The species Xanthomonas oryzae incl

The species Xanthomonas oryzae includes two pathovars,
namely, oryzae and oryzicola (Swings et al., 1990). These
bacterial pathogens are closely related organisms and were
earlier named as pathovars of Xanthomonas campestris. Rice is
the main host for both pathogens, which are seed-borne and
seed-transmitted.
Bacterial leaf blight of rice (BLB) was first reported in
Fukuoka Prefecture, Japan, during 1884 in rice affected by X.
oryzae pv. oryzae. This disease is considered one of the most
serious rice diseases worldwide although it has declined in
incidence in Japan since the mid 1970s. Nevertheless it is still
prevalent worldwide. The disease was reported in South East
Asia in the early 1960s, where it is currently widespread, and it
still affects the rice crop in its severe form (Goto, 1992). It has
also been reported in several African countries, in Australia,
North America (Lousiana and Texas, US), Central and South
America (OEPP/EPPO, 2006a) but it is only of economic
importance in Asia. Other reported hosts include wild or minor
cultivated Poaceae: Brachiaria mutica, Cenchrus ciliaris,
Cyperus difformis, C. rotundus, Cynodon dactylon, Echinochloa
crus-galli, Leersia spp. (Leersia hexandra, L. oryzoides),
Leptochloa chinensis, Oryza spp., Panicum maximum, Paspalum
scrobiculatum, Zizania aquatica, Z. latifolia, Z. palustris,
and Zoysia japonica (Li et al., 1985; Bradbury, 1986; Valluva-
paridasan & Mariappan, 1989; EPPO/CABI, 1997; Saddler,
2002a). Cyperaceae (sedges) that are naturally infected include
Cyperus difformis and C. rotundus. Variation in virulence
has been observed between isolates, and many races have been
described; however, the different races have not been clearly
defined with specific reactions being assigned to each variety
(Mew, 1987). The diversity of the pathogen has been analysed
based on virulence and PCR-based DNA fingerprinting
(George et al., 1994). Low virulence strains have been reported

in the United States and India (Jones et al., 1989; Gnanamanickam
et al., 1993).
Bacterial leaf streak of rice (BLS) is caused by X. oryzae pv
oryzicola. The disease is present in Tropical Asia, West Afric
and Australia (OEPP/EPPO, 2006b). X. oryzae pv. oryzicol
has reached epidemic proportions in recent years in China
Other hosts affected by the pathogen are: Oryza spp., Leersi
spp., Leptochloa filiformis, Paspalum orbiculare, Zizani
aquatica, Z. palustris and Zoysia japonica. No races have bee
recorded, however, differences in virulence of strains have bee
observed in many countries (Vera Cruz et al., 1984; Adhikari &
Mew, 1985; Saddler, 2002b).
Further information on the biology and ecology of th
species can be found in the EPPO data sheet on X. oryza
(OEPP/EPPO, 1997)
Identity
Taxonomic position: Kingdom: Bacteria; Phylum: Proteobacteria
Class: Gammaproteobacteria; Order: Xanthomonodales; Family
Xanthomonodaceae; Genus: Xanthomonas (Dowson, 1939)
Name: Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Ishiyama 1922
Swings et al. (1990)
Synonyms: Xanthomonas campestris pv. oryzae (Ishiyam
1922) Dye 1978; Xanthomonas oryzae (Ishiyama, 1921
Dowson 1943; Other synonyms are Xanthomonas itoana
Xanthomonas kresek, Xanthomonas translucens f. sp. oryzae
EPPO computer code: XANTOR
Phytosanitary categorization: EPPO A1 list no. 2, EU anne
II/A1 as Xanthomonas campestris pv. oryzae.
Xanthomonas oryzae pv. oryzicola
Name: Xanthomonas oryzae pv. oryzicola (Fang et al., 1956
Swings et al. (1990)
Fig. 1 Symptoms of X. oryzae pv. oryzae (bacterial leaf blight). (a) Rice field plants with X. oryzae pv. oryzae symptoms; (b) X. oryzae pv. oryzae symptoms
in rice nursery beds; (c) Rice seedlings showing X. oryzae pv. oryzae symptoms; (d) Wilting of transplanted seedlings; (e) Kresek symptoms in field plants;
(f) Progressive development of bacterial leaf blight in rice plants grown from infected seed.

