2.1 Method 1. Prepare a solution of

2.1 Method
1. Prepare a solution of agarose in electrophoresis buffer at a concentration appropriate for separating the particular size fragments expected in the DNA sample(s). 2. If using a glass bottle, loose the cap. Heat the mixture in a boiling-water bath or a microwave oven until the agarose dissolves. 3. Use insulated gloves to transfer the flask into a water bath at 55°C. When the melted gel has cooled, add ethidium bromide to a final concentration of 0.5 μg/ml. Mix the gel solution thoroughly by gentle swirling. 4. While the agarose solution is cooling, choose an appropriate comb for forming the sample slots in the gel. Position the comb 0.5-1.0 mm above the plate so that a complete well is formed when the agarose is added to the mold. 5. Pour the warm agarose solution into the mold. 6. Allow the gel to polymerize completely (20-45 minutes at room temperature), then pour a small amount of electrophoresis buffer on the top of the gel, and carefully remove the comb. Pour off the electrophoresis buffer and carefully remove the tape. Mount the gel in the electrophoresis tank. 7. Place the gel into the electrophoresis device and enough electrophoresis buffers to cover the gel to a depth of approx. 1 mm. 8. Mix the sample by loading dye with a ration 1:5 or 1:10. 9. Slowly load the sample mixture into the slots of the submerged gel using a disposable micropipette, an automatic micropipettor, or a drawn-out Pasteur pipette or glass capillary tube. Load size standards into slots on both the right and left sides of the gel. 10. Close the lid of the gel tank and attach the electrical leads so that the DNA will migrate toward the positive anode (red lead). Apply a voltage of 1-5 V/cm. If the leads have been attached correctly, bubbles should be generated at the anode and cathode, and within a few minutes, the bromophenol blue should migrate from the wells into the body of the gel. Run the gel until the bromophenol blue and xylene cyanol FF have migrated for distance through the often to the last third og the gel. 11. When the DNA samples or dyes have migrated for a sufficient distance through the gel, turn off the electric current and remove the leads and lid from the gel tank. Otherwise, stain the gel by immersing it in electrophoresis buffer or H2O containing ethidium bromide (0.5 μg/ml) for 20-45 minutes at room temperature or by soaking in a 1:10,000- fold dilution of SYBR Green stock solution in electrophoresis buffer.
3. Detection of DNA in agarose gels
Nucleic acids running on an electrophoresis can be detected by staining with a dye and visualized under 300-nm UV light. Staining and visualization of DNA are conducted by using either ethidium bromide or SYBR Green. The most convenient and commonly used method to visualize DNA in agarose a gel is ethidium bromide. Ethidium bromide can be used to detect both single- and double-stranded nucleic acids (both DNA and RNA). However, the resolution of single-stranded nucleic acid is relatively low and the fluorescent yield is poor compared to the SYBR Green. In fact, most fluorescence associated with staining single-stranded DNA or RNA is attributable to binding of the dye to short intrastrand duplexes in the molecules (Sambrook &Russel 2001).
The banding pattern of DNA resolved through the gel by recorded images. Images of ethidium bromide stained gels may be captured by using transmitted or incident UV light.
www.intechopen.com
Gel Electrophoresis Principles and Basics
40
However, the amount of nicking of the DNA is much lower at 302 nm compared to 254 nm. If SYBR Green used instead of ethidium bromide another 10-20-fold increase in the sensitivity using conventional image taking techniques is in the range of possibility. Detection of DNAs stained with this dye requires the use of a yellow or green gelatin or cellophane filter with the camera along with the illumination with 300-nm UV light.
