PleurographyA positive or negative

Pleurography
A positive or negative radiographic evaluation of the parietal and visceral pleural surfaces.
Indications
H Differentiate pleural and extrapleural masses from pul¬monary masses.
2. Further delineate a mass lesion in mediastinum or at heart base.
3. Diagnose pleural adhesions and obscure diaphragmatic hernias and tears.
Contraindications
1. Availability of less invasive and more diagnostic modali- .. .. ..ties (e.g., CT, ultrasound).
2. Inexperience with this procedure.
3. ' Debilitated or compromised animal.
4. Known sensitivity or allergic reaction to contrast media.
5. Barium is not used in this procedure.
Technique (pleurography)
1. Not a commonly performed procedure, largely replaced by ultrasonography and CT.
2. Make and evaluate survey radiographs of thorax.
3. General anesthesia is recommended but not required.
4. Contrast medium:
a. Iodinated contrast media (200-400mgl/mL), nonionic is preferred.
1) Doser -
a) Cat or small dog: 0.5-1.0mL/kg.
b) Large dog: 0.25—0.5 mL/kg.
b. Lidocaine commonly is mixed with the contrast agent (0.5-1 .OmL per lOmL of contrast medium).
1) Lidocaine is not needed if animal is anesthetized.
c. Gas can he used but is not recommended (carries increased risk to animal and is more difficult to
t; interpret).
1) Dose:
a) 50 mL for a small dog or a cat.
b) lOOmL for a medium dog.
c) 200mL for a large dog.
5. Exposure technique may need to be modified over survey radiographs.
a. Double exposure for positive contrast study.
b. Decrease exposure by half for negative contrast study.
6. Warm contrast medium to body temperature prior to administration.
7. Aseptically place an indwelling catheter into pleural space (prefill needle and extension set with contrast medium to avoid air bubbles).
8. Make a test injection (0.5 mL): if cough develops, reposi¬tion the catheter.
9. Slowly inject contrast solution into pleural cavity over a period of 20 to 30 seconds. 
a. STOP injection immediately if respiratory distress develops.
10. Gently roll animal several times to distribute contrast medium.
11. Make VD, DV, right and left lateral thoracic radiographs.
12. Contrast medium normally is absorbed via the pleura and lymphatics within 30 minutes.
Cardiovascular Angiography Selective angiography
A positive contrast radiographic evaluation of the cardiovas¬cular system.
Selective angiography is performed by advancing an intra¬vascular catheter to a point as close to a suspected lesion as possible and then injecting contrast medium under high pressure.
Specialized equipment is required, including custom cath¬eters, high pressure injector, rapid film recording device, and fluoroscopy.
Nonselective angiography
A positive contrast radiographic evaluation of the cardiovas¬cular system.
Indications
1. Echocardiography is unavailable.
2. Evaluate size and shape of cardiac chambers.
3. Aid in differentiating some types of feline cardiomyopathy.
4. Detect right to left shunts.
5. Identify cardiac masses (e.g., tumor, intracardiac thrombi).
6. Diagnose a large pericardial effusion.
7. Evaluate aorta, main pulmonary arteries, and cranial or caudal vena cava for displacement or occlusion caused by •thrombosis, embolus, mass, or stricture.
*
Contraindications
1. Expert echocardiography is available.
2. Serious respiratory or cardiac disease (e.g., heart failure, life threatening arrhythmia).
3. Infection involving cardiovascular or respiratory system.
4. Inadequate indication for this procedure.
5. Lack of experience with this procedure.
6. Known sensitivity or allergy to contrast media.
7. Barium is not used in this procedure.
Technique (nonselective angiography)
1. General anesthesia is recommended; however, sedation may be acceptable in some cases, depending on status of animal and indication for the study.
2. Make and evaluate survey thoracic radiographs.
3. Contrast medium:
a. Ionic or, nonionic iodinated contrast medium can be used (200-400mgl/mL).
b. Dose: 400mgl/kg.
1) Maximum volume per injection is 90 mL.
2) Maximum dose per patient is lOOOmgl/kg.
3) Contiast medium may be diluted with sterile saline or sterile water to create sufficient volume to opacify portions of cardiovascular system being studied.
• 4. Double exposure technique over survey radiographs.
5. Warm contrast medium to body temperature prior to administration.
6. Place indwelling 14- to 18-gauge catheter into a periph¬eral vein.
a. A cephalic or jugular vein is used to evaluate craniaf vena cava and heart.
b. A pelvic limb vein (saphenous or lateral metatarsal) is used to evaluate caudal vena cava.
