation of crop species. Aromatic plants are used as dried roots, buds, seeds, berries and fruits commonly used for their flavor and other properties (Samuel et al., 2001). India is in rich repository of aromatic plants used as spices and accounts for about 47% of the global trade (Peter et al., 2007). The productivity of many of these crops is low due to lack of high yielding, biotic stress resistant varieties and the absence of disease-free planting material of elite genotypes. Though, vegetative propagation is prevalent in many tropical and herbal aromatic plants, it is not adequate to meet the demand (Nirmal Babu and Divakaran, 2003). Mustafa and Hariharan (1998) have developed a new tissue culture method for the large-scale multiplication of Zingiberaceous family which constitutes a vital group of rhizomatous aromatic plants characterized by the presence of volatile oils and oleoresins of export value. Protocols for clonal multiplication of many economically and medicinally important Zingiberaceous species like Amomum subulatum (large cardamom), Curcuma aromatica (kasturi turmeric), C. amada (mango ginger) (Prakash et al., 2004), C. domestica, C. zedoaria (Yasuda et al., 1988; Prakash et al., 2004), C. aeruginosa (Balachandran et al., 1990). C caesia (Bharalee et al., 2005), Alpinia sp. (Barthakur and Bordoloi, 1992; Geetha et aZ.,1997) Kaempferia galangal (Ajith and Seeni, 1995; Chan and Thong, 2004; Chirangini et al., 2005), ginger (Hosoki and Sagawa, 1977; Nadgauda et al., 1980; Nirmal Babu et al., 1997) and Hedychium spicatum (Badoni et al., 2010) were developed. However, regeneration of ginger plantlets through callus phase has been reported from leaf, vegetative bud, ovary, anther explants (Nirmal Babu et al., 1992, 1996, 1997; Kackar et al., 1993) and anther callus from diploid and tetraploid ginger (Nirmal Babu, 1997).Hạt tiêu đen micropropagation đã được báo cáo bằng cách sử dụng explants khác nhau từ cả hai trưởng thành và vị thành niên mô (Broome và Zimmerman, 1978; Sân bay Mathews và Rao, năm 1984; Philip et al., 1992; Nazeem et al., 1993, năm 2004; Nirmal Babu et al., 2005). Tái tạo thực vật đã được báo cáo trong hạt tiêu đen từ chụp Mẹo và lá có hoặc không có can thiệp callus giai đoạn (Nirmal Babu et al., 1997; Nazeem et al., 1993; Bhat et al., 1995), trong khi đó, UT et al. (1998) báo cáo các biến đổi trong số các kiểu gen cho cảm ứng callus. Nhưng nhóm cyclic embryogenesis Soma từ hạt tiêu đen zygotic phôi đã được báo cáo bởi Joseph et al. (1996) và Nguyễn và Gupta (2003, 2005). Tái sinh thành công thảo quả từ callus của cây giống explants được báo cáo bởi nhiều nhà khoa học (Priyadarshan và Zachariah, 1986; Nirmal Babu et al., 1993), trong khi đó, thương mại hóa micropropagated nghệ thực vật đã được báo cáo bởi Nadgauda et al. (1978), Keshavachandaran và Khader (1989), Nirmal Babu et al. (1997) và Meenakshi et al. (2001). Organogenesis và plantlet hình thành đã đạt được từ các nền văn hóa callus của nghệ (Nirmal Babu et al., 1997; Salvi et al., 2000, 2001;

Kết quả (Việt) 2:

(Haberlandt, 1902) và dứt khoát đã trình diễn lần đầu tiên tại nhà máy của Steward et al. (1958). Mô tế bào và cơ quan thông qua in vitro điều kiện (Debergh và Zimmerman, 1991) có thể được sử dụng cho công tác tuyên truyền quy mô lớn các bệnh nhân bản miễn phí và bảo tồn nguồn gen. Ngành công nghiệp nhà máy đã áp dụng vô cùng thơm trong cách tiếp cận giống in vitro để nhân giống cây trồng quy mô lớn của các giống cao ưu tú. Kết quả là, hàng trăm phòng thí nghiệm nuôi cấy mô thực vật đã được xây dựng trên toàn thế giới, đặc biệt là ở các nước đang phát triển do chi phí lao động rẻ. Tuy nhiên, công nghệ vi nhân là tốn kém hơn các phương pháp nhân giống thông thường và đơn vị chi phí cho mỗi nhà máy trở nên đắt đỏ, do đó buộc phải áp dụng các chiến lược cắt giảm chi phí sản xuất (IAEA-TECDOC-1384, 2004). Vi của cây thơm: Vi có ưu thế hơn thông thường phương pháp nhân giống do tỷ lệ nhân cao và bệnh cây miễn phí. Hiệu quả giao thức tái sinh cây là điều cần thiết cho các thao tác di truyền của các loài cây trồng. Cây thơm được sử dụng làm khô rễ, chồi, hạt, hoa quả và trái cây thường được sử dụng để tạo hương vị của họ và các tài sản khác (Samuel et al., 2001). Ấn Độ là trong kho lưu trữ phong phú của cây thơm dùng làm gia vị và chiếm khoảng 47% thương mại toàn cầu (Peter et al., 2007). Năng suất của nhiều loại cây trồng thấp do thiếu các giống cho năng suất cao kháng stress sinh học và sự vắng mặt của vật liệu trồng sạch bệnh của các kiểu gen ưu tú. Mặc dù, nhân giống sinh dưỡng là phổ biến ở nhiều loài thực vật nhiệt đới và thơm thảo dược, nó không phải là đủ để đáp ứng nhu cầu (Nirmal Babu và Divakaran, 2003). Mustafa và Hariharan (1998) đã phát triển một phương pháp nuôi cấy mô mới cho các nhân quy mô lớn của Zingiberaceous gia đình tạo thành một nhóm quan trọng của cây thơm rhizomatous đặc trưng bởi sự hiện diện của các loại dầu dễ bay hơi và nhựa dầu có giá trị xuất khẩu. Nghị định thư cho phép nhân giống vô tính của nhiều loài Zingiberaceous kinh tế và y học quan trọng như Amomum subulatum (thảo quả lớn), Curcuma aromatica (Kasturi nghệ), C. Amada (xoài gừng) (Prakash et al., 2004), C. domestica, C. zedoaria (Yasuda et al, 1988;.. Prakash et al, 2004) (. Balachandran et al, 1990), C. aeruginosa. C caesia (Bharalee et al., 2005), Alpinia sp. (Barthakur và Bordoloi năm 1992;. Geetha et AZ, 1997) Kaempferia riềng (Ajith và Seeni, 1995; Chan và Thông, 2004; Chirangini et al, 2005.), Gừng (Hosoki và Sagawa, 1977;. Nadgauda et al, 1980;.. Nirmal Babu et al, 1997) và Hedychium spicatum (Badoni et al, 2010) được phát triển. Tuy nhiên, sự tái sinh của cây con gừng qua giai đoạn mô sẹo đã được báo cáo từ lá, chồi sinh dưỡng, buồng trứng, bao phấn cấy (Nirmal Babu et al, 1992, 1996, 1997;. Kackar et al., 1993) và bao phấn callus từ gừng lưỡng bội và tứ bội . (Nirmal Babu, 1997) Tiêu đen vi nhân đã được báo cáo sử dụng cấy khác nhau từ cả hai mô trưởng thành và vị thành niên (Broome và Zimmerman, 1978; Mathews và Rao, 1984; Philip et al 1992,;. Nazeem et al 1993, năm 2004. Nirmal Babu et al., 2005). Tái sinh cây trồng đã được báo cáo trong hạt tiêu đen từ đỉnh chồi và lá có hoặc không có can thiệp giai đoạn callus (Nirmal Babu et al, 1997;.. Nazeem et al, 1993;. Bhat et al, 1995), trong khi đó, Shaji et al. (1998) báo cáo thay đổi giữa các kiểu gen cho callus cảm ứng. Nhưng phôi soma cyclic từ phôi zygotic hạt tiêu đen đã được báo cáo bởi Joseph et al. (1996) và Nair và Gupta (2003, 2005). Thảo quả tái sinh thành công từ mô sẹo của cây giống cấy được báo cáo của nhiều nhà khoa học (Priyadarshan và Zachariah, 1986;. Nirmal Babu et al, 1993), trong khi đó, thương mại hóa các nhà máy bột nghệ micropropagated đã được báo cáo bởi Nadgauda et al. (1978), Keshavachandaran và Khader (1989), Nirmal Babu et al. (1997) và Meenakshi et al. (2001). Sinh cơ quan và cây non đã đạt được hình thành từ các nền văn hóa sẹo của củ nghệ (Nirmal Babu et al, 1997;. Salvi et al, 2000, 2001.