Synonyms: Xanthomonas campestris pv. oryzicola (Fang
et al., 1956) Dye 1978; Xanthomonas oryzicola (Fang et al.
1956) Dowson 1943; Xanthomonas translucens f. sp. oryzicola
(Fang et al., 1956) Bradbury 1971
EPPO computer code: XANTTO
Phytosanitary categorization: EPPO A1 list no. 3, EU annex
II/A1 as Xanthomonas campestris pv. oryzicola.
Detection
Disease symptoms
X. oryzae pv. oryzae and X. oryzae pv. oryzicola can be clearly
distinguished by symptoms, which reflect the differences in
their modes of infection.
Bacterial leaf blight of rice (BLB)
X. oryzae pv. oryzae enters either through wounds or hydathodes
multiplies in the epitheme and moves to the xylem vessel
where active multiplication results in blight on the leaves. The
symptoms of the disease include leaf blight, wilting (kresek)
(Fig. 1) and pale yellow leaves. Leaf blight is characterized by
wavy elongated lesions, which develop along the leaf margins
They start as small water-soaked stripes from the tips where
water pores are found and rapidly enlarge in length and width,
orming a yellow lesion with a wavy margin along the lead
edges. Later on, diseased areas turn white to grey. These lesions
can develop on one or both sides of the leaf and occasionally
along the midribs, and leaf blight symptoms generally occur
rom maximum tillering stage and onwards. In young lesions,
drops of bacterial ooze can be observed early in the morning.
On panicles the disease causes grey to light brown lesions on
glumes that result in infertility and low quality of the grains.
Kresek is the result of systemic infection that is common in the
ropics in young plants and during the tillering stage of susceptible
cultivars. Leaves of infected plants wilt, roll up, turn grey-green
and whither, and entire plants finally die. Surviving plants look
tunted and yellowish. Yellow or pale yellow leaves are due to
ystemic infections that appear at tillering stage; the youngest
eaves become uniformly pale yellow or show a broad yellow
tripe, and bacteria are found in the internodes and crowns of
affected stems, but not in the leaf itself (Ou, 1985; Goto, 1992).
Bacterial leaf streak of rice (BLS)
X. oryzae pv. oryzicola is a foliar disease that appears at any
growth stage of the host. Cells of X. oryzae pv. oryzicola enter
through the stomata and multiply in the parenchyma tissues of
the leaves. X. oryzae pv. oryzicola infects mainly the parenchyma
of the cells of the leaves, but is not systemic. Initial symptoms
are small water-soaked, transparent interveinal streaks (Fig. 2),
which may elongate and darken. The transparent streaks
differentiate leaf streak lesions from those of X. oryzae pv.
oryzae that are opaque against the light. Bacterial exudates canbe observed as tiny yellow beads. The narrow, long, translucent
lesions may coalesce, forming large patches, and severely
affected fields appear burnt. It is at this stage that leaves wither,
turn brown and eventually die, and the disease can be difficult
to distinguish from bacterial leaf blight (Ou, 1985).
Isolation
Symptomatic samples are processed individually or in small
groups. Precautions are made to avoid cross contaminations
when collecting the samples and during the extraction process.
The samples should be processed as soon as possible after
collection and conserved at 4–8°C until use. Freshly prepared
sample extracts are necessary for a successful isolation. Several
procedures have been used for the isolation of X. oryzae pv.
oryzae from symptomatic and asymptomatic plant parts,
including seeds. Most of the procedures described for the
isolation of X. oryzae pv. oryzae from rice plants, can also be
applied for the isolation of X. oryzae pv. oryzicola. However, it
is known that both bacteria grow slowly on the isolating media
and can be overgrown by fast growing contaminants. Often these
contaminants are of yellow colour (e.g. Pantoea agglomerans
and Xanthomonas-like saprophytic bacteria) thus making
difficult the observations of colonies of the target organisms and
re often visually undistinguishable in colony morphology,
rowth, and colour from strains of both pathogens. Culturing
may fail from advanced stages of infection due to competition
r being overgrown by saprophytic organisms and also from
eeds with low levels of inoculum or under bad conditions of
orage. If disease symptoms are typical but isolation is negative,
he isolation step should be repeated.