7. Make a test injection and radiograph to ensure correct catheter placement.
8. Rapidly inject contrast medium into vein as a bolus (total injection time of 1-3 seconds).
9. Make a lateral radiograph immediately at end of injec¬tion, followed by serial radiographs every 1 to 3 seconds (make radiographs as quickly as cassettes can be exchanged, if cassettes are being used).
10. Use of a rapid film changer or cassette tunnel allows multiple radiographs to be made over a short period of time.
a. A cassette tunnel can be constructed from two wooden strips (2x2's) with a sheet of wood or plastic and using a push-stick to move cassettes through the tunnel.
11. Make additional injections of contrast medium if more radiographs are required to complete the study (total dose to animal not to exceed lOOOmgl/kg).
12. Reposition animal for orthogonal radiograph and make additional injections as needed (again, total dose to animal is not to exceed lOOOmgl/kg)

Kết quả (Việt) 2:

Pleurography
Một đánh giá chụp ảnh phóng xạ tích cực hay tiêu cực của các đỉnh và các bề mặt màng phổi tạng.
Chỉ
H Phân biệt màng phổi và khối extrapleural từ quần chúng pul¬monary.
2. Khoanh định thêm một tổn thương hàng loạt ở trung thất hoặc tại cơ sở trung tâm.
3. Chẩn đoán dính màng phổi và thoát vị cơ hoành che khuất và nước mắt.
Chống chỉ định
1. Sẵn có của modali- ít xâm lấn và chẩn đoán nhiều hơn .. .. ..ties (ví dụ, CT, siêu âm).
2. Thiếu kinh nghiệm với thủ tục này.
3. 'Suy nhược hoặc bị tổn hại động vật.
4. Được biết đến sự nhạy cảm hoặc dị ứng để tương phản phương tiện truyền thông.
5. Bari không được sử dụng trong quy trình này.
Kỹ thuật (pleurography)
1. Không phải là một thủ tục thường được thực hiện, thay thế phần lớn bằng siêu âm và CT.
2. Thực hiện và đánh giá khảo sát của X quang ngực.
3. Gây mê toàn thân được khuyến khích nhưng không bắt buộc.
4. Tương phản trung bình:
a. Phương tiện truyền thông Iodinated tương phản (200-400mgl / mL), không chứa ion được ưa thích.
1) Doser -
a) Cát hoặc con chó nhỏ: 0.5-1.0mL / kg.
B) con chó lớn: 0,25-0,5 mL / kg.
B. Lidocaine thường được trộn với các chất tương phản (0,5-1 .OmL mỗi lOmL vừa tương phản).
1) Lidocaine là không cần thiết nếu động vật được gây mê.
C. Gas anh ta có thể sử dụng nhưng không được khuyến cáo (thực tăng rủi ro đối với động vật và là khó khăn hơn để
t; giải thích).
1) Liều lượng:
a) 50 mL cho một con chó nhỏ hay một con mèo.
B) lOOmL cho một con chó trung bình.
C) 200ml cho một con chó lớn.
5. Kỹ thuật phơi sáng có thể cần phải được sửa đổi trên X quang khảo sát.
A. Tiếp xúc đôi cho nghiên cứu tương phản dương.
B. Giảm tiếp xúc với một nửa để nghiên cứu phản âm.
6. Vừa tương phản ấm áp với nhiệt độ cơ thể trước khi dùng.
7. Vô trùng đặt một ống thông trong lòng vào khoang màng phổi (Điền trước kim và mở rộng thiết lập với chất cản quang để tránh bọt khí).
8. Thực hiện một thử nghiệm tiêm (0,5 ml): nếu ho phát triển, reposi¬tion ống thông.
9. Từ từ bơm dung dịch tương phản vào khoang màng phổi trong khoảng thời gian từ 20 đến 30 giây. 
A. DỪNG tiêm ngay lập tức nếu suy hô hấp phát triển.
10. Nhẹ nhàng cuộn vật nhiều lần để phân phối vừa tương phản.
11. Hãy VD, ​​DV, chụp X quang lồng ngực bên phải và trái.
12. Vừa tương phản thường được hấp thu qua màng phổi và mạch bạch huyết trong vòng 30 phút.
Tim mạch Angiography Selective chụp động mạch
Một sự tương phản tích cực đánh giá X quang của hệ thống cardiovas¬cular.
Chụp động mạch chọn lọc được thực hiện bằng cách thúc đẩy một ống thông intra¬vascular đến một điểm gần như là một tổn thương bị nghi ngờ càng tốt và sau đó tiêm chất cản dưới áp lực cao.
thiết bị chuyên ngành là cần thiết, bao gồm cath¬eters tùy chỉnh, vòi phun áp suất cao, thiết bị ghi phim nhanh chóng, và huỳnh quang.
chụp động mạch không chuyên biệt
Một sự tương phản tích cực đánh giá X quang của hệ thống cardiovas¬cular.
Chỉ
1 . Siêu âm tim là không có.
2. Đánh giá kích thước và hình dạng của các buồng tim.
3. Hỗ trợ trong việc phân biệt một số loại bệnh cơ tim mèo.
4. Phát hiện quyền shunts trái.
5. Xác định khối lượng tim (ví dụ, khối u, trong tim huyết khối).
6. Chẩn đoán tràn dịch màng ngoài tim lớn.
7. Đánh giá động mạch chủ, động mạch phổi chính, và sọ hoặc đuôi tĩnh mạch chủ cho di dời hoặc tắc gây ra bởi • huyết khối, nghẽn mạch, khối lượng, hoặc hẹp.
*
Chống chỉ định
1. Siêu âm tim của chuyên gia là có sẵn.
2. Hô hấp nặng hoặc bệnh tim mạch (ví dụ, suy tim, rối loạn nhịp tim đe dọa tính mạng).
3. Nhiễm trùng liên quan đến hệ thống tim mạch hay hô hấp.
4. Chỉ đủ cho thủ tục này.
5. Thiếu kinh nghiệm với thủ tục này.
6. Được biết đến sự nhạy cảm hoặc dị ứng với phương tiện truyền thông tương phản.
7. Bari không được sử dụng trong quy trình này.
Kỹ thuật (chụp động mạch không chọn lọc)
1. Gây mê tổng quát được đề nghị; Tuy nhiên, thuốc an thần có thể được chấp nhận trong một số trường hợp, tùy thuộc vào tình trạng của động vật và chỉ cho nghiên cứu.
2. Thực hiện và đánh giá khảo sát X quang ngực.
3. Tương phản trung bình:
a. Ionic hay, vừa tương phản iodinated không ion có thể được sử dụng (200-400mgl / mL).
B. Liều lượng:. 400mgl / kg
1) khối lượng tối đa cho mỗi tiêm là 90 mL.
2) Liều tối đa cho mỗi bệnh nhân là lOOOmgl / kg.
3) Contiast trung bình có thể được pha loãng với nước muối vô trùng hoặc nước cất để tạo ra đủ khối lượng để opacify phần của hệ thống tim mạch được nghiên cứu.
• Kỹ thuật 4. tiếp đúp trên X quang khảo sát.
5. Vừa tương phản ấm áp với nhiệt độ cơ thể trước khi dùng.
6. Nơi cư ngụ 14 đến 18-gauge catheter vào tĩnh mạch periph¬eral.
A. Một mạch xoay hoặc tĩnh mạch cảnh được sử dụng để đánh giá craniaf tĩnh mạch chủ và tim.
B. Một tĩnh mạch chi chậu (xương bàn chân mạch hiển hoặc bên) được sử dụng để đánh giá đuôi tĩnh mạch chủ.
7. Thực hiện một tiêm thử nghiệm và X quang để đảm bảo vị trí ống thông đúng.
8. Nhanh chóng tiêm chất cản quang vào tĩnh mạch như một bolus (tổng thời gian tiêm 1-3 giây).
9. Thực hiện một X quang bên ngay lập tức vào cuối injec¬tion, tiếp theo là chụp X quang nối tiếp mỗi 1-3 giây (làm cho X quang nhanh như băng cassette có thể được trao đổi, nếu cassette đang được sử dụng).
10. Sử dụng thiết bị đổi phim hoặc cassette đường hầm nhanh chóng cho phép nhiều hình chụp X quang được thực hiện trong một khoảng thời gian ngắn.
A. Một đường hầm băng có thể được xây dựng từ hai dải gỗ (2x2) với một tấm gỗ hoặc nhựa và sử dụng một push-stick để di chuyển băng qua đường hầm.
11. Hãy tiêm bổ sung vừa tương phản nếu có nhiều hình chụp X quang được yêu cầu phải hoàn thành việc nghiên cứu (tổng liều cho động vật không quá lOOOmgl / kg).
12. Định vị lại động vật cho X quang trực giao và thực hiện tiêm bổ sung là cần thiết (một lần nữa, tổng liều dùng để chăn nuôi là không quá lOOOmgl / kg)