Method 2: Semisolid motility media 

Method 2: Semisolid motility media are available 
commercially. Tetrazolium salts can be added to 
these media to aid in the detection of motility. 
Before autoclaving the motility medium, 0.05 g of 
2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC) is added 
per litre of medium. Tetrazolium salts are colourless 
but as the bacterium grows the dye is incorporated 
into the bacterial cells where it is reduced to an 
insoluble red pigment, formazan. The red colour 
forms only in the area of medium where the 
bacterium is growing (Fig. 2.37).
■  Motility media are prepared in test tubes. Two 
tubes of the medium are stab-inoculated using a 
straight wire. One tube is incubated at room 
temperature and the other at 37°C. The tubes are 
examined for motility after 24 and 48 hours. 
Motile bacteria migrate through the semisolid 
medium which becomes turbid. If TTC has been 
incorporated into the medium, the motility is 
demonstrated by a red colour throughout the 
agar. The growth of a non-motile bacterium is 
confined to the stab line.
•  Sulphide indole motility (SIM) medium can be used 
to detect motility and will also indicate indole and 
hydrogen sulphide production.
Oxidation-fermentation (O-F) test
This  test  is used  to determine  the oxidative or  fermenta-
tive metabolism of a carbohydrate by the bacterium. The 
medium  is  semisolid  and  usually  contains  glucose  as   
the test sugar and bromothymol blue as the pH indicator. 
The uninoculated medium (pH 7.1) is green and if acid is 
produced by the bacterium, following metabolism of the 
glucose,  the medium becomes  yellow  (pH 6.0). Bacteria 
that can metabolize glucose under either aerobic or anaer-
obic conditions are  facultative anaerobes and  in  this  test 
are  said  to  be  fermentative.  The  aerobes  require  atmos-
pheric oxygen for growth and metabolism and are called 
oxidative.  Some  bacteria  are  unreactive  in  the  conven-
tional  O-F  medium,  either  because  they  are  unable  to   
grow in the basal medium or because they cannot utilize 
glucose.
Two tubes of the O-F medium are heated in a beaker of 
boiling water immediately before use to drive off any dis-
solved  oxygen.  The  tubes  are  then  cooled  rapidly  under 
cold  running water. Both  tubes  are  stab  inoculated with 
the bacterium. A  layer of sterile paraffin oil  is  layered on 
top of one of the tubes (sealed tube) to a depth of about 
1 cm.  The  inoculated  tubes  are  incubated  at  37°C  and 
examined  in 24 hours  and  then daily  for up  to 14 days 
(Fig. 2.38).
The conventional O-F medium  is most  suitable  for non-
fastidious  Gram-negative  bacteria. Modifications  can  be 
made to the medium to test for:
•  Fastidious bacteria unable to grow in the medium. 
In this case the basal medium can be enriched with 
2% serum and/or 0.1% yeast extract.
•  Staphylococci and micrococci. The formula for the 
staphylococcal O-F test medium is:
■  Pancreatic digest of casein (tryptone) 10.0 g
■  Yeast extract 1.0 g
■  Agar 2.0 g
■  Bromocresol purple 0.001 g
■  Distilled water
■  1000 mL
The  ingredients  are  heated  gently  to  dissolve  them  and 
autoclaved  at  121°C  for  15  minutes.  The  medium  is 
cooled to 50°C and sterile solutions of glucose and man-
nitol  are  added  to  a  final  concentration  of  1%  for  each 
sugar. Bromocresol purple is purple at pH 6.8 and yellow 
at pH 5.2.
Figures 2.39 and 2.40 give the primary identification of 
Gram-positive and Gram-negative bacteria, respectively, to 
a  generic  level  on  the  basis  of  the  previously  described 
tests.

Kết quả (Việt) 1:

