2.3. Fish quality assessment2.3.1.

2.3. Fish quality assessment

2.3.1. Biochemical quality
Raw material, precooked and canned samples in different medium were analyzed for various quality parameters. Moisture content was determined by drying a known amount of homogenized sample to constant weight in an oven at 105 ± 1 ○C for 16 h (AOAC, 2000, chap. 39). Crude protein content was determined by the Kjeldahl procedure for total nitrogen (AOAC, 2000, chap. 39). Crude fat was extracted with petroleum ether using AOAC method (2000). Ash content was determined by heating at 550 ± 2 ○C in a muffle furnace for 4e5 h
(AOAC, 2000, chap. 39). The energy value, expressed as kcal 100 g—1
1 for fat

chilled room at 1e2 ○C overnight. After de-skinning, fishes were cut centrally into two halves along the back bone and red meat was separated manually. Only light meat was used for canning after cut- ting the meat into 3.0 cm thick pieces. About 140 g meat was packed into washed and cleaned tin-free-steel (TFS) cans. Around 0.5 ± 0.1 g of salt was added to provide taste to the finished product. The cans were divided into three batches for filling three different vegetable oils viz., sunflower oil, groundnut oil and coconut oil. Five cans from each batch were selected for recording the temperature in the cans at regular intervals using thermocouple glands (Model No. GKJ 13009

edible part, was estimated using factors 9.02 and 4.27 kcal g—
and protein, respectively (FAO, 1989). Total volatile base nitrogen (TVB-N) and trimethylamine nitrogen (TMA-N) analysis was carried out as per the method proposed by Conway (1962). Oxidation stability of the sample was assessed as thiobarbituric acid (TBA) value spec- trophotometrically by the method of Tarladgis, Watts, and Younathan (1960). Hydrolytic rancidity was measured as free fatty acid (FFA) value as per AOCS (1989).

2.3.2. Histamine content determination

C042, Ellab Co., Rødovre, Denmark). Thermocouple probes (Model

Histamine content was determined as per

O€ zogul, Taylor,

No. SSA 12040 G700 TS, Ellab Co., Rødovre, Denmark) were fitted into Quantick, and Ozogul (2002). For histamine analysis, fish muscle



(5 g) was transferred to a centrifuge tube and 25 ml 6% TCA was added and homogenized in a laboratory homogenizer (ART modern Labortechnik, Zienkener Str., Muellheim, Germany) at 0 ○C for 3 min. The homogenized sample was centrifuged at 12,000 rpm for 10 min at 4 ○C and filtered through Whatman No. 1 filter paper. The aliquot was made up to 25 ml using 6% TCA and stored below —20 ○C until injection into the HPLC (Merck Hitachi Li Chrome with L-7100 quaternary gradient pump, L-7400 UV de- tector, Merck Ltd., Poole, Dorset, UK) after derivatization as
described by O€ zogul et al. (2002). For derivatization of standard
amine solution and fish sample, 50 ml and 2 ml was used respec- tively. One millilitre of 2 M sodium hydroxide was added, followed by 1 ml benzoyl chloride (2% in acetonitrile), and mixed well on a vortex mixer for 1 min. The reaction mixture was left at room temperature (25 ○C) for 30 min. The benzoylation was stopped by adding 2 ml of saturated sodium chloride solution and the solution was extracted two times with 2 ml of diethyl ether. The upper organic layer was transferred into a clean test tube after mixing and evaporated to dryness in a stream of nitrogen. The residue was dissolved in 500 ml of acetonitrile and stored at —20 ○C until use and 20 ml was injected into the HPLC. The column used was Li-Chrome
CART® 250-4 C18 RP of size 250 × 4 mm (length × dia) with pore
size of 5 mm. Chromatographic separation was done by continuous gradient elution with acetonitrile and HPLC grade water. Initially the solvents were maintained at 50:50 ratio (acetonitrile:HPLC grade water), which changed gradually to 10:90 ratio (acetonitrile: HPLC grade water) on 15th minute and returned to the original ratio on 22nd minute. The pressure was maintained between 1300 and 1500 psi throughout the separation period. Chromatography Data Station Software, HPLC System Management (HSM) was used in the study to monitor the data obtained. The peaks obtained for the sample injected were compared with the standard histamine peak to obtain the concentration in the sample.