irect plating from symptomatic and asymptomatic leaves
ollected from the field
acterial leaf blight in temperate regions can usually be
bserved during the latter part of the seed bed stage (Ou, 1985).
he bacteria can be detected from the upper part of infected
aves before symptoms appear (Goto, 1965; Misukami &
Wakimoto, 1969; Sakthivel et al., 2001). Tabei (1967) reported
hat symptomless rice seedlings may carry the pest.
The isolation of Xanthomonas from symptomatic material is
referable and can be performed using Peptone sucrose agar
PSA), Nutrient Broth Yeast Extract agar medium (NBY),
rowth Factor (GF) agar (Agarwal et al., 1989; Sakthivel et al.,
001). (Appendix 1). The bacteria can also be isolated on
utrient agar (NA) but with a very slow growth; semi-selective
gar substrates like modified XOS agar medium (mXOS)
Di et al., 1991; Gnanamanickam et al., 1994). X. oryzae pv.
ryzicola colonies are also isolated on modified Wakimoto’s
gar (Mew & Mistra, 1994) developed for the detection of X.
ryzae pv. oryzae, but with the omission of ferrous sulfate.
Surface disinfection with 70% alcohol for 15 s followed by
wo to three times rinsing with sterile water is used for isolation
om field plants. Plant parts showing fresh symptoms and with
xudates are selected whenever possible. Sections (2 mm ×
mm) from infected tissue and preferably from the advancing
ortion of lesions are selected. The exudates can be processed
eparately in 1 mL of sterile water. Narrow sections of infected
ssue are cut with a sterilized razor blade or scalpels, placed in
drop of sterile water and covered with a cover slip before the
bservation under the compound microscope for bacterial
reaming, an indication of bac

Kết quả (Việt) 1:

Các loài Xanthomonas oryzae bao gồm hai pathovars,
cụ thể là, oryzae và oryzicola (thay đổi và ctv., 1990). Những
tác nhân gây bệnh do vi khuẩn là chặt chẽ liên quan đến sinh vật và
trước đó được đặt tên là pathovars Xanthomonas campestris. Gạo là
máy chủ chính cho cả hai tác nhân gây bệnh, mà được sinh ra hạt giống và
hạt giống truyền.
vi khuẩn lá giống bọ xanh gạo (BLB) là báo cáo trong vòng
Fukuoka, Nhật bản, trong năm 1884 trong gạo bị ảnh hưởng bởi X.
oryzae pv. oryzae. Bệnh này được coi là một trong những
gạo nghiêm trọng bệnh trên toàn thế giới mặc dù nó đã giảm xuống trong
tỷ lệ tại Nhật bản từ giữa thập niên 1970. Tuy nhiên nó vẫn còn là
phổ biến trên toàn thế giới. Bệnh đã được báo cáo ở Nam Đông
Châu á trong đầu những năm 1960, nơi nó là hiện nay phổ biến rộng rãi, và nó
vẫn còn ảnh hưởng đến cây trồng lúa trong hình thức nghiêm trọng (Goto, 1992). Đô thị này có
cũng báo cáo trong một số nước châu Phi, tại Úc,
Bắc Mỹ (Lousiana và Texas, Hoa Kỳ), Trung và Nam
Mỹ (OEPP/EPPO, 2006a) nhưng nó là chỉ của kinh tế
tầm quan trọng ở Châu á. Các máy chủ báo cáo bao gồm hoang dã hoặc tiểu
trồng sơ: Brachiaria mutica, Cenchrus ciliaris,
Cyperus difformis, C. gấu, Cynodon gà, Echinochloa
crus-galli, Leersia spp. (Leersia hexandra, L. oryzoides),
Leptochloa chinensis, Oryza spp., Panicum tối đa, Paspalum
scrobiculatum, Zizania aquatica, Z. latifolia, Z. palustris,
và Zoysia japonica (Li et al., 1985; Bradbury, 1986; Valluva-
paridasan & Mariappan, năm 1989; EPPO/CABI, 1997; Saddler,
2002a). Cyperaceae (sedges) mà tự nhiên bị nhiễm bao gồm
Cyperus difformis và C. gấu. Các biến thể trong virulence
đã được quan sát thấy giữa chủng, và nhiều cuộc đua đã
mô tả; Tuy nhiên, các chủng tộc khác nhau chưa rõ ràng
defined với specific phản ứng được gán cho mỗi loại
(Mew, 1987). Sự đa dạng của các mầm bệnh đã được phân tích
dựa trên virulence và Đảng Cộng sản Romania dựa trên ADN fingerprinting
(George và ctv., 1994). Thấp virulence chủng đã được báo cáo

ở Hoa Kỳ và Ấn Độ (Jones et al., năm 1989; Gnanamanickam
et al., 1993).