4. References
Blasiak J, Trzeciak A, Malecka-Panas E, Drzewoski J & Wojewódzka M (2000). In vitro genotoxicity of ethanol and acetaldehyde in human lymphocytes and the gastrointestinal tract mucosa cells.Toxicology in Vitro 14(4): 287–295. Boffey, S. A. (1984). Isolation of high molecular weight DNA, in Methods in Molecular Biology, vol. 2: Nucleic Acids (Walker, J. M., ed.), Humana, Totowa, NJ, 333-341. Brody, J.R. & Kern, S.E. (2004). History and principles of conductive media for standard DNA electrophoresis. Anal Biochem. 333(1):1-13. Corley, R.B.(2005). A guide to methods in the biomedical sciences. ISBN: 0-387-22845-4 Harrington, R.E. (1993). Studies of DNA bending and flexibility using gel- electrophoresis.Electrophoresis. 14,732-746. Jin X., Yue S., Wells K.S. & Singer V.L. (1994). SYBR Green: I. A new fluorescent dye optomized for detection of picogram amounts of DNA in gels. Biophys. J.,66, p. A159. Lodge J, Lund P. & Minchin S. (2007). Gene cloning: principles and applications. ISBN 0- 7487-6534-4. Kryndushkin DS, Alexandrov IM, Ter-Avanesyan MD & Kushnirov VV (2003). Yeast [PSI+] prion aggregates are formed by small Sup35 polymers fragmented by Hsp10. Journal of Biological Chemistry.278 (49): 49636. Lane, D., Prentki, P. & Chandler, M. (1992). Use of gel retardation to analyse protein nucleic acid interactions. Microbiological Reviews. 56,509-528. Lewis M. Agarose gel electrophoresis (basic method). Biological Protocols. Retrieved 2011. Lu Y & Morimoto K. (2009). Is habitual alcohol drinking associated with reduced electrophoretic DNA migration in peripheral blood leukocytes from ALDH2- deficient male Japanes. Mutagenesis. 24 (4): 303–308. Madruga M.H, Moscatello D.K, Emlet D.R, Dıeterıch R & Wong A.J. (1997). Grb2 associated binder mediates phosphatidylinositol 3-kinase activation and the promotion of cell survival by nevre growth factor. Proc. Natl. Acad. Sci.Vol. 94, pp. 12419–12424 Rapley R., (2000). The nucleic acid protocols handbook. ISBN 0-89603-459-3. Sahoo L. (2007). Plant biotechnology lab. manual. Sambrook J&Russel DW(2001). Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3rd Ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. Sharp P.A., Sugden B. & Sambrook J. (1973). Detection of two restriction endonuclease activities in Haemophilus parainfluenzae using analytical agarose-ethidium bromide electrophoresis. Biochemistry. 12:3055-3063. http://www.molecularstation.com/agarose-gel-electrophoresis/ http://ocw.mit.edu/courses/biological-engineering/20-109-laboratory-fundamentals-in- biological-engineering-fall-2007/labs/mod1_2/ http://parts.mit.edu/igem07/index.php/Agarose_Gel_Electrophoresis http://rsbweb.nih.gov/ij/docs/user-guide.pdf
www.intechopen.com
Gel Electrophoresis - Principles and Basics Edited by Dr. Sameh Magdeldin
ISBN 978-953-51-0458-2 Hard cover, 346 pages Publisher InTech Published online 04, April, 2012 Published in print edition April, 2012
InTech Europe University Campus STeP Ri Slavka Krautzeka 83/A 51000 Rijeka, Croatia Phone: [phone] Fax: [phone] www.intechopen.com
InTech China Unit 405, Office Block, Hotel Equatorial Shanghai No.65, Yan An Road (West), Shanghai, 200040, China Phone: [phone] Fax: [phone]
Most will agree that gel electrophoresis is one of the basic pillars of molecular biology. This coined terminology covers a myriad of gel-based separation approaches that rely mainly on fractionating biomolecules under electrophoretic current based mainly on the molecular weight. In this book, the authors try to present simplified fundamentals of gel-based separation together with exemplarily applications of this versatile technique. We try to keep the contents of the book crisp and comprehensive, and hope that it will receive overwhelming interest and deliver benefits and valuable information to the readers.
