Prior to analysis the sample should

Prior to analysis the sample should first be homogenised.
This is achieved using a combination of horizontally rolling
and vertically turning the sample bottle as gently as
possible to prevent the breakup of colonies and the accumulation
of bubbles;
2 From a well mixed sample, 1 mL is removed using a pipette.
The pipette should have a wide opening that does
not restrict the movement of larger phytoplankton species
(such as Noctiluca scintillans, Ceratium species). This
is especially important when using a 1 mL pipette with
removable tips, the end of the tip should be cut off to
widen the opening;
3 The cover glass should be placed carefully onto the counting
slide, perpendicular to the long axis of the slide, so
one corner is left open for filling and another for the escape
of air;
4 The sample aliquot is then dispensed into the counting
cell (Fig. 1a – f):
5 Slowly swing the cover glass so that it completely covers
the sample. Careful alignment of the cover glass will prevent
air bubbles from being introduced into the sample
and will ensure that the sample holds its complete volume.
If a bubble develops, refill the counting cell.
6 Preserved samples should be left to settle for 15 minutes
before enumeration;
7 The sample is then examined using a compound microscope.
The slide should first be scanned under low magnification
to estimate the concentration of cells. Using
this information a counting strategy is decided upon as
to whether the whole slide or a noted fraction is to be
counted;
8 If the concentration of phytoplankton in the SedgewickRafter
slide is too dense and the cells are overlapping thus
hindering identification, a dilution step should be performed
using filtered seawater for marine samples;
9 After analysis is completed the slide is washed and cleaned
between samples to prevent cross-contamination. A
pure detergent like soap is recommended

Kết quả (Việt) 1:

Trước khi phân tích các mẫu đầu tiên nên được homogenised.Điều này đạt được bằng cách sử dụng một sự kết hợp theo chiều ngang cánvà theo chiều dọc biến mẫu chai như nhẹ nhàng nhưcó thể để ngăn chặn sự tan rã của thuộc địa và tích lũybong bóng;2 từ một mẫu tốt hỗn hợp, 1 mL là loại bỏ bằng cách sử dụng một pipette.Pipette là cần phải có một mở rộng nàokhông hạn chế sự chuyển động của loài sinh lớn(chẳng hạn như Noctiluca scintillans, Ceratium loài). Điều nàylà đặc biệt quan trọng khi sử dụng một pipette 1 mL vớiMẹo lưu động, sự kết thúc của mũi nên được cắt bỏ đểmở rộng mở;3 nắp kính nên được đặt cẩn thận lên đếm cáctrượt, vuông góc với trục dài của slide, vì vậymột góc còn lại mở cho điền và một cho thoátkhông khí;4 mẫu aliquot sau đó là dispensed vào các đếmdi động (hình 1a-f):5 từ từ xoay quanh kính bao vì vậy mà nó hoàn toàn bao gồmmẫu. Chỉnh cẩn thận của thủy tinh nắp sẽ ngăn chặnbong bóng khí từ được giới thiệu vào các mẫuvà sẽ đảm bảo rằng các mẫu nắm giữ khối lượng hoàn thành của nó.Nếu một bong bóng phát triển, nạp tiền di động đếm.6 Preserved mẫu nên được trái để giải quyết trong 15 phúttrước khi điều tra;7 mẫu sau đó được kiểm tra bằng cách sử dụng một kính hiển vi chất.Slide đầu tiên nên được quét dưới thấp phóng đạiđể ước tính nồng độ của các tế bào. Bằng cách sử dụngthông tin này là một chiến lược đếm quyết định nhưcho dù trình bày toàn bộ hoặc một phần ghi nhận là đượctính;8 nếu nồng độ sinh trong SedgewickRafterslide là quá dày đặc và các tế bào chồng lên nhau như vậycản trở nhận dạng, một bước pha loãng nên được thực hiệnsử dụng lọc nước biển cho mẫu biển;9 sau khi phân tích xong các slide rửa và làm sạchgiữa các mẫu để ngăn chặn ô nhiễm chéo. Atinh khiết chất tẩy rửa như xà phòng được khuyến khích

Kết quả (Việt) 2:

Trước khi phân tích mẫu đầu tiên nên được đồng nhất.
Điều này đạt được bằng cách kết hợp theo chiều ngang lăn
dọc và chiều quay chai mẫu nhẹ nhàng nhất
có thể để ngăn chặn sự tan rã của các thuộc địa và sự tích tụ
của các bong bóng,
2 Từ một mẫu cũng hỗn hợp, 1 mL được loại bỏ bằng một pipette.
các pipette nên có một mở rộng mà
không hạn chế sự di chuyển của các loài thực vật phù du lớn hơn
(chẳng hạn như Noctiluca scintillans, loài Ceratium). Điều này
là đặc biệt quan trọng khi sử dụng 1 mL pipette với
lời khuyên di động, kết thúc của đầu, cần cắt để
mở rộng khai mạc;
3 kính che nên được đặt cẩn thận lên đếm
chiếu, vuông góc với trục dài của slide, nên
một góc được mở để làm đầy và một cho thoát
khí;
sau đó 4 các dịch chất mẫu được phân phối vào đếm
tế bào (Hình 1a - f.):
5 Từ từ xoay kính bọc ngoài để nó hoàn toàn bao gồm
các mẫu. Chỉnh cẩn thận của kính nắp sẽ ngăn chặn
bong bóng khí từ khi được giới thiệu vào mẫu
và sẽ đảm bảo rằng mẫu nắm giữ khối lượng hoàn thành của nó.
Nếu một bong bóng phát triển, nạp các tế bào đếm.
6 mẫu bảo quản nên để giải quyết cho 15 phút
trước khi liệt kê ;
. 7 các mẫu sau đó được kiểm tra bằng kính hiển vi
slide đầu tiên nên được quét dưới độ phóng đại thấp
để ước tính nồng độ của các tế bào. Sử dụng
thông tin này là một chiến lược đếm được quyết định là
để cho dù toàn bộ slide hoặc một phần lưu ý là để được
tính;
8 Nếu nồng độ của thực vật phù du trong SedgewickRafter
trượt là quá dày đặc và các tế bào được chồng chéo do đó
cản trở việc xác định, một bước pha loãng nên được thực hiện
sử dụng nước biển được lọc cho các mẫu biển;
9 Sau khi phân tích hoàn tất các slide được rửa sạch và làm sạch
giữa các mẫu để ngăn ngừa lây nhiễm chéo. Một
chất tẩy rửa như xà phòng nguyên chất được khuyến khích