vi khuẩn lá streak của gạo (BLS) là do X. oryzae pv
oryzicola. Căn bệnh là hiện diện trong vùng nhiệt đới châu á, West Afric
và Úc (OEPP/EPPO, 2006b). X. oryzae pv. oryzicol
đã đạt tỷ lệ bệnh dịch trong năm gần đây ở Trung Quốc
Các máy chủ bị ảnh hưởng bởi các mầm bệnh: Oryza spp., Leersi
spp., Leptochloa filiformis, Paspalum orbiculare, Zizani
aquatica, Z. palustris và Zoysia japonica. Không có chủng tộc khác có ong
thu âm, Tuy nhiên, sự khác biệt trong virulence của chủng có ong
quan sát thấy ở nhiều quốc gia (Vera Cruz et al., năm 1984; Adhikari &
Mew, 1985; Saddler, 2002b).
Xem thêm thông tin về sinh học và sinh thái của th
loài này được tìm thấy trong bảng dữ liệu EPPO ngày X. oryza
(OEPP/EPPO, 1997)
Identity
phân loại vị trí: Quốc Anh: vi khuẩn; Ngành: Sơ
lớp: Gammaproteobacteria; Thứ tự: Xanthomonodales; Gia đình
Xanthomonodaceae; Chi: Xanthomonas (Dowson, 1939)
tên: Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Ishiyama 1922
đu et al. (1990)
tham khảo: Xanthomonas campestris pv. oryzae (Ishiyam
1922) thuốc nhuộm 1978; Xanthomonas oryzae (Ishiyama, 1921
Dowson năm 1943; Từ đồng nghĩa khác là Xanthomonas itoana
Xanthomonas kresek, Xanthomonas translucens f. sp. oryzae
EPPO mã máy tính: XANTOR
Phytosanitary phân loại: EPPO A1 liệt kê số 2, EU anne
II/A1 là Xanthomonas campestris pv. oryzae.
Xanthomonas oryzae pv. oryzicola
tên: Xanthomonas oryzae pv. oryzicola (Fang et al., 1956
đu et al. (1990)
hình. 1 triệu chứng của X. oryzae pv. oryzae (vi khuẩn lá giống bọ xanh). (a) gạo quấn cây với X. oryzae pv. triệu chứng oryzae; (b) X. oryzae pv. triệu chứng oryzae
trong gạo cho bé giường; (c) cây giống gạo Hiển thị X. oryzae pv. triệu chứng oryzae; (d) héo của cấy cây giống; (e) Kresek triệu chứng trong các nhà máy quấn;
(f) tiến bộ phát triển của vi khuẩn lá giống bọ xanh trong gạo cây trồng từ nhiễm hạt.

tham khảo: Xanthomonas campestris pv. oryzicola (Fang
et al., 1956) thuốc nhuộm 1978; Xanthomonas oryzicola (Fang et al.