How to reference In order to correctly reference this scholarly work, feel free to copy and paste the following: Muhittin Yılmaz, Cem Ozic and İlhami Gok (2012). Principles of Nucleic Acid Separation by Agarose Gel Electrophoresis, Gel Electrophoresis - Principles and Basics, Dr. Sameh Magdeldin (Ed.), ISBN: 978-953-51- 0458-2, InTech, Available from: http://www.intechopen.com/books/gel-electrophoresis-principles-and- basics/principles-of-nucleic-acid-separation-by-agarose-gel-electrophoresis

Kết quả (Việt) 1:

2.1 phương pháp 1. chuẩn bị một giải pháp của agarose trong bộ đệm điện tại nồng độ thích hợp để tách các mảnh vỡ kích thước cụ thể dự kiến trong DNA sample(s). 2. nếu sử dụng một chai thủy tinh, mất nắp. Đun nóng hỗn hợp trong một tắm nước đun sôi hoặc lò cho đến khi agarose hòa tan. 3. sử dụng găng tay cách điện để chuyển flask này vào một bồn tắm nước ở 55° C. Khi các gel tan chảy đã làm mát bằng, thêm ethidium bromua vào nồng độ cuối cùng của cách 0.5 μg / ml. trộn giải pháp gel kỹ lưỡng bằng cách nhẹ nhàng xoáy. 4. trong khi các giải pháp agarose làm mát, chọn một lược thích hợp để tạo thành các khe mẫu trong gel. Vị trí lược 0,5-1.0 mm ở trên các tấm để hoàn toàn tốt được hình thành khi agarose được đưa vào khuôn. 5. đổ giải pháp ấm agarose vào khuôn. 6. cho phép các gel để polymerize hoàn toàn (20-45 phút ở nhiệt độ phòng), sau đó đổ một lượng nhỏ điện đệm trên đầu trang của các gel, và cẩn thận loại bỏ comb. Đổ ra các bộ đệm điện và cẩn thận loại bỏ các băng. Gắn kết các gel trong hồ điện. 7. nơi chốn gel vào điện thoại và bộ đệm điện đủ để trang trải các gel tới độ sâu của khoảng 1 mm. 8. Trộn mẫu bằng cách tải các thuốc nhuộm với một suất ăn 1:5 hoặc 1:10. 9. chậm tải hỗn hợp mẫu vào các khe của gel ngập bằng cách sử dụng một micropipette dùng một lần, một micropipettor tự động, hoặc một rút ra-out Pasteur pipette hoặc kính mao mạch ống. Tải kích thước tiêu chuẩn vào khe cắm trên cả hai bên phải và trái của gel. 10. đóng nắp của xe tăng gel và đính kèm dẫn điện để DNA sẽ di chuyển về hướng tích cực cực dương (chì đỏ). Áp dụng một điện áp 1-5 V/cm. Nếu dẫn đầu đã được gắn liền một cách chính xác, bong bóng nên được tạo ra tại anode, cathode, và trong vòng vài phút, màu xanh bromophenol nên di chuyển từ các giếng vào cơ thể của gel. Chạy các gel cho đến khi bromophenol màu xanh và Xylen cyanol FF đã di chuyển cho khoảng cách thông qua các thường xuyên để cuối thứ ba og gel. 11. khi các mẫu DNA hay thuốc nhuộm có di chuyển cho khoảng cách đủ thông qua các gel, hãy tắt điện tử hiện tại và loại bỏ dẫn và nắp từ bể chứa gel. Nếu không, vết gel bằng cách hoà nhập nó trong bộ đệm điện hoặc H2O chứa ethidium bromua (cách 0.5 μg/ml) trong 20-45 phút ở nhiệt độ phòng hoặc ngâm trong một 1:10, 000-gấp pha loãng của giải pháp chứng khoán SYBR màu xanh lá cây trong bộ đệm điện. 3. phát hiện DNA trong agarose gel Axít nucleic chạy trên một điện có thể được phát hiện bởi nhuộm với một loại thuốc nhuộm và hình dung dưới tia UV 300-nm. Nhuộm và hình dung của DNA được tiến hành bằng cách sử dụng ethidium bromua hoặc SYBR màu xanh lá cây. Các phương pháp thuận tiện nhất và thường được sử dụng để hình dung DNA trong agarose một gel là ethidium bromua. Ethidium bromua có thể được sử dụng để phát hiện cả hai axit nucleic đơn và đôi stranded (cả hai DNA và RNA). Tuy nhiên, việc giải quyết đơn-stranded nucleic acid là tương đối thấp và năng suất huỳnh quang là kém so với màu xanh lá cây SYBR. Trong thực tế, hầu hết huỳnh quang liên kết với nhuộm đơn-stranded DNA hoặc RNA là nhờ vào các ràng buộc của thuốc nhuộm để ngắn intrastrand hai hộ trong các phân tử (Sambrook & Russel năm 2001). Dải mẫu ADN giải quyết thông qua các gel bởi hình ảnh ghi lại. Hình ảnh của ethidium bromua màu gels có thể bị chiếm giữ bởi bằng cách sử dụng truyền hoặc đèn UV sự cố. www.intechopen.com Gel điện nguyên tắc và khái niệm cơ bản 40Tuy nhiên, số lượng nicking của DNA là thấp hơn nhiều lúc 302 nm so với 254 nm. Nếu SYBR màu xanh lá cây sử dụng thay vì ethidium bromua 10 20 lần tăng sự nhạy cảm bằng cách sử dụng hình ảnh thường