Phương pháp 2: Pho motility phương tiện truyền thông có sẵn về mặt thương mại. Các muối Tetrazolium có thể được thêm vào Các phương tiện truyền thông để hỗ trợ trong việc phát hiện của motility. Trước khi khử trùng vừa motility, 0.05 g 2,3,5-triphenyltetrazolium clorua (TTC) được thêm vào một lít nước trung bình. Các muối Tetrazolium là không màu nhưng khi vi khuẩn phát triển thuốc nhuộm được tích hợp vào các tế bào vi khuẩn, nơi nó giảm đến một sắc tố màu đỏ không hòa tan, formazan. Màu đỏ biểu mẫu chỉ trong khu vực của phương tiện mà các vi khuẩn đang phát triển (hình 2,37).■ Motility media được chuẩn bị trong ống nghiệm. Hai ống của các phương tiện đang đâm-tiêm chủng bằng cách sử dụng một dây dẫn thẳng. Một trong những ống ủ tại Phòng nhiệt độ và khác ở 37° C. Các ống kiểm tra xem motility sau 24 đến 48 giờ. Giống vi khuẩn di chuyển qua pho phương tiện mà trở nên đục. Nếu TTC đã tích hợp vào các phương tiện, motility là chứng minh bởi một màu đỏ trong suốt các Agar. Sự phát triển của một loại vi khuẩn không giống là hạn chế dòng đâm.• Sulphide indole motility (SIM) vừa có thể sử dụng để phát hiện các motility và cũng sẽ cho thấy indole và hydro sulphide sản xuất.Kiểm tra trạng thái ôxi hóa lên men (O-F)Thử nghiệm này được sử dụng để xác định các oxy hóa hoặc fermenta -hoạt động cùng trao đổi chất carbohydrate bởi vi khuẩn. Các vừa là pho và thường chứa glucose như thử nghiệm đường và bromothymol màu xanh như chỉ số pH. Trung bình uninoculated (pH 7.1) là màu xanh lá cây và nếu axit được sản xuất bởi vi khuẩn, sau sự trao đổi chất của các glucose, vừa trở thành màu vàng (pH 6.0). Vi khuẩn mà có thể chuyển hóa glucose dưới hoặc là aerobic hay anaer -obic tiết là dạng kháng và trong kiểm tra được gọi là fermentative. Các aerobes yêu cầu atmos-pheric oxy cho sự tăng trưởng và sự trao đổi chất và được gọi là oxy hóa. Một số vi khuẩn được trơ trong conven-Trung bình tế O-F, hoặc là bởi vì họ là không thể phát triển trong môi trường cơ sở hoặc vì họ không thể sử dụng glucose.Hai ống vừa O-F được đun nóng trong một cốc của đun sôi nước ngay lập tức trước khi sử dụng để lái xe ra khỏi bất kỳ dis-giải quyết oxy. Các ống sau đó được làm lạnh nhanh chóng dưới lạnh nước sinh hoạt. Cả hai ống là đâm tiêm chủng với vi khuẩn. Một lớp dầu parafin vô trùng lớp trên Các đầu trang của một trong những ống (ống kín) độ sâu khoảng 1 cm. Ống inoculated được ủ ở 37° C và kiểm tra trong 24 giờ và sau đó hàng ngày đến 14 ngày (Hình 2,38).Các phương tiện thông thường của O-F là thích hợp nhất cho khôngvi khuẩn Gram âm khó tính. Sửa đổi có thể thực hiện cho các phương tiện để kiểm tra:• Khó tính vi khuẩn không thể phát triển trong các phương tiện. Trong trường hợp này các phương tiện cơ bản có thể được làm giàu với nấm men huyết thanh và/hoặc 0,1% 2% trích xuất.• Staphylococci và micrococci. Công thức cho các THC O-F thử nghiệm phương tiện truyền thông là:■ tiêu hóa tuyến tụy của casein (tryptone) 10.0 g■ chiết xuất nấm men 1.0 g■ Agar 2.0 g■ Bromocresol tím 0,001 g■ Distilled water■ 1000 mLCác thành phần được đun nóng nhẹ nhàng để hòa tan chúng và autoclaved 121° c trong 15 phút. Trung bình là làm lạnh 50° C và các giải pháp vô trùng của glucose và người đàn ông-nitol được thêm vào cuối cùng nồng độ 1% cho mỗi đường. Bromocresol màu tím là màu tím lúc vàng và độ pH 6.8 ở pH 5.2.Con số 2,39 và 2,40 cho chính xác định Vi khuẩn Gram dương và Gram âm, tương ứng, để một mức độ chung trên cơ sở mô tả trước đó Các xét nghiệm.