1956) Dowson năm 1943; Xanthomonas translucens f. sp. oryzicola
(Fang và ctv., 1956) Bradbury 1971
EPPO mã máy tính: XANTTO
Phytosanitary phân loại: EPPO A1 danh số 3, phụ lục EU
II/A1 là Xanthomonas campestris pv. oryzicola.
phát hiện
triệu chứng bệnh
X. oryzae pv. oryzae và X. oryzae pv. oryzicola có thể rõ ràng
phân biệt bằng các triệu chứng, mà reflect sự khác biệt trong
của chế độ của nhiễm trùng.
vi khuẩn lá giống bọ xanh gạo (BLB)
X. oryzae pv. oryzae vào hoặc thông qua các vết thương hoặc hydathodes
sẽ nhân trong epitheme và di chuyển đến các tàu xylem
nơi hoạt động nhân dẫn đến giống bọ xanh trên lá. Các
các triệu chứng của bệnh bao gồm lá giống bọ xanh, héo (kresek)
(Fig. 1) và nhạt màu vàng lá. Giống bọ xanh lá được đặc trưng bởi
gợn sóng tổn thương thuôn dài, phát triển dọc theo mép lá
họ bắt đầu như là nhỏ ngâm nước sọc từ những lời khuyên nơi
lỗ chân lông nước tìm thấy và nhanh chóng mở rộng chiều dài và chiều rộng,
orming một tổn thương màu vàng với một biên độ lượn sóng dọc theo đầu
cạnh. Sau này khu vực bệnh chuyển màu từ trắng tới xám. Các tổn thương
có thể phát triển trên một hoặc cả hai mặt của lá và đôi khi
dọc theo midribs và giống bọ xanh lá triệu chứng thường xảy ra
rom giai đoạn tối đa tillering trở đi. Trong tổn thương trẻ,
giọt của vi khuẩn lông có thể được quan sát thấy sớm vào buổi sáng.
Trên bông bệnh gây ra màu xám để tổn thương nâu ánh sáng trên
glumes dẫn đến vô sinh và các chất lượng thấp của hạt.
Kresek là kết quả của nhiễm trùng hệ thống mà là phổ biến trong các
ropics trong các nhà máy nhỏ và trong giai đoạn tillering của dễ bị
giống cây trồng. Lá của cây bị nhiễm bệnh héo, cuộn lên, chuyển màu xám-xanh
và đi đâu, và toàn bộ nhà máy finally chết. Còn sống sót cây nhìn
tunted và màu vàng. Màu vàng hoặc màu nhạt màu vàng lá do
nhiễm trùng ystemic xuất hiện ở các giai đoạn tillering; là con út
gỗ trở thành thống nhất nhạt màu vàng hoặc hiển thị một rộng màu vàng
tripe, và vi khuẩn được tìm thấy trong các gióng và Vương miện của
bị ảnh hưởng thân cây, nhưng không phải trong lá chính nó (Ou, 1985; Goto, 1992).
vi khuẩn lá streak của gạo (BLS)
X. oryzae pv. oryzicola là một bệnh lá xuất hiện ở bất kỳ
giai đoạn tăng trưởng của các máy chủ. Tế bào của X. oryzae pv. oryzicola nhập
thông qua các stomata và nhân trong các mô nhu mô của
lá. X. oryzae pv. lây nhiễm oryzicola chủ yếu là các nhu mô
của các tế bào của các lá, nhưng không phải là hệ thống. Ban đầu triệu chứng
là nhỏ ngâm nước, trong suốt interveinal sọc (hình 2),
đó có thể mọc dài ra và tối. Các sọc trong suốt
phân biệt lá streak tổn thương từ những người của X. oryzae pv.
oryzae được đục với ánh sáng. Vi khuẩn dịch tiết canbe quan sát như là hạt màu vàng nhỏ. Hẹp, dài, mờ
tổn thương có thể kết hợp lại, tạo thành lớn các bản vá lỗi, và bị
bị ảnh hưởng fields xuất hiện bị cháy. Nó là ở giai đoạn này lá khô héo,
chuyển màu nâu và cuối cùng chết, và bệnh có thể là difficult
để phân biệt từ vi khuẩn lá giống bọ xanh (Ou, 1985).
cô lập
có triệu chứng mẫu được xử lý cá nhân hay trong nhỏ
nhóm. Biện pháp phòng ngừa được thực hiện để tránh qua contaminations
khi thu thập các mẫu và trong quá trình khai thác.
các mẫu nên được xử lý càng sớm càng tốt sau khi
bộ sưu tập và bảo tồn tại 4-8° C cho đến khi sử dụng. Tươi chuẩn bị
chất chiết xuất từ mẫu là cần thiết cho một sự cô lập thành công. Một số
thủ tục đã được sử dụng trong sự cô lập của X. oryzae pv.
oryzae từ bộ phận của cây có triệu chứng và không có triệu chứng,
bao gồm các hạt. Hầu hết các thủ tục được mô tả cho các
sự cô lập của X. oryzae pv. oryzae từ nhà máy gạo, cũng có thể
áp dụng cho sự cô lập của X. oryzae pv. oryzicola. Tuy nhiên, nó
được biết rằng cả hai vi khuẩn phát triển chậm trên phương tiện isolating
và có thể được overgrown bởi chất gây ô nhiễm đang phát triển nhanh chóng. Thường những
chất gây ô nhiễm màu vàng màu sắc (ví dụ như Pantoea agglomerans
và Xanthomonas giống như vi khuẩn saprophytic) do đó làm cho
difficult các quan sát của các thuộc địa của các sinh vật mục tiêu và
Re thường trực quan đều ở thuộc địa hình Thái,
rowth, và màu sắc từ chủng của cả hai tác nhân gây bệnh. Nuôi
có thể thất bại từ giai đoạn nhiễm trùng do cạnh tranh
r được overgrown bởi saprophytic sinh vật và cũng có thể từ
eeds với mức thấp của inoculum hoặc theo các điều kiện xấu của
orage. Nếu các triệu chứng bệnh là điển hình nhưng cô lập là tiêu cực,
ông cô lập bước nên được lặp đi lặp lại.
irect mạ từ lá có triệu chứng và không có triệu chứng
ollected từ quấn
acterial lá giống bọ xanh trong khu vực ôn đới thông thường có thể
bserved trong phần sau của giai đoạn giường hạt giống (Ou, 1985).
ông vi khuẩn có thể được phát hiện từ trên một phần của nhiễm
aves trước khi triệu chứng xuất hiện (Goto, năm 1965; Misukami &
Wakimoto, 1969; Sakthivel et al., 2001). Tabei (1967) báo cáo
mũ symptomless gạo cây giống có thể thực hiện dịch hại.
sự cô lập của Xanthomonas từ chất liệu có triệu chứng là
referable và có thể được thực hiện bằng cách sử dụng chế phẩm Peptone Sucroza agar
PSA), chất dinh dưỡng canh nấm men trích xuất agar trung bình (NBY),
rowth yếu tố (GF) agar (Agarwal et al., năm 1989; Sakthivel et al.,
001). (Phụ lục 1). Các vi khuẩn cũng có thể được cô lập trên
utrient agar (NA) nhưng với một sự tăng trưởng rất chậm; chọn lọc bán
gar chất như modified XOS agar trung bình (mXOS)
Di et al., 1991; Gnanamanickam et al., 1994). X. oryzae pv.
ryzicola thuộc địa cũng bị cô lập trên modified Wakimoto
gar (Mew & Mistra, 1994) phát triển để phát hiện các X.
ryzae pv. oryzae, nhưng với những thiếu sót của sắt sunfat.
Bề mặt khử trùng với 70% rượu cho 15 s theo sau
wo để ba lần rửa với vô trùng nước được sử dụng cho sự cô lập
om quấn nhà máy. Bộ phận Hiển thị tươi triệu chứng thực vật và với
xudates được lựa chọn bất cứ khi nào có thể. Phần (2 mm ×
mm) từ mô bị nhiễm bệnh và tốt nhất là từ các tiến
ortion của các tổn thương được lựa chọn. Các dịch tiết có thể được xử lý
eparately trong 1 mL nước vô trùng. Phần hẹp của nhiễm
ssue được cắt bằng một con dao cạo tiệt trùng hoặc scalpels, đặt trong
thả vô trùng nước và được bảo hiểm với một phiếu bìa trước khi các
bservation dưới kính hiển vi hợp chất cho vi khuẩn
reaming, một dấu hiệu của Bắc