dùng kỹ thuật là trong phạm vi của các khả năng. Các phát hiện của DNAs màu với thuốc nhuộm này đòi hỏi việc sử dụng một màu vàng hoặc màu xanh lá cây gelatin hoặc bóng kính lọc với máy ảnh cùng với sự chiếu sáng với ánh sáng UV 300-nm. 4. References Blasiak J, Trzeciak A, Malecka-Panas E, Drzewoski J & Wojewódzka M (2000). In vitro genotoxicity of ethanol and acetaldehyde in human lymphocytes and the gastrointestinal tract mucosa cells.Toxicology in Vitro 14(4): 287–295. Boffey, S. A. (1984). Isolation of high molecular weight DNA, in Methods in Molecular Biology, vol. 2: Nucleic Acids (Walker, J. M., ed.), Humana, Totowa, NJ, 333-341. Brody, J.R. & Kern, S.E. (2004). History and principles of conductive media for standard DNA electrophoresis. Anal Biochem. 333(1):1-13. Corley, R.B.(2005). A guide to methods in the biomedical sciences. ISBN: 0-387-22845-4 Harrington, R.E. (1993). Studies of DNA bending and flexibility using gel- electrophoresis.Electrophoresis. 14,732-746. Jin X., Yue S., Wells K.S. & Singer V.L. (1994). SYBR Green: I. A new fluorescent dye optomized for detection of picogram amounts of DNA in gels. Biophys. J.,66, p. A159. Lodge J, Lund P. & Minchin S. (2007). Gene cloning: principles and applications. ISBN 0- 7487-6534-4. Kryndushkin DS, Alexandrov IM, Ter-Avanesyan MD & Kushnirov VV (2003). Yeast [PSI+] prion aggregates are formed by small Sup35 polymers fragmented by Hsp10. Journal of Biological Chemistry.278 (49): 49636. Lane, D., Prentki, P. & Chandler, M. (1992). Use of gel retardation to analyse protein nucleic acid interactions. Microbiological Reviews. 56,509-528. Lewis M. Agarose gel electrophoresis (basic method). Biological Protocols. Retrieved 2011. Lu Y & Morimoto K. (2009). Is habitual alcohol drinking associated with reduced electrophoretic DNA migration in peripheral blood leukocytes from ALDH2- deficient male Japanes. Mutagenesis. 24 (4): 303–308. Madruga M.H, Moscatello D.K, Emlet D.R, Dıeterıch R & Wong A.J. (1997). Grb2 associated binder mediates phosphatidylinositol 3-kinase activation and the promotion of cell survival by nevre growth factor. Proc. Natl. Acad. Sci.Vol. 94, pp. 12419–12424 Rapley R., (2000). The nucleic acid protocols handbook. ISBN 0-89603-459-3. Sahoo L. (2007). Plant biotechnology lab. manual. Sambrook J&Russel DW(2001). Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3rd Ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. Sharp P.A., Sugden B. & Sambrook J. (1973). Detection of two restriction endonuclease activities in Haemophilus parainfluenzae using analytical agarose-ethidium bromide electrophoresis. Biochemistry. 12:3055-3063. http://www.molecularstation.com/agarose-gel-electrophoresis/ http://ocw.mit.edu/courses/biological-engineering/20-109-laboratory-fundamentals-in- biological-engineering-fall-2007/labs/mod1_2/ http://parts.mit.edu/igem07/index.php/Agarose_Gel_Electrophoresis http://rsbweb.nih.gov/ij/docs/user-guide.pdf www.intechopen.com
Gel Electrophoresis - Principles and Basics Edited by Dr. Sameh Magdeldin
ISBN 978-953-51-0458-2 Hard cover, 346 pages Publisher InTech Published online 04, April, 2012 Published in print edition April, 2012
InTech Europe University Campus STeP Ri Slavka Krautzeka 83/A 51000 Rijeka, Croatia Phone: [phone] Fax: [phone] www.intechopen.com
InTech China Unit 405, Office Block, Hotel Equatorial Shanghai No.65, Yan An Road (West), Shanghai, 200040, China Phone: [phone] Fax: [phone]
Most will agree that gel electrophoresis is one of the basic pillars of molecular biology. This coined terminology covers a myriad of gel-based separation approaches that rely mainly on fractionating biomolecules under electrophoretic current based mainly on the molecular weight. In this book, the authors try to present simplified fundamentals of gel-based separation together with exemplarily applications of this versatile technique. We try to keep the contents of the book crisp and comprehensive, and hope that it will receive overwhelming interest and deliver benefits and valuable information to the readers.
How to reference In order to correctly reference this scholarly work, feel free to copy and paste the following: Muhittin Yılmaz, Cem Ozic and İlhami Gok (2012). Principles of Nucleic Acid Separation by Agarose Gel Electrophoresis, Gel Electrophoresis - Principles and Basics, Dr. Sameh Magdeldin (Ed.), ISBN: 978-953-51- 0458-2, InTech, Available from: http://www.intechopen.com/books/gel-electrophoresis-principles-and- basics/principles-of-nucleic-acid-separation-by-agarose-gel-electrophoresis

Kết quả (Việt) 2:

2.1 Phương pháp
1. Chuẩn bị dung dịch agarose trong điện đệm ở một nồng độ thích hợp để tách các mảnh vỡ kích thước cụ thể dự kiến trong các mẫu DNA (s). 2. Nếu sử dụng một chai thủy tinh, mất nắp. Đun nóng hỗn hợp trong một bồn tắm nước sôi hoặc lò vi sóng cho đến khi tan hết agarose. 3. Sử dụng găng tay cách điện để chuyển bình vào một cốc nước ở 55 ° C. Khi gel tan chảy đã nguội, thêm ethidium bromide để nồng độ cuối cùng là 0,5 mg / ml. Trộn dung dịch gel triệt để bằng những vòng xoáy nhẹ nhàng. 4. Trong khi các giải pháp agarose được làm mát, chọn một chiếc lược phù hợp để tạo thành các khe mẫu trong gel. Vị trí của lược 0,5-1,0 mm ở trên tấm để một cũng hoàn toàn được hình thành khi agarose được thêm vào khuôn. 5. Đổ dung dịch agarose ấm áp vào khuôn. 6. Cho phép các gel polymer hóa hoàn toàn (20-45 phút ở nhiệt độ phòng), sau đó đổ một lượng nhỏ điện đệm trên đầu trang của các gel, và cẩn thận lấy chiếc lược. Đổ ra khỏi bộ đệm điện và cẩn thận tháo băng. Gắn kết các gel vào bể điện di. 7. Đặt gel vào các thiết bị điện và các bộ đệm đủ điện để trang trải các gel đến độ sâu khoảng. 1 mm. 8. Trộn mẫu bằng cách nạp thuốc nhuộm với một khẩu phần 1: 5 hoặc 1:10. 9. Từ từ nạp hỗn hợp mẫu vào các khe của gel ngập bằng cách sử dụng một micropipette dùng một lần, một micropipettor tự động, hoặc một kéo dài Pasteur pipette hoặc ống kính mao mạch. Tiêu chuẩn kích thước tải vào khe trên cả hai bên phải và bên trái của gel. 10. Đóng nắp bể gel và đính kèm các dẫn điện để các DNA sẽ di chuyển về phía cực dương dương (chì đỏ). Áp dụng một điện áp của 1-5 V / cm. Nếu các đạo đã được gắn chính xác, bong bóng sẽ được tạo ra ở cực dương và cực âm, và trong vòng vài phút, các bromophenol màu xanh nên di chuyển từ giếng vào cơ thể của gel. Chạy gel cho đến khi bromophenol xanh và xylene cyanol FF đã di cư cho khoảng cách thông qua việc thường xuyên để phần ba cuối og gel. 11. Khi các mẫu DNA hoặc thuốc nhuộm đã di cư cho khoảng cách đủ lớn thông qua các gel, tắt điện hiện và loại bỏ các khách hàng tiềm năng và nắp từ các bồn chứa gel. Nếu không, vết gel bằng cách ngâm nó trong bộ đệm điện hoặc H2O có chứa ethidium bromide (0,5 mg / ml) cho 20-45 phút ở nhiệt độ phòng hoặc bằng cách ngâm trong 1: 10.000 lần pha loãng dung dịch SYBR Green điện đệm.
3. Phát hiện của DNA trong gel agarose
axit Nucleic chạy trên một điện có thể được phát hiện bằng cách nhuộm bằng thuốc nhuộm và hình dưới ánh sáng UV 300 nm. Nhuộm và trực quan của DNA được thực hiện bằng cách sử dụng một trong hai ethidium bromide hoặc SYBR Green. Các phương pháp thuận tiện nhất và thường được sử dụng để hình dung DNA trong agarose gel là ethidium bromide. Ethidium bromide có thể được sử dụng để phát hiện acid nucleic cả đơn và kép (cả DNA và RNA). Tuy nhiên, độ phân giải của axit nucleic sợi đơn là tương đối thấp và năng suất huỳnh quang là nghèo so với SYBR Green. Trong thực tế, hầu hết huỳnh quang kết hợp với nhuộm DNA sợi đơn RNA hoặc là do ràng buộc của các thuốc nhuộm để song lập intrastrand ngắn trong các phân tử (Sambrook & Russel 2001).
Các mô hình dải của DNA được giải quyết thông qua các gel bởi những hình ảnh ghi lại. Hình ảnh của ethidium bromide nhuộm gel có thể được chụp bằng cách dùng truyền tải hoặc ánh sáng tới UV.
Www.intechopen.com
nguyên tắc điện di gel và Khái niệm cơ bản
40
Tuy nhiên, số lượng nicking của DNA là thấp hơn nhiều ở 302 nm so với bước sóng 254 nm. Nếu SYBR xanh được sử dụng thay vì ethidium bromide khác tăng 10-20 lần trong sự nhạy cảm bằng cách sử dụng hình ảnh thông thường dùng kỹ thuật này là ở tầm mức có thể. Phát hiện ADN nhuộm với màu này đòi hỏi việc sử dụng một gelatin hoặc giấy bóng kính lọc màu vàng hoặc màu xanh lá cây với các máy ảnh cùng với sự chiếu sáng với ánh sáng 300-nm UV.
4. Tài liệu tham khảo
Blasiak J, Trzeciak A, Malecka-Panas E, Drzewoski J & Wojewódzka M (2000). Trong genotoxicity vitro của ethanol và acetaldehyde trong tế bào lympho con người và tiêu hóa cells.Toxicology niêm mạc đường tiêu trong ống nghiệm 14 (4): 287-295. Boffey, SA (1984). Phân lập DNA cao phân tử trọng lượng, trong phương pháp Sinh học phân tử, vol. 2: Nucleic Acids (Walker, JM, ed.), Humana, totowa, NJ, 333-341. Brody, JR & Kern, SE (2004). Lịch sử và nguyên tắc của phương tiện truyền thông dẫn điện dùng cho điện DNA chuẩn. Anal Biochem. 333 (1): 1-13. Corley, RB (2005). Hướng dẫn về các phương pháp trong các ngành khoa học y sinh. ISBN: 0-387-22845-4 Harrington, RE (1993). Các nghiên cứu về DNA uốn và linh hoạt sử dụng gel- electrophoresis.Electrophoresis. 14,732-746. Jin X., Yue S., Wells KS & Singer VL (1994). SYBR Green: I. Một nhuộm huỳnh quang mới optomized để phát hiện các khoản picogram của DNA trong gel. Biophys. J., 66, p. A159. Lodge J, Lund P. & Minchin S. (2007). Gene cloning: nguyên tắc và các ứng dụng. ISBN 0- 7487-6534-4. Kryndushkin DS, Alexandrov IM, Ter-Avanesyan MD & Kushnirov VV (2003). Men [PSI +] prion uẩn này được hình thành bởi các polyme Sup35 nhỏ phân chia do Hsp10. Journal of Biological Chemistry.278 (49): 49636. Lane, D., Prentki, P. & Chandler, M. (1992). Sử dụng gel chậm phát triển để phân tích protein tương tác axit nucleic. Nhận xét ​​về vi sinh. 56,509-528. Lewis M. Agarose gel electrophoresis (phương pháp cơ bản). Giao thức sinh học. Lấy 2011. Lu Y & Morimoto K. (2009). Là uống rượu thường xuyên kết hợp với giảm di cư DNA điện di trong bạch cầu máu ngoại vi từ ALDH2- Japanes thiếu nam. Đột biến. 24 (4): 303-308. Madruga MH, Moscatello DK, Emlet DR, DIETERICH R & Wong AJ (1997). Grb2 liên kết dính trung gian phosphatidylinositol 3-kinase kích hoạt và thúc đẩy các tế bào sống của yếu tố tăng trưởng nevre. Proc. Natl. Acad. Sci.Vol. 94, pp. 12.419-12.424 Rapley R., (2000). Các giao thức axit nucleic cuốn sổ tay. ISBN 0-89603-459-3. Sahoo L. (2007). Phòng thí nghiệm công nghệ sinh học thực vật. hướng dẫn sử dụng. Sambrook J & Russel DW (2001). Cloning phân tử: Một thứ 3 Manual Phòng thí nghiệm Ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. Sharp PA, Sugden B. & Sambrook J. (1973). Phát hiện hai hoạt động hạn chế endonuclease trong Haemophilus parainfluenzae bằng phân tích agarose-ethidium bromide điện. Hóa sinh. 12: 3055-3063. http://www.molecularstation.com/agarose-gel-electrophoresis/ http://ocw.mit.edu/courses/biological-engineering/20-109-laboratory-fundamentals-in- sinh học-kỹ thuật-thu-2007 / các phòng thí nghiệm / mod1_2 / http://rsbweb.nih.gov/ij/docs/user-guide.pdf http://parts.mit.edu/igem07/index.php/Agarose_Gel_Electrophoresis
www.intechopen.com
Gel điện di - Nguyên tắc và Khái niệm cơ bản Sửa bởi Tiến sĩ Sameh Magdeldin
ISBN 978-953-51-0458-2 bìa cứng, 346 trang Nhà xuất bản Intech đăng trực tuyến 04, Tháng Tư, 2012 đăng trong ấn bản in April, 2012
Đại học Intech Âu Campus STeP Ri Slavka Krautzeka 83 / A 51000 Rijeka, Croatia Điện thoại: [phone] Fax: [phone] www.intechopen.com
Intech Trung Quốc Đơn vị 405, Văn phòng Block, Hotel Equatorial Shanghai số 65, Yan An Road (West), Thượng Hải, 200.040, Trung Quốc Điện thoại: + 86-21-62489820 Fax: + 86-21-62489821
Hầu hết sẽ đồng ý rằng gel electrophoresis là một trong những trụ cột cơ bản của sinh học phân tử. Thuật ngữ được đặt ra này bao gồm vô số các phương pháp tách gel dựa trên dựa chủ yếu vào phân tử sinh học cất phân đoạn dưới dòng điện di dựa chủ yếu vào khối lượng phân tử. Trong cuốn sách này, các tác giả đã cố gắng trình bày nguyên tắc cơ bản đơn giản hóa của tách gel dựa trên cùng với các ứng dụng của kỹ thuật exemplarily đa năng này. Chúng tôi cố gắng để giữ cho nội dung của cuốn sách rõ nét và toàn diện, và hy vọng rằng nó sẽ nhận được sự quan tâm quá nhiều và mang lại lợi ích và thông tin có giá trị cho độc giả.
Làm thế nào để tham khảo Để tham khảo cách chính xác công trình học thuật này, cảm thấy miễn phí để sao chép và dán sau đây: Muhittin Yılmaz, Cem Ozic và İlhami Gok (2012). Nguyên tắc của Acid nucleic Tách bằng Agarose Gel điện di, gel điện di - Nguyên tắc và khái niệm cơ bản, tiến sĩ Sameh Magdeldin, ISBN (Ed.): 978-953-51- 0458-2, Intech, có sẵn từ: http: //www.intechopen .com / cuốn sách / gel electrophoresis-nguyên-và- cơ bản / nguyên tắc-of-nucleic-acid-ly-do-agarose gel electrophoresis-