Kết quả (Việt) 2:

Phương pháp 2: phương tiện truyền thông vận động của nửa cứng có sẵn 
thương mại. Muối tetrazolium có thể được thêm vào 
các phương tiện truyền thông để hỗ trợ trong việc phát hiện các khả năng vận động. 
Trước khi hấp khử trùng môi nhu động, 0,05 g 
2,3,5-triphenyltetrazolium clorua (TTC) được thêm vào 
mỗi lít trung bình. Muối tetrazolium không màu 
nhưng như vi khuẩn phát triển thuốc nhuộm được đưa 
vào tế bào vi khuẩn, nơi nó được giảm đến một 
sắc tố màu đỏ không tan, formazan. Màu đỏ 
hình thức duy nhất trong khu vực trung nơi 
vi khuẩn đang phát triển (Hình. 2.37).
■ phương tiện truyền thông Vận động được chuẩn bị trong ống nghiệm. Hai 
ống của môi trường là đâm-tiêm sử dụng một 
dây thẳng. Một ống được ủ ở phòng 
nhiệt độ và khác ở 37 ° C. Các ống này được 
kiểm tra về khả năng vận động sau 24 và 48 giờ. 
Vi khuẩn Bào di chuyển qua nửa rắn 
trung bình mà trở nên đục. Nếu TTC đã được 
tích hợp vào các trung bình, khả năng vận động được 
thể hiện bằng một màu đỏ trong suốt 
thạch. Sự phát triển của một loại vi khuẩn không di chuyển được được 
giới hạn trong các dòng đâm.
• sulphide nhu động indole (SIM) trung bình có thể được sử dụng 
để phát hiện khả năng vận động và cũng sẽ chỉ ra indole và 
hydrogen sulphide sản xuất.
Quá trình oxy hóa lên men (OF) kiểm tra
thử nghiệm này được sử dụng để xác định oxy hóa hoặc fermenta-
chuyển hóa chính kịp thời của một carbohydrate bởi vi khuẩn. Các 
phương tiện là nửa rắn và thường có chứa glucose như   
đường thử nghiệm và bromothymol xanh là chỉ số pH. 
Các phương tiện đối chứng (pH 7.1) là màu xanh lá cây và nếu axit được 
sản xuất bởi vi khuẩn, sau quá trình chuyển hóa của 
glucose, vừa trở thành màu vàng (pH 6.0). Vi khuẩn 
có thể chuyển hóa glucose theo một trong hai hiếu khí hoặc anaer-
điều kiện obic là vi khuẩn kỵ khí tuỳ ý và trong thử nghiệm này 
được cho là lên men. Các yêu cầu hiếu khí quyển với tính dễ
oxy pheric cho sự tăng trưởng và sự trao đổi chất và được gọi là 
oxy hóa. Một số vi khuẩn là không phản ứng trong các công ước
quốc HÀNH trung bình, hoặc vì họ không thể   
phát triển trong môi trường cơ bản hoặc bởi vì họ không thể sử dụng 
glucose.
Hai ống OF vừa được đun nóng trong cốc của 
nước sôi ngay lập tức trước khi sử dụng để lái xe off bất kỳ dis-
giải quyết oxy. Các ống này sau đó được làm lạnh nhanh dưới 
nước lạnh. Cả hai ống này được đâm tiêm 
vi khuẩn. Một lớp dầu parafin vô trùng được xếp lớp trên 
đỉnh của một trong các ống (ống kín) đến độ sâu khoảng 
1 cm. Các ống tiêm được ủ ở 37 ° C và 
kiểm tra trong 24 giờ và sau đó mỗi ngày, trong 14 ngày 
(Hình. 2.38).
Các thông thường HÀNH vừa là phù hợp nhất cho không
vi khuẩn Gram âm khó tính. Sửa đổi có thể được 
thực hiện cho các phương tiện để kiểm tra:
. • vi khuẩn khó tính không thể phát triển trong môi trường 
Trong trường hợp này, vừa cơ bản có thể được làm giàu với 
2% huyết thanh và / hoặc 0,1% chiết xuất nấm men.
• Staphylococci và micrococci. Công thức cho 
tụ cầu HÀNH trung kiểm tra là:
■ tụy tiêu hóa của casein (tryptone) 10,0 g
■ men chiết xuất 1,0 g
■ Agar 2,0 g
■ đỏ tía bromocresol 0,001 g
■ nước cất
■ 1000 ml
Các thành phần được đun nóng nhẹ nhàng để hòa tan chúng và 
hấp ở 121 ° C trong 15 phút. Môi trường được 
làm lạnh đến 50 ° C và giải pháp vô trùng của glucose và lý
nitol được thêm vào một nồng độ cuối cùng của 1% cho mỗi 
đường. Đỏ tía bromocresol là màu tím ở pH 6.8 và vàng 
ở pH 5.2.
Hình 2.39 và 2.40 cho việc xác định chủ yếu của 
vi khuẩn Gram dương và Gram âm, tương ứng các 
mức chung trên cơ sở các mô tả trước đây 
kiểm tra.