Kết quả (Việt) 1:

2.3. cá chất lượng đánh giá2.3.1. sinh hóa chất lượngNguyên liệu, precooked và đóng hộp mẫu trong phương tiện truyền thông khác nhau được phân tích cho thông số chất lượng khác nhau. Độ ẩm đã được xác định bởi làm khô một số lượng được biết đến của homogenized mẫu để các trọng lượng liên tục trong một lò ở 105 ± 1 ○C cho 16 h (AOAC, 2000, chap 39). Thô protein nội dung đã được xác định bởi các thủ tục Kjeldahl cho tất cả nitơ (AOAC, 2000, chap 39). Chất béo thô được chiết xuất với ether dầu khí bằng cách sử dụng phương pháp AOAC (2000). Ash nội dung đã được xác định bởi hệ thống sưởi tại 550 ± 2 ○C trong một lò muffle cho 4e5 h (AOAC, 2000, chap 39). Giá trị năng lượng, biểu thị dưới dạng kcal 100 g-11 cho chất béo Phòng ướp lạnh tại 1e2 ○C qua đêm. Sau khi de-skinning, fishes bị cắt trực thuộc Trung ương thành hai nửa dọc theo lưng xương và thịt đỏ được tách ra bằng tay. Chỉ nhẹ thịt đã được sử dụng cho đóng hộp sau khi cắt-ting thịt thành miếng dày 3.0 cm. Khoảng 140 g thịt đã được đóng gói vào rửa và làm sạch điền-miễn phí-thép (TFS) lon. Quanh cách 0.5 ± 0.1 g muối đã được bổ sung để cung cấp hương vị để sản phẩm finished. Các lon được chia thành ba lô cho filling ba loại dầu thực vật khác nhau tức, sunflower dầu, cho dầu và dầu dừa. Lon năm từ mỗi lô đã được lựa chọn để ghi lại nhiệt độ trong lon đặn sử dụng độ tuyến (mẫu số GKJ 13009 ăn một phần, được ước tính sử dụng yếu tố 9,02 và 4,27 kcal g —và protein, tương ứng (FAO, năm 1989). Tổng số dễ bay hơi cơ sở nitơ (TVB-N) và trimethylamine nitơ (TMA-N) phân tích được thực hiện theo các phương pháp được đề xuất bởi Conway (1962). Quá trình oxy hóa ổn định của mẫu được đánh giá là thiobarbituric axit (TBA) giá trị spec-trophotometrically theo phương pháp Tarladgis, Watts, và Younathan (1960). Hydrolytic rancidity được đo là miễn phí béo acid (FFA) giá trị theo AOCS (1989).2.3.2. histamine xác định nội dung C042, Ellab công, Rødovre, Đan Mạch). Độ đầu dò (mô hình Histamine nội dung đã được xác định theo O€ zogul, Taylor, Không. SSA 12040 G700 TS, Ellab công, Rødovre, Đan Mạch) đã là fitted vào Quantick, và Ozogul (2002). Để phân tích histamine, cơ bắp fish (5gr) được chuyển sang một máy ly tâm ống và 25 ml 6% TCA được thêm vào và homogenized trong một homogenizer phòng thí nghiệm (nghệ thuật hiện đại Labortechnik, Zienkener Str., Muellheim, Đức) tại 0 ○C trong 3 phút. Mẫu homogenized được ly tại 12.000 vòng/phút cho 10 phút tại 4 ○C và filtered thông qua giấy tráng nhựa Whatman No. 1 filter. Aliquot đã được thực hiện bằng cách sử dụng 6% lên đến 25 ml TCA và được lưu trữ dưới đây-20 ○C cho đến khi tiêm vào hệ HPLC (Merck Hitachi Li Chrome với L-7100 Đệ tứ gradient bơm, L-7400 UV de-tector, Merck Ltd., Poole, Dorset, Vương Quốc Anh) sau khi derivatization nhưMô tả bởi O€ zogul et al. (2002). Cho derivatization tiêu chuẩnmẫu giải pháp và fish amin, 50 ml và 2 ml là respec-cách được sử dụng. Một millilitre 2 M natri hydroxit được thêm, theo sau là 1 ml benzoyl clorua (2% trong acetonitrile), và hỗn hợp tốt trên một máy trộn xoáy cho 1 phút. Hỗn hợp phản ứng còn lại ở nhiệt độ phòng (25 ○C) cho 30 phút. Benzoylation đã dừng lại bằng cách thêm 2 ml dung dịch clorua natri bão hòa và các giải pháp được chiết xuất hai lần với 2 ml diethyl ête. Lớp hữu cơ trên đã được chuyển thành một ống nghiệm sạch sau khi trộn và bốc hơi khô trong một dòng của nitơ. Các dư lượng được hòa tan trong 500 ml acetonitrile và được lưu trữ tại-20 ○C cho đến khi sử dụng và 20 ml đã được tiêm vào hệ HPLC. Cột được sử dụng là Li-ChromeGiỏ hàng ® 250-4 C18 RP kích thước 250 x 4 mm (dài × dia) với lỗ chân lôngKích thước của 5 mm. Chromatographic tách được thực hiện bởi liên tục gradient elution với acetonitrile và hệ HPLC lớp nước. Ban đầu các dung môi được duy trì ở tỉ lệ 50: 50 (acetonitrile:HPLC lớp nước), mà thay đổi dần dần với tỷ lệ 10:90 (acetonitrile: HPLC cấp nước) trên 15 phút và quay trở về tỷ lệ ban đầu trên 22 phút. Áp lực được duy trì trong khoảng 1300 và 1500 psi trong suốt thời gian ly thân. Sắc kí dữ liệu phần mềm Station, HPLC hệ thống quản lý (HSM) được sử dụng trong nghiên cứu để giám sát các dữ liệu thu được. Các đỉnh núi thu được cho mẫu tiêm được so sánh với đỉnh tác dụng tiêu chuẩn để có được tập trung trong mẫu.

Kết quả (Việt) 2:

2.3. Cá chất lượng đánh giá 2.3.1. Sinh hóa chất lượng nguyên liệu, mẫu precooked và đồ hộp ở trung khác nhau được phân tích các thông số chất lượng khác nhau. Độ ẩm được xác định bằng cách làm khô một khoản tiền gọi của mẫu đồng nhất với trọng lượng không đổi trong một lò nướng ở 105 ± 1 ○ C trong 16 h (AOAC, 2000, chap. 39). Hàm lượng protein thô được xác định bởi các thủ tục Kjeldahl cho tổng nitơ (AOAC, 2000, chap. 39). Chất béo thô được chiết với ether dầu có sử dụng phương pháp AOAC (2000). Hàm lượng tro được xác định bằng cách làm nóng ở 550 ± 2 ○ C trong một fl e lò MUF cho 4e5 h (AOAC, 2000, chap. 39). Các giá trị năng lượng, thể hiện như kcal 100 g-1 1 cho chất béo lạnh phòng tại 1e2 ○ C qua đêm. Sau khi de-skinning, shes fi được cắt trực thuộc Trung ương thành hai nửa dọc theo xương sống và thịt đỏ đã được tách bằng tay. Chỉ có thịt ánh sáng được sử dụng cho đóng hộp sau khi đồ cắt thịt ra thành 3,0 cm miếng dày. Khoảng 140 g thịt được đóng gói vào tin-free-thép (TFS) lon rửa và làm sạch. Khoảng 0,5 ± 0,1 g muối đã được thêm vào để cung cấp hương vị cho sản phẩm fi nished. Các lon được chia thành ba lô cho fi lling ba loại dầu thực vật khác nhau viz., Mặt trời fl ower dầu, dầu lạc và dầu dừa. Năm lon từ mỗi lô hàng đã được lựa chọn để ghi lại nhiệt độ trong thùng đều đặn sử dụng cặp nhiệt hạch (Model No. GKJ 13.009 phần ăn được, được ước lượng bằng các yếu tố 9,02 và 4,27 kcal g- và protein, tương ứng (FAO, 1989). Tổng số dễ bay hơi cơ sở nitơ (TVB-N) và nitơ trimethylamine (TMA-N) phân tích được thực hiện theo phương pháp của Conway đề xuất (1962). ổn định oxy hóa của mẫu được đánh giá là axit thiobarbituric (TBA) giá trị bằng quang phổ trophotometrically bởi phương pháp Tarladgis, Watts, và Younathan (1960). ôi thủy phân được đo như axit béo tự do (FFA) giá trị theo AOCS (1989). 2.3.2. Histamine nội dung quyết C042, ELLAB Co., Rødovre, Đan Mạch). Đầu dò nhiệt ngẫu (Model nội dung Histamine được xác định theo O € zogul, Taylor, số SSA 12.040 G700 TS, ELLAB Co., Rødovre, Đan Mạch) là fi tted vào Quantick, và Ozogul (2002). Đối với phân tích histamine, fi sh cơ bắp (5 g) được chuyển sang một ống ly tâm và 25 ml 6% TCA đã được bổ sung và đồng nhất trong một đồng hóa trong phòng thí nghiệm (ART Labortechnik hiện đại, Zienkener Str., Muellheim, Đức) tại 0 ○ C trong 3 phút . Các mẫu đồng nhất được ly tâm ở 12.000 rpm trong 10 phút ở 4 ○ C và fi ltered qua Whatman số 1 fi lter giấy. Các dịch chất đã được thực hiện lên đến 25 ml dung dịch bằng 6% TCA và lưu trữ dưới -20 ○ C cho đến khi tiêm vào HPLC (Merck Hitachi Li Chrome với-7100 L bơm bậc bốn gradient, L-7400 de- UV tector, Merck Ltd., Poole , Dorset, Anh) sau khi dẫn suất như được mô tả bởi O € zogul et al. (2002). Đối với dẫn suất của tiêu chuẩn giải pháp amin và mẫu fi sh, 50 ml và 2 ml được sử dụng người nhiễm. Một ml 2 M sodium hydroxide được thêm vào, theo sau là 1 ml benzoyl clorua (2% trong acetonitrile), và trộn đều trên một máy trộn xoáy trong 1 phút. Hỗn hợp phản ứng được để ở nhiệt độ phòng (25 ○ C) trong 30 phút. Các benzoylation đã được ngừng lại bằng cách thêm 2 ml dung dịch natri clorua bão hòa và dung dịch được chiết xuất hai lần với 2 ml diethyl ether. Các lớp hữu cơ trên đã được chuyển vào một ống nghiệm sạch sẽ sau khi trộn và bốc hơi đến khô trong một dòng khí nitơ. Phần dư được hòa tan trong 500 ml acetonitril và bảo quản ở -20 ○ C cho đến khi sử dụng và 20 ml đã được tiêm vào HPLC. Các cột được sử dụng là Li-Chrome CART® 250-4 C18 RP kích thước 250 × 4 mm (dài x dia) với lỗ chân lông kích thước 5 mm. Tách sắc ký được thực hiện bằng cách liên tục Gradient rửa giải với nước acetonitrile và HPLC lớp. Ban đầu các dung môi được duy trì ở tỷ lệ 50:50 (acetonitrile: nước cấp HPLC), mà thay đổi dần dần để tỷ lệ 10:90 (acetonitrile: nước cấp HPLC) trên phút thứ 15 và trở lại với tỷ lệ ban đầu vào phút 22. Áp lực đã được duy trì từ năm 1300 đến 1500 psi trong suốt thời gian ly thân. Sắc ký dữ liệu Trạm Phần mềm, Hệ thống quản lý HPLC (HSM) đã được sử dụng trong nghiên cứu để theo dõi các dữ liệu thu được. Các đỉnh núi thu được cho các mẫu tiêm được so sánh với đỉnh cao histamine tiêu chuẩn để có được nồng trong mẫu.