Liveweight was recorded on a broode

Liveweight was recorded on a brooder group basis
on day 0. Birds were weighed individually on days 7,
14, 21, 28, 35, 42 and 49. Feed intake was calculated on a
weekly basis for each pen of birds on days 7, 14, 21, 28,
35, 42 and 49. Chickens were killed at various stages of
the experiment to collect and weigh organs (Table 1).
All organs were weighed immediately after dissection
and the small intestine weight included that of digesta.
Spleen samples collected for viral quantification
were rinsed with sterile phosphate–buffered saline
(PBS), transferred to sterile eppendorf tubes containing
20 µl of RNA Later® (Qaigen Pty. Ltd., Clifton Hill,
Vic, Australia), and stored at –80ºC. DNA was extracted
from spleen samples (10 mg) using QIAamp DNA Mini
Kits (Qiagen Pty Ltd, Clifton Hill, Vic, Australia) and
the DNA content of each sample was determined
spectrophotometrically. MDV and HVT viral copy
number per ng of extracted DNA was determined using
a qPCR method (Islam et al. 2004; Islam et al. 2005a).
Absolute quantification of MDV was based on plasmid
standard curves of known concentration of the target
sequence for each virus. Viral load per 106 spleen cells
was determined assuming 2.5 pg genomic DNA per cell
(Gregory, 2005) and equal extraction efficiency for
Effects of in ovo vaccination against Marek’s disease on chicken performance 79
cellular and viral DNA. The number and source of
samples analysed for HVT and MDV viral load by qPCR
assay is shown in Table 2.
Organ weights were analysed as a percentage of
liveweight. HVT data were log transformed [Log10(y+1)]
prior to analysis. Appropriate general linear models for
the effects of treatment, room and their interaction were
fitted using SuperANOVA® (Abacus Concepts Inc.,
CA, USA). As bird numbers in each treatment/room
combination varied, least square means were corrected
for an imbalanced design. The experimental unit for
liveweight (day 7–49), organ weights, HVT load and
MDV load was the individual chicken. The experimental
unit for liveweight on day 0 was the brooder group, and
for FCR and feed intake, the grow–out pen (3–5 birds).
Repeated measures analysis was used for liveweight,
feed intake and FCR. Repeated measures analysis was
followed by analysis within each time period to test the
effects of treatment, room and their interaction. Duncan’s
new multiple range test was used to identify significant
differences between individual treatments in instances
in which significant main effects of treatment occurred.
Specific linear contrasts developed a priori were used
within the univariate model. A probability level of P≤0.05
was assumed to be significant.

Kết quả (Việt) 1:

Liveweight đã được ghi lại trên một cơ sở nhóm ấpngày 0. Chim đã nặng riêng rẽ vào ngày 7,14, 21, 28, 35, 42 và 49. Lượng thức ăn chăn nuôi đã được tính toán trên mộtCác cơ sở hàng tuần cho mỗi bút chim vào ngày 7, 14, 21, 28,35, 42 và 49. Con gà bị giết hại tại các giai đoạn khác nhau củaCác thử nghiệm để thu thập và cân nhắc cơ quan (bảng 1).Tất cả các cơ quan được cân nặng ngay lập tức sau khi mổ xẻvà trọng lượng ruột bao gồm các digesta.Lá lách mẫu thu thập để định lượng virusđược rửa với dung dịch muối photphat-đệm vô trùng(PBS), chuyển sang vô trùng eppendorf ống có chứa20 ml RNA sau® (Qaigen Pty. Ltd., Clifton Hill, thácVic, Úc), và được lưu trữ tại-80ºC. DNA được chiết xuấttừ lá lách mẫu (10 mg) bằng cách sử dụng QIAamp DNA MiniBộ dụng cụ (Qiagen Pty Ltd, Clifton Hill, Vic, Úc) vàmỗi mẫu ADN, nội dung đã được xác địnhspectrophotometrically. Bản sao virus MDV và HVTsố mỗi ng trích DNA đã được xác định bằng cách sử dụngmột phương pháp qPCR (Hồi giáo và ctv. 2004; Hồi giáo et al. 2005a).Định lượng tuyệt đối của MDV dựa trên plasmidtiêu chuẩn đường cong nồng độ nổi tiếng của mục tiêuThứ tự cho mỗi virus. Tải virus cho tế bào lá lách 106đã được xác định giả 2.5 pg gen DNA mỗi tế bào(Gregory, năm 2005) và bằng khai thác hiệu quả nhấtẢnh hưởng của ở ovo tiêm phòng vắc xin chống lại căn bệnh của Marek trên gà hiệu suất 79tế bào và virus DNA. Số lượng và nguồn gốc củamẫu phân tích cho tải virus HVT và MDV bởi qPCRkhảo nghiệm được hiển thị trong bảng 2.Cơ quan trọng đã được phân tích theo tỷ lệliveweight. HVT dữ liệu là chuyển đăng nhập [Log10(y+1)]trước khi phân tích. Phù hợp các mô hình tuyến tính tổng quát chonhững tác động của điều trị, Phòng và tương tác của họ đãđược trang bị bằng cách sử dụng SuperANOVA® (bàn tính khái niệm Inc,CA, HOA KỲ). Như con chim con số trong mỗi phòng điều trịsự kết hợp khác nhau, ít nhất là hình vuông có nghĩa là đã được chỉnh sửaĐối với một thiết kế mất cân bằng. Đơn vị thử nghiệm choliveweight (ngày 7-49), trọng lượng nội tạng, HVT tải vàMDV là gà cá nhân. Các thử nghiệmđơn vị cho liveweight ngày 0 là group ấp, vàTỐN và lượng thức ăn chăn nuôi, phát triển-out bút (3 – 5 loài chim).Lặp đi lặp lại các biện pháp phân tích được sử dụng cho liveweight,ăn uống và tốn. Lặp đi lặp lại các biện pháp phân tíchtheo phân tích trong mỗi khoảng thời gian để kiểm tra cáctác động của điều trị, Phòng và tương tác của họ. Duncan'smới nhiều phạm vi kiểm tra được sử dụng để xác định quan trọngsự khác biệt giữa các phương pháp trị liệu cá nhân trong trường hợpnhững tác dụng chính quan trọng của việc điều trị đã xảy ra.Cụ thể tuyến tính tương đã phát triển một tiên nghiệm đã được sử dụngtrong mô hình véc. Một mức xác suất của P≤0.05đã được giả định là đáng kể.

Kết quả (Việt) 2:

Khối lượng sống được ghi nhận trên cơ sở nhóm bố mẹ
vào ngày 0. Birds được cân riêng vào ngày 7,
14, 21, 28, 35, 42 và 49. Thức ăn uống đã được tính toán trên
cơ sở hàng tuần cho mỗi chuồng chim vào ngày 7, 14 , 21, 28,
35, 42 và 49. Gà con bị giết ở các giai đoạn khác nhau của
cuộc thử nghiệm để thu thập và cân nặng cơ quan (Bảng 1).
Tất cả các bộ phận cơ thể được cân ngay lập tức sau khi bóc tách
và trọng lượng ruột non bao gồm của digesta.
mẫu Lách thu để định lượng virus
được rửa với nước muối vô trùng đệm phosphat
(PBS), chuyển sang ống Eppendorf vô trùng có chứa
20 ml RNA Later® (Qaigen Pty. Ltd., Clifton Hill,
Vic, Australia), và lưu trữ ở -80ºC. DNA được chiết xuất
từ các mẫu lá lách (10 mg) sử dụng QIAamp DNA Thống
Kits (Qiagen Pty Ltd, Clifton Hill, Vic, Australia) và
các thành phần DNA của mỗi mẫu được xác định
spectrophotometrically. MDV và HVT bản sao virus
số mỗi ng ADN chiết xuất được xác định bằng
phương pháp qPCR (Islam et al 2004;.. Islam et al 2005a).
Định lượng tuyệt đối của MDV dựa trên plasmid
đường cong chuẩn có nồng độ nhất của mục tiêu
thứ tự cho mỗi virus. Viral load mỗi 106 tế bào lá lách
đã được xác định giả định 2,5 pg DNA mỗi tế bào
(Gregory, 2005) và hiệu quả khai thác bình đẳng cho
hưởng của trong tiêm chủng ovo chống bệnh Marek trên hiệu suất gà 79
DNA của tế bào và virus. Số lượng và nguồn gốc của
mẫu phân tích cho HVT và MDV tải lượng virus qPCR
khảo nghiệm được thể hiện trong Bảng 2.
trọng Organ được phân tích như một tỷ lệ phần trăm của
khối lượng sống. Dữ liệu HVT đã log chuyển [LOG10 (y + 1)]
trước khi phân tích. Phù hợp mô hình tuyến tính tổng quát cho
hiệu quả điều trị, phòng và tương tác của họ đã được
trang bị sử dụng SuperANOVA® (Abacus Concepts Inc.,
CA, USA). Khi số lượng chim trong từng điều trị / phòng
kết hợp khác nhau, nhất là phương tiện quảng trường đã được sửa chữa
cho một thiết kế cân bằng. Các đơn vị thí nghiệm cho
khối lượng sống (ngày 7-49), trọng lượng cơ quan, tải HVT và
tải MDV là gà cá nhân. Các thử nghiệm
cho các đơn vị khối lượng sống vào ngày 0 là nhóm bố mẹ, và
cho FCR và nhận thức ăn, chuồng nuôi thương phẩm (3-5 con chim).
Lặp đi lặp lại phân tích các biện pháp đã được sử dụng cho khối lượng sống,
lượng thức ăn và tiêu tốn thức ăn. Phân tích các biện pháp lặp đi lặp lại đã được
theo sau bởi phân tích trong mỗi khoảng thời gian để kiểm tra
tác động của điều trị, phòng và tương tác của chúng. Duncan
thử nghiệm nhiều dòng sản phẩm mới đã được sử dụng để xác định ý nghĩa
khác biệt giữa các phương pháp điều trị cá nhân trong các trường hợp
mà trong đó tác động chính quan trọng của điều trị xảy ra.
Tương phản tuyến tính cụ thể phát triển một cách tiên được sử dụng
trong mô hình đơn biến. Một mức độ xác suất P≤0.05
được giả định là có ý